唐春花 郭淮蓮, 唐文雄, 張偉赫
腦缺血后腦內(nèi)血管生成情況與神經(jīng)功能恢復(fù)有著密切的相關(guān)性。Krupinski等[1]研究發(fā)現(xiàn)腦梗死患者缺血腦區(qū)微血管密度顯著增加,梗死區(qū)域新生血管數(shù)目越多則患者存活時(shí)間越長(zhǎng)。治療性血管生成的概念日益受到重視,通過重組腺病毒方式將促血管生成的基因轉(zhuǎn)染到腦組織從而刺激和誘導(dǎo)血管增生成為目前治療缺血性腦血管病的研究熱點(diǎn),為治療缺血性腦血管病開辟了一條全新的思路[2]。血管生長(zhǎng)素(angiogenin,ANG)是一種有效的促血管生長(zhǎng)因子,具有很強(qiáng)的誘導(dǎo)新生血管生成和生長(zhǎng)的作用[3]。研究已經(jīng)證實(shí),外源性給予ANG能刺激缺血區(qū)側(cè)支循環(huán)形成和增加局部血流,減少細(xì)胞凋亡,明顯改善動(dòng)物肢體缺血[4]和心肌缺血[5]。ANG 對(duì)缺血腦組織的作用目前報(bào)道尚少。本研究利用大鼠腦缺血再灌注模型,采用側(cè)腦室內(nèi)注射方式轉(zhuǎn)染Ad-ANG,探討ANG基因轉(zhuǎn)染對(duì)大鼠損傷腦組織的作用。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 雄性SD大鼠32只,體重280~330g,由北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。隨機(jī)分成重組血管生長(zhǎng)素腺病毒治療組(Ad-ANG治療組,含綠色熒光蛋白基因)和重組綠色熒光蛋白腺病毒處理組(Ad-GFP對(duì)照組),每組16只。兩組均在大腦中動(dòng)脈阻塞再灌注術(shù)后24h經(jīng)側(cè)腦室注射相應(yīng)的重組腺病毒。
1.2 藥品、試劑及儀器 重組血管生長(zhǎng)素腺病毒(Ad-ANG,含GFP基因)及重組綠色熒光蛋白腺病毒 Ad-GFP(Biosea),2.5X1011pfu/ml。兔抗大鼠ANG多克隆抗體(Santa Cruz),兔抗大鼠vWF多克隆抗體(Abcom),二步法免疫組織化學(xué)試劑盒(北京中山金橋生物技術(shù)公司),TUNEL試劑盒(R&D)。儀器:Leica DM RXA顯微鏡(德國(guó))。
1.3 大鼠線栓法腦缺血再灌注模型[6]及側(cè)腦室注射[7]大鼠10%水合氯醛(0.35g/kg)腹腔麻醉后取仰臥位,做頸部前正中切口,分離暴露左側(cè)頸總動(dòng)脈、頸外動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈及翼腭動(dòng)脈,用微動(dòng)脈夾暫時(shí)夾閉頸總動(dòng)脈,結(jié)扎翼腭動(dòng)脈,并在頸外動(dòng)脈近心端、遠(yuǎn)心端分別穿線,遠(yuǎn)心端系緊,近心端系一個(gè)松結(jié)(備用),在頸外動(dòng)脈的兩線間剪一個(gè)小口,將預(yù)先制備好的線栓,經(jīng)小口插入頸外動(dòng)脈并送入頸內(nèi)動(dòng)脈,插入深度(距頸總動(dòng)脈分叉處)為(18.5±1.5)mm。外留1cm長(zhǎng)尼龍線,縫合皮膚。栓塞90min后拔除尼龍線,此時(shí)血流再通,制成腦缺血再灌注模型。動(dòng)物蘇醒后表現(xiàn)為提尾時(shí)右側(cè)前肢內(nèi)收屈曲;同側(cè) Horner征;爬行時(shí)向右劃圈;站立時(shí)右側(cè)傾倒。凡具有上述4項(xiàng)體征者列入研究對(duì)象。
缺血再灌注后24h行側(cè)腦室注射。將鼠固定于腦立體定位儀上,暴露顱骨,以顱骨面人字為體表標(biāo)志,參照腦立體定位圖譜,取前囟后0.8mm、左旁開1.2mm,牙科鉆垂直鉆孔,用微量加樣器分別抽吸10μl的Ad-ANG或Ad-GFP垂直進(jìn)針5mm,緩慢注入側(cè)腦室,注射時(shí)間10min,留針5min后緩慢拔出。
1.4 神經(jīng)功能缺失評(píng)分 參照 Zea-Longa法[8]進(jìn)行神經(jīng)病學(xué)評(píng)分,即無(wú)神經(jīng)損傷癥狀為0分,不能完全伸展對(duì)側(cè)前爪1分,行走時(shí)身體向偏癱側(cè)轉(zhuǎn)圈為2分,行走時(shí)向偏癱側(cè)傾倒或動(dòng)物不能站立或動(dòng)物打滾為3分,無(wú)自發(fā)活動(dòng)、有意識(shí)障礙為4分。采用雙盲法于缺血再灌注時(shí)、側(cè)腦室注射時(shí)及注射后1d、3d、7d、14d 評(píng)分并記錄。
