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    擬南芥abf3和abf4突變體對ABA和鹽脅迫響應(yīng)

    2012-08-16 08:27:00朱明鯤
    關(guān)鍵詞:胚率根長突變體

    劉 帥,朱明鯤,劉 旭,李 玲

    (華南師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,廣東省植物發(fā)育生物工程重點實驗室,廣東廣州510631)

    ABF是一類AREB類轉(zhuǎn)錄因子,可以與ABA誘導(dǎo)基因的啟動子區(qū)域結(jié)合調(diào)節(jié)下游靶基因的表達[1].2000 年,UNO 等[2]和 CHOI等[3]分別從擬南芥中分離出4種bZIP蛋