間充質(zhì)干細(xì)胞( mesenchymal stem cells,MSCs)是干細(xì)胞家族的重要成員,來(lái)源于早期中胚層和外胚層的一類(lèi)多能干細(xì)胞。MSCs最初在骨髓中發(fā)現(xiàn),隨后在多種組織中分離得到,包括肌肉、脂肪、大腦、軟骨、牙髓以及臍帶等[1]。大量研究表明,MSCs具有巨大的治療潛力,因?yàn)槠渚哂凶晕腋潞投嘞蚍只臐撃?,在體內(nèi)或體外的合適條件下能分化成為多種成體細(xì)胞,從而實(shí)現(xiàn)組織重建;能夠通過(guò)分泌可溶性因子和轉(zhuǎn)分化等直接或間接刺激進(jìn)行組織修復(fù)[2]。MSCs還具有免疫調(diào)節(jié)能力,體外擴(kuò)增的MSCs具有免疫抑制功能,可通過(guò)與免疫細(xì)胞(如:T和B淋巴細(xì)胞、NK細(xì)胞及樹(shù)突狀細(xì)胞等)的相互作用來(lái)調(diào)節(jié)免疫反應(yīng),可能成為某些免疫性疾?。ㄈ纾篊rohn's?。┑闹委熓侄危瑢?duì)于減少造血干細(xì)胞及器官移植后的移植物抗宿主?。?GVHD )的發(fā)生也有一定的作用[3]。另外,MSCs在連續(xù)傳代和冷凍復(fù)蘇后仍具有上述功能,可作為組織工程和細(xì)胞替代治療的種子細(xì)胞[4]。
研究表明,圍產(chǎn)期胚外組織中均含有MSCs,包括胎盤(pán)的各個(gè)部分、胎膜(羊膜和絨毛膜)和臍帶,從臍帶血和羊水中也能分離得到,這種MSCs是一種介于胚胎干細(xì)胞( embryonic stem cells, ESCs )和成體MSCs之間的干細(xì)胞類(lèi)型,其生長(zhǎng)發(fā)育關(guān)系與ESCs很接近,免疫原性較低,具有廣泛的可塑性,而且比成體MSCs增殖得更快[5]。另外,用于分離細(xì)胞的胚外組織在分娩后通常會(huì)被丟棄,不會(huì)有倫理學(xué)方面的問(wèn)題。臍帶動(dòng)靜脈之間含有特殊的胚胎粘液樣結(jié)締組織 — 沃頓膠( Whanon's jelly ),由沃頓膠分離得到的間充質(zhì)干細(xì)胞即為人臍帶沃頓膠間充質(zhì)干細(xì)胞( WJ-MSCs )。這種來(lái)源廣泛、再生能力強(qiáng)、有較強(qiáng)分化潛能、免疫原性低的干細(xì)胞,近年來(lái)引起人們的極大興趣,特別是其對(duì)于再生能力非常有限的心血管組織的恢復(fù)與重建,研究者們進(jìn)行了很多基礎(chǔ)和臨床研究,現(xiàn)將WJ-MSCs的研究進(jìn)展及其在心血管組織工程中的應(yīng)用綜述如下:
1 WJ-MSCs的來(lái)源
最初,人們從臍帶血、羊水和胎膜獲取細(xì)胞,用于圍產(chǎn)期的一些診斷。20世紀(jì)80年代,開(kāi)始應(yīng)用圍產(chǎn)期干細(xì)胞治療白血病和代謝性疾病,1例患者應(yīng)用HLA匹配的臍帶血(來(lái)自患者的兄弟)治療范科尼貧血獲得成功[6]。從此以后,全世界成功實(shí)施了超過(guò)10 000例臍帶血移植術(shù)[7]。20世紀(jì)90年代,Langer's和 Vacanti 兄弟提出了再生醫(yī)學(xué)的概念[8],之后不久,圍產(chǎn)期胚外組織MSCs便被證明可以應(yīng)用于組織工程。臍帶是連接胎兒和胎盤(pán)的彈性索狀結(jié)構(gòu),功能是保護(hù)其中的血管免受壓迫、扭轉(zhuǎn)和彎曲,同時(shí)也連接著胎兒和母體的血液循環(huán)。臍帶包括兩根臍動(dòng)脈和一根臍靜脈,它們鑲嵌在一種富含蛋白多糖的特殊膠狀基質(zhì)-沃頓膠中,后者表面覆蓋著羊膜上皮。沃頓膠是一種果凍樣結(jié)締組織,主要成分為Ⅰ和Ⅲ型膠原纖維,以及富含粘多糖的膠狀細(xì)胞間質(zhì)。膠原蛋白形成三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),與無(wú)定形的細(xì)胞間質(zhì)呈松散的連接,細(xì)胞間質(zhì)中則包含數(shù)種多聚糖,如:透明質(zhì)酸等[9]。