1.5 制備大鼠腦組織切片行熒光檢測(cè)及HE染色 大鼠腹腔麻醉后,經(jīng)左心室插管灌注。在相應(yīng)的時(shí)間點(diǎn)將每組大鼠快速灌流生理鹽水250ml(37℃),再用4%多聚甲醛溶液300ml(4℃)灌流,維持20~30min,迅速取出腦。在大鼠腦切片器中沿視交叉冠狀位切取腦組織,將其置于4%多聚甲醛4℃過夜,換20%蔗糖浸泡至沉底,再換30%蔗糖,待腦組織沉底后 OCT包埋,冰凍切片,制成20μm厚的切片,每隔5張取連續(xù)5張貼片,每只大鼠取5張腦片于熒光顯微鏡下觀察熒光表達(dá)情況。另取一套腦切片行常規(guī)HE染色,脫水封片后于光鏡下觀察。
1.6 免疫組織化學(xué)染色檢測(cè)ANG陽(yáng)性細(xì)胞切片入0.01mol/L PBS水化30min,3%過氧化氫10min,血清封閉1h(室溫),滴加 ANG(1∶100)抗體50μl于各切片上,入4℃冰箱過夜。次日滴加二抗,室溫下孵育1h。各步驟間均入0.01mol/L PBS搖洗3次,DAB顯色,常規(guī)梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察并計(jì)數(shù)ANG陽(yáng)性細(xì)胞。于室管膜周圍計(jì)數(shù)固定得2個(gè)高倍視野,缺血皮層下計(jì)數(shù)3個(gè)高倍(×40)視野,每組大鼠測(cè)量8張腦片,每張腦片選取固定得相同的5個(gè)位置點(diǎn)。
1.7 微血管密度檢測(cè) 采用兔抗大鼠vWF抗體(1∶800)及改良二步法試劑盒,進(jìn)行免疫組織化學(xué)反應(yīng),二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色,蘇木素復(fù)染,封片觀察。微血管密度(MVD)計(jì)數(shù)按 Weidener等[9]方法進(jìn)行,凡染成棕黃色的單個(gè)內(nèi)皮細(xì)胞或內(nèi)皮細(xì)胞簇作為一個(gè)血管計(jì)數(shù),每張切片在同一皮層缺血區(qū)選擇5個(gè)高倍視野進(jìn)行微血管計(jì)數(shù),計(jì)算出每1mm2面積內(nèi)微血管的數(shù)量,即微血管密度,然后求其均值。每組大鼠選取5個(gè)腦片進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.8 凋亡細(xì)胞TUNEL染色 采用凋亡細(xì)胞DNA原位末端標(biāo)記法(TUNEL)標(biāo)記凋亡細(xì)胞。按神經(jīng)細(xì)胞及組織原位凋亡檢測(cè)試劑盒操作步驟進(jìn)行染色,顯微鏡下觀察凋亡陽(yáng)性細(xì)胞的表達(dá)。選取缺血區(qū)額頂葉皮質(zhì)上部3個(gè)高倍視野,內(nèi)側(cè)尾狀核區(qū)2個(gè)高倍(×40)視野進(jìn)行凋亡細(xì)胞計(jì)數(shù)。
2.1 神經(jīng)功能缺失評(píng)分 腦缺血再灌注大鼠側(cè)腦室注射重組腺病毒后3d及7d,與Ad-GFP對(duì)照組比較,Ad-ANG治療組大鼠神經(jīng)功能缺失評(píng)分顯著降低(P<0.05),1d和14d時(shí)兩組間神經(jīng)功能缺失評(píng)分無(wú)顯著差別(見圖1)。
2.2 綠色熒光蛋白的表達(dá) Ad-ANG治療組和Ad-GFP對(duì)照組大鼠側(cè)腦室注射重組腺病毒后1d、3d時(shí),熒光顯微鏡下可見室管膜周圍及脈絡(luò)叢有較強(qiáng)的綠色熒光,強(qiáng)度顯著高于7d和14d(P<0.05),7d后兩組大鼠上述部位熒光較前減弱,14d時(shí)兩組大鼠均僅見脈絡(luò)叢有微弱的綠色熒光,Ad-ANG治療組和Ad-GFP對(duì)照組在各時(shí)間點(diǎn)的熒光強(qiáng)度無(wú)顯著差異。
2.3 HE染色結(jié)果 各組大鼠缺血腦區(qū)均有不同程度神經(jīng)細(xì)胞變性壞死,間質(zhì)水腫,膠質(zhì)細(xì)胞增生;部分呈點(diǎn)片狀,島狀梗死灶,范圍大小不等。與對(duì)照組相比,Ad-ANG治療組壞死區(qū)縮小,上述各種病理表現(xiàn)程度減輕。
2.4 ANG免疫組織化學(xué)染色結(jié)果 ANG陽(yáng)性細(xì)胞呈棕黃色。Ad-ANG治療組大鼠鏡下可見室管膜周及缺血皮層及皮層下大量ANG陽(yáng)性細(xì)胞,側(cè)腦室注射后3d、7d時(shí)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)高于14d(P<0.05)。Ad-GFP對(duì)照組也有少量ANG細(xì)胞的表達(dá),主要分布于缺血區(qū)大腦皮質(zhì)及皮質(zhì)下,各時(shí)間點(diǎn)陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)明顯低于Ad-ANG治療組(見圖2)。
2.5 缺血腦區(qū)微血管密度分析 vWF免疫組織化學(xué)染色結(jié)果顯示,缺血腦區(qū)微血管形態(tài)不規(guī)則,管腔由染成棕黃色的內(nèi)皮細(xì)胞圍成,部分血管無(wú)明顯管腔,內(nèi)皮細(xì)胞呈條索狀,有的只見單個(gè)或成簇的內(nèi)皮細(xì)胞。Ad-ANG治療組大鼠側(cè)腦室注射后3、7和14d時(shí)梗死周邊區(qū)可見較多散在的單個(gè)內(nèi)皮細(xì)胞,微血管數(shù)量明顯多于Ad-GFP對(duì)照組(P<0.01)(見圖3)。
2.6 TUNEL染色結(jié)果 TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞呈棕褐色,胞體縮小,可見核固縮和核破裂,主要分布在腦梗死灶及其周圍。在側(cè)腦室注射后3d、7d、14d,與Ad-GFP對(duì)照組相比,Ad-ANG治療組缺血腦組織凋亡神經(jīng)細(xì)胞數(shù)目顯著減少(P<0.05)(見圖4)。
圖1 Ad-ANG治療組和Ad-GFP對(duì)照組大鼠神經(jīng)功能缺失評(píng)分在腦缺血再灌時(shí)、側(cè)腦室注射時(shí)及注射后隨時(shí)間變化趨勢(shì)圖,與Ad-ANG組相比較*P<0.05
圖2 腦缺血再灌注大鼠側(cè)腦室內(nèi)注射重組ANG腺病毒后腦內(nèi)ANG陽(yáng)性細(xì)胞計(jì)數(shù)情況,與Ad-GFP組比較#P<0.01;與Ad-ANG治療1d組比較a P<0.05;與Ad-ANG治療14d組比較b P<0.05
圖3 腦缺血再灌注大鼠側(cè)腦室注射重組腺病毒后不同時(shí)間點(diǎn)缺血皮層微血管密度(血管數(shù)/mm2)
圖4 腦缺血再灌注大鼠側(cè)腦室注射重組腺病毒后不同時(shí)間點(diǎn)各組大鼠缺血腦區(qū)TUNEL陽(yáng)性細(xì)胞計(jì)數(shù)
腦缺血后梗死灶周圍血管通過新生血管供應(yīng)缺血組織有助于缺血后神經(jīng)功能恢復(fù),補(bǔ)充外源性促血管生成因子有助于缺血腦區(qū)血管數(shù)目增加,減輕缺血性損害[10,11]。全身給予促血管生長(zhǎng)因子的有益作用依賴于治療的時(shí)間點(diǎn),腦缺血再灌注后1~3d給予促血管生長(zhǎng)因子可促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù)[10]。
血管生長(zhǎng)素ANG是一種單鏈蛋白質(zhì),分子量為14.4kD,在血管生長(zhǎng)過程中的多個(gè)環(huán)節(jié)均有作用[3]。在生理狀態(tài)下 ,ANG的表達(dá)受到嚴(yán)格的調(diào)控,缺氧及局部浸潤(rùn)的巨噬細(xì)胞分泌TNF2α、IL-1β等因子能誘發(fā)ANG表達(dá)的增加,從而促進(jìn)血管的生成[12]。我們既往研究[6]也發(fā)現(xiàn)大鼠腦缺血后再灌注腦內(nèi)ANG的表達(dá)明顯增高,提示ANG可能參與腦缺血后腦組織的修復(fù)。外源性給予ANG能刺激缺血區(qū)側(cè)支循環(huán)形成和增加局部血流,并且已在外周動(dòng)脈閉塞性模型[4]及慢性心肌缺血模型[5]中成功應(yīng)用。
本實(shí)驗(yàn)中大鼠于腦缺血再灌注24h后側(cè)腦室注射Ad-ANG,熒光顯微鏡下發(fā)現(xiàn)綠色熒光蛋白在室管膜周圍以及脈絡(luò)叢表達(dá),注射3d后表達(dá)最為強(qiáng)烈,14d時(shí)脈絡(luò)叢仍有微弱表達(dá),并有逐漸向缺血腦區(qū)遷移的趨勢(shì),提示側(cè)腦室注射重組病毒可以在腦損傷大鼠腦內(nèi)存活,轉(zhuǎn)染的Ad-ANG載體能夠在腦組織內(nèi)表達(dá),并能向缺血腦區(qū)移行。染色顯示Ad-ANG治療組缺血腦區(qū)間質(zhì)的水腫和神經(jīng)元的受損有明顯減輕,大鼠室管膜周圍及缺血皮層及皮層下可見大量ANG陽(yáng)性細(xì)胞,在注射后3d、7d、14d時(shí)大鼠缺血區(qū)微血管的密度顯著高于Ad-GFP對(duì)照組,提示側(cè)腦室內(nèi)注射Ad-ANG能在較長(zhǎng)時(shí)間內(nèi)上調(diào)腦缺血大鼠腦內(nèi)ANG蛋白表達(dá),促進(jìn)新生血管的生成,在減輕腦缺血性損傷,對(duì)缺血再灌注損傷腦組織有保護(hù)作用。
細(xì)胞凋亡在腦缺血后腦神經(jīng)損害中起著重要作用。抑制缺血后細(xì)胞凋亡是減輕腦缺血損傷的重要手段。本研究觀察到,在側(cè)腦室注射Ad-ANG后3d、7d、14d時(shí)腦梗死灶周圍組織凋亡細(xì)胞數(shù)顯著減少,提示ANG對(duì)腦缺血的保護(hù)作用可能還通過減少神經(jīng)細(xì)胞缺血性凋亡而實(shí)現(xiàn)。