早期研究表明,沃頓膠中含有一種成纖維細(xì)胞樣、多能間充質(zhì)干細(xì)胞群。這些細(xì)胞以前稱(chēng)為“臍帶基質(zhì)干細(xì)胞”,用來(lái)與分離自臍靜脈的內(nèi)皮細(xì)胞( HUVEC )和臍帶血間充質(zhì)干細(xì)胞( UCB-MSCs )相區(qū)別,之后則被稱(chēng)為“沃頓膠間充質(zhì)干細(xì)胞”( WJ-MSCs )[10]。目前,WJ-MSCs可分別源自臍帶的三個(gè)區(qū)域:即血管周?chē)鷧^(qū)、血管內(nèi)區(qū)和亞羊膜區(qū),各個(gè)區(qū)域分離得到的細(xì)胞在精細(xì)結(jié)構(gòu)、免疫組化和體外功能方面的研究結(jié)果表明,三者無(wú)論是數(shù)量還是性質(zhì)方面均有明顯的差異,由此可推測(cè)這些區(qū)域的細(xì)胞來(lái)源可能并不相同。而來(lái)自臍帶不同部分的成纖維樣細(xì)胞是否來(lái)源和性質(zhì)也不相同,目前仍不清楚。這些細(xì)胞表達(dá)相似的表面標(biāo)志,提示其均為MSCs來(lái)源[11]。有研究表明,靠近羊膜表面的WJ-MSCs增殖能力更強(qiáng),而靠近鄰近臍靜脈的WJ-MSCs則有更廣泛的分化潛能[12]。
2 WJ-MSCs的分離和培養(yǎng)
目前,分離WJ-MSCs主要的方法有組織塊培養(yǎng)法和酶消化法[13]。先取15~20cm新鮮臍帶,去除臍靜脈和臍動(dòng)脈,分離沃頓膠并切碎。組織培養(yǎng)法即是將組織碎塊直接置于培養(yǎng)皿中培養(yǎng),酶消化法則用蛋白酶(如膠原酶和透明質(zhì)酸酶)將組織碎塊消化后,用70~100um細(xì)胞篩過(guò)濾,再重懸于培養(yǎng)基中。酶消化法的優(yōu)點(diǎn)是得到的細(xì)胞比較純,可減少分離沃頓膠時(shí)其他細(xì)胞(如:紅細(xì)胞和內(nèi)皮細(xì)胞等)和組織碎片的污染風(fēng)險(xiǎn)[14]。新鮮分離的WJ-MSCs接種后0~3天處于潛伏期,細(xì)胞無(wú)明顯增殖,第4天進(jìn)入對(duì)數(shù)增長(zhǎng)期,10~15天后進(jìn)入平臺(tái)期,此時(shí)通常呈成纖維細(xì)胞樣。在平臺(tái)期,細(xì)胞的倍增時(shí)間為60~85h,且基本保持穩(wěn)定,到了生長(zhǎng)晚期則呈進(jìn)行性減少[15]。
3 WJ-MSCs的生物學(xué)特性
一方面,WJ-MSCs能滿(mǎn)足成體MSCs定義的最低標(biāo)準(zhǔn),形態(tài)上類(lèi)似成體MSCs,具有粘附特性,能夠自我更新,并能在體外培養(yǎng)增殖。表形上,WJ-MSCs表達(dá)典型的MSCs表面標(biāo)志,如:CD10、CD13、CD29、CD44、CD73、CD90和CD105,同時(shí)不表達(dá)造血細(xì)胞系的表面標(biāo)志,如:CD34和CD45[16]。在可塑性方面,WJ-MSCs具有多能分化性,能被誘導(dǎo)成為脂肪組織、骨、軟骨、骨骼肌細(xì)胞、心肌樣細(xì)胞和神經(jīng)細(xì)胞等。另一方面,WJ-MSCs又具有圍產(chǎn)期胚外MSCs的典型特性,與胎盤(pán)來(lái)源MSCs( PD-MSCs )和臍帶血來(lái)源MSCs( UCB-MSCs )均非常相似。第一,它們均具有多能分化性,且增殖速度快,在體外的增殖潛能比成體MSCs大80倍以上;第二,它們表面表達(dá)HLA-Ⅰ分子較成體MSCs低,并且不表達(dá)HLA-Ⅱ分子[11];第三,它們較成體MSCs具有更廣泛的分化潛能,據(jù)最新研究表明,WJ-MSCs能夠分化為源自?xún)?nèi)胚層的組織,如:胰腺和肝臟[17-18]。與臍帶血來(lái)源的MSCs相似,WJ-MSCs在體外也能分化為骨和神經(jīng)細(xì)胞[12]。與成體MSCs和PD-MSCs不同, WJ-MSCs持續(xù)表達(dá)胚胎干細(xì)胞的表面標(biāo)志,如:Oct-4、Sox-2和Nanog,也表達(dá)多能性干細(xì)胞的表面標(biāo)志,如:SSeA-4和Tra-1-60。此外,WJ-MSCs在免疫調(diào)節(jié)方面比成體MSCs具有更廣泛的特性。例如:在混合淋巴細(xì)胞試驗(yàn)中,WJ-MSCs會(huì)抑制T細(xì)胞的增殖,因此能更好地耐受外源性的移植[3]。綜上所述,WJ-MSCs是一種可靠的、豐富的、廉價(jià)來(lái)源的多能間充質(zhì)干細(xì)胞,在再生醫(yī)學(xué)中具有較大的應(yīng)用潛力。
4 WJ-MSCs在心血管組織工程中的應(yīng)用
心血管系統(tǒng)的再生能力非常有限,功能性置換是治療心血管損傷和先天缺陷的重要手段,尤其對(duì)于新生兒和嬰幼兒更是如此。目前,實(shí)施手術(shù)是較為普遍的治療手段,然而,手術(shù)治療通常使用的置換物為異體的瓣膜或脈管,該類(lèi)置換物有兩個(gè)顯著的缺點(diǎn):阻塞性組織向內(nèi)生長(zhǎng)和植入物的鈣化,因此每次手術(shù)都會(huì)有一定的風(fēng)險(xiǎn)。研究者希望能夠在體外培養(yǎng)心血管組織的替代品,以解決這一難題[19]。通常有兩種成體細(xì)胞作為種子細(xì)胞用于制造心血管組織的替代品,一種為能夠形成細(xì)胞外基質(zhì)的細(xì)胞,如:成纖維細(xì)胞;另一種為具有抗血栓功能的內(nèi)皮細(xì)胞。在三維支架上先種植成纖維細(xì)胞,再種植內(nèi)皮細(xì)胞[20]。與成纖維細(xì)胞相比,WJ-MSCs有更好的自我修復(fù)能力,更廣泛的可塑性和具有免疫調(diào)節(jié)能力,而且,它還具有諸多優(yōu)勢(shì),如:其來(lái)源為自體組織、來(lái)源豐富、獲得手段對(duì)人體幾乎沒(méi)有傷害、生長(zhǎng)迅速等,因此,WJ-MSCs很有希望代替成纖維細(xì)胞成為新的種子細(xì)胞用于培育心血管組織替代品。另外,另一種所必需的細(xì)胞-內(nèi)皮細(xì)胞也能夠從臍帶靜脈或臍帶血中分離得到。從2002年起[21],研究者開(kāi)始探尋WJ-MSCs在心血管組織工程中的可行性,隨后的研究表明,其為一種較好的細(xì)胞來(lái)源[22]。2006年,Schmidt 等[23]應(yīng)用異體產(chǎn)前臍帶來(lái)源的祖細(xì)胞作為細(xì)胞源,培育出了具有生物活性的心臟瓣膜小葉。研究者將WJ-MSCs和臍血來(lái)源的內(nèi)皮祖細(xì)胞( EPCs )種植在生物可降解支架上,在模擬體內(nèi)生理的環(huán)境中培養(yǎng),并施加化學(xué)和(或)物理刺激,最終形成了成熟、分層的小葉組織,其具有與天然組織相似的功能性血管內(nèi)皮和細(xì)胞外基質(zhì)成分。該研究對(duì)于缺乏自體可再生細(xì)胞的先天性心臟缺陷的治療具有重要意義。2010年,有研究者率先將微膠囊化技術(shù)運(yùn)用于WJ-MSCs[24]。微膠囊具有諸多優(yōu)點(diǎn),如:外表為球型結(jié)構(gòu),具有更大的表面體積比率;可以設(shè)定滲透性,允許參與合成代謝的化合物(如O2、葡萄糖等)進(jìn)入和細(xì)胞的代謝產(chǎn)物(如:CO2、乳酸、激素等)排出,同時(shí)不允許免疫球蛋白進(jìn)入;可以直接注射或通過(guò)微創(chuàng)手術(shù)植入到多種組織和器官。研究者比較了自由WJ-MSCs和微膠囊化WJ-MSCs在性質(zhì)和功能方面的差別,結(jié)果表明,微膠囊化并不會(huì)改變WJ-MSCs的表形,也不影響其生存能力,這就為體內(nèi)利用WJ-MSCs提供了一種新的可能途徑。最近,Kenar等[25]將WJ-MSCs合并微纖維支架用于修復(fù)心肌梗死或減緩心肌組織破環(huán)。研究者使用了一種由可生物降解的大空隙管道組成的支架,將WJ-MSCs作為種子細(xì)胞種植其上,然后在流動(dòng)培養(yǎng)液中培養(yǎng)14天,最終的數(shù)據(jù)顯示,WJ-MSCs的生存能力得到了加強(qiáng),細(xì)胞的同質(zhì)性和分布均勻程度都有所提高。
5 展望
基于干細(xì)胞的再生醫(yī)學(xué),為組織器官損傷的治療和重建邁出了革命性的一步,分離和鑒定新的干細(xì)胞來(lái)源對(duì)于再生醫(yī)學(xué)的臨床應(yīng)用也至關(guān)重要。越來(lái)越多的研究表明,源自臍帶的WJ-MSCs是介于胚胎干細(xì)胞和成體MSCs的一種干細(xì)胞,它結(jié)合了兩者的優(yōu)點(diǎn),一方面比成體MSCs在體外的擴(kuò)增效率更高、分化能力更強(qiáng)、免疫原性更低;另一方面又避免了胚胎干細(xì)胞在醫(yī)學(xué)倫理學(xué)上的問(wèn)題,而且來(lái)源充足,對(duì)于供者沒(méi)有創(chuàng)傷和其他臨床風(fēng)險(xiǎn)。這些優(yōu)勢(shì)使得WJ-MSCs在組織工程領(lǐng)域具有巨大的潛力,特別是對(duì)于心血管系統(tǒng)這樣再生能力非常有限的組織重建,可以說(shuō)是最有前途的研究方向之一。目前,將WJ-MSCs用于臨床還存在種種困難,如:移植后在宿主體內(nèi)難以長(zhǎng)期存活、分化為目的細(xì)胞的效率較低等,因此,有必要建立分離、鑒定和長(zhǎng)期培養(yǎng)WJ-MSCs的臨床相關(guān)標(biāo)準(zhǔn),使其在再生醫(yī)學(xué)應(yīng)用中得到更廣泛、更深入的研究。
[參考文獻(xiàn)]
[1]Rastegar F,Shenaq D,Huang J,et al.Mesenchymal stem cells: Molecular characteristics and clinical applications[J].World J Stem Cells,2010,2(4):67-80.
[2]Ma T. Mesenchymal stem cells: From bench to bedside[J]. World J Stem Cells, 2010, 2(2): 13-17.
[3]Hematti P.Role of mesenchymal stromal cells in solid organ transplantation[J].Transplant Rev,2008,22(4): 262-273.
[4]Semenov O,Breymann C.Mesenchymal Stem Cells Derived from Wharton's Jelly and their Potential for Cardio-Vascular Tissue Engineering[J]. Open Tissue Eng Regen Med J,2011, 4:64-71.
[5]Pappa K,Anagnou N.Novel sources of fetal stem cells: Where do they fit on the developmental continuum[J]? Regen Med,2009,4(3):423-433.
[6]Gluckman E,Rocha V.History of the clinical use of umbilical cord blood hematopoietic cells[J]. Cytotherapy,2005,7(3):219-227.
[7]Rocha V Locatelli F.Searching for alternative hematopoietic stem cell donors for pediatric patients[J]. Bone Marrow Transplant,2008,41(2):207-214.
[8]Langer R,Vacanti JP. Tissue engineering[J].Science,1993,260(5110):920-926.
[9]Huppertz B.The anatomy of the normal placenta[J].J Clin Pathol,2008,61(12):1296-1302.
[10]Murohara T.Cord blood-derived early outgrowth endothelial progenitor cells[J].Microvasc Res,2010,79(3): 174-177.
[11]Troyer DL,Weiss ML.Wharton's jelly-derived cells are a primitive stromal cell population[J].Stem Cells, 2008,26(3):591-599.
[12]Karahuseyinoglu S,Cinar O,Kilic E,et al.Biology of stem cells in human umbilical cord stroma: In situ and in vitro surveys[J].Stem Cells,2007,25(2):319-331.
[13]La Rocca G,Anzalone R,Corrao S,et al.Isolation and characterization of oct-4+/hla-g+ mesenchymal stem cells from human umbilical cord matrix: Differentiation potential and detection of new markers[J].Histochem Cell Biol,2009,131(2):267-282.
[14]Asakawa N,Shimizu T,Tsuda Y,et al.Pre-vascularization of in vitro three-dimensional tissues created by cell sheet engineering[J].Biomaterials,2010,31(14):3903-3909.
[15]Tsagias N,Koliakos I,Karagiannis V,et al.Isolation of mesenchymal stem cells using the total length of umbilical cord for transplantation purposes[J].Transfus Me,2011,21(4):253-261.
[16]Rojewski MT,Weber BM,Schrezenmeier H.Phenotypic characterization of mesenchymal stem cells from various tissues[J].Transfus Med Hemother,2008,35(3):168-184.
[17]Anzalone R,Lo Iacono M,Loria T,et al.Wharton's jelly mesenchymal stem cells as candidates for beta cells regeneration: Extending the differentiative and immunomodulatory benefits of adult mesenchymal stem cells for the treatment of type 1 diabetes[J].Stem Cell Rev,2011,7(2):342-363.
[18]Anzalone R,Lo Iacono M,Corrao S,et al. New emerging potentials for human wharton's jelly mesenchymal stem cells: Immunological features and hepatocyte-like differentiative capacity[J].Stem Cells Dev,2010,19(4):423-438.
[19]Turner CG,F(xiàn)auza DO.Fetal tissue engineering[J].Clin Perinatol,2009,36(2):473-488.
[20]Zund G,Hoerstrup SP,Schoeberlein A,et al.Tissue engineering: A new approach in cardiovascular surgery; seeding of human fibroblasts followed by human endothelial cells on resorbable mesh[J].Eur J Cardiothorac Surg,1998,13(2):160-164.
[21]Kadner A,Hoerstrup S,Tracy J,et al.Human umbilical cord cells:A new cell source for cardiovascular tissue engineering[J].AnnThorac Surg,2002,74(4):1422-1428.
[22]Breymann C,Schmidt D,Hoerstrup SP.Umbilical cord cells as a source of cardiovascular tissue engineering[J].Stem Cell Rev,2006,2(2):87-92.
[23]Schmidt D,Mol A,Breymann C,et al.Living autologous heart valves engineered from human prenatally harvested progenitors[J].Circulation,2006,114(1 Suppl):125-131.
[24]Penolazzi L,Tavanti E,Vecchiatini R,et al.Encapsulation of mesenchymal stem cells from wharton's jelly in alginate microbeads[J].Tissue Eng Part C Methods,2010,16(1):141-155.
[25]Kenar H,Kose GT,Toner M,et al.A 3d aligned microfibrous myocardial tissue construct cultured under transient perfusion[J].Biomaterials,2011,32(23):5320-5329.
[收稿日期]2012-11-10 [修回日期]2013-01-14
編輯/李陽(yáng)利