小結(jié):本研究結(jié)果提示重組腺病毒介導(dǎo)的血管生長(zhǎng)素基因轉(zhuǎn)染可以促進(jìn)腦缺血大鼠缺血腦區(qū)新生血管的生成,減輕腦水腫,減少凋亡細(xì)胞數(shù)目等,從而促進(jìn)神經(jīng)功能的恢復(fù)。
[1]Krupinski J,Kaluza J,Kumar P,etal.Role of angiogenesis in patients with cerebral ischemic stroke[J].Stroke,1994,25:1794-1798.
[2]Szpak GM,LechowiczW,Lewandowska E,etal.Border zone neovascularization in cerebral ischemic infarct[J].Folia Neuropathol,1999,37(4):264-268.
[3]Moenner M,Gusse M,Hatzi E,etal.The widespread expression of angiogenin in different human cells suggests a biological function not only related to angiogenesis[J].Eur J Bioehem,1994,226:483-490.
[4]King TV,Vallee BL.Neovascularization of themeniscuswith angiogenin.An experimental study in rabbits[J].J Bone Joint Surg Br,1991,71(4):587-589.
[5]Liu XH,Bai CG,Xu ZY,etal.Therapeutic potential of angiogenin modified mesenchymal stem cells:angiogenin improvesmesenchymal stem cells survival under hypoxia and enhances vasculogenesis inmyocardial infarction[J].Microvasc Res,2008,76(1):23-30.
[6]Huang L,Huang Y,Guo H.Dominantexpression of angiogenin in NeuN positive cells in the focal ischemic rat brain[J].JNeurological Sci,2009,285(1 ~ 2):220-223.
[7]Paxinos G,Watson C.The rat brain in stereotaxic coordinates[M].6th.New York:Academic Press,2007.188-207.
[8]Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,etal.Reversiblemiddle cerebral artery occlusion without cranietomy in rats[J].Stroke,1989,20(1):84-91.
[9]Weidner N,F(xiàn)olkman J,Pozza F,etal.Tumor angiogenesis:a new significant and independent prognostic indicator in early-stage breast carcinoma[J].JNatl Cancer Inst,1992,84(24):1875-1887.
[10]Yang JP,Liu HJ,Liu XF.VEGF promotes angiogenesis and functional recovery in stroke rats[J].JInvest Surg,2010,23(3):149-155.
[11]Matsuse D,Kitada M,Ogura F,etal.Combined transplantation of bonemarrow stromal cell-derived neural progenitor cells with a collagen sponge and and basic fibroblast growth factor releasingmicrospheres enhances recovery after cerebral ischemia in rats[J].Tissue Eng Part A,2011,17(15 ~16):1993-2004.
[12]Carmeliet P.Angiogenesis in health and disease[J].Nat Med,2003,9:653-660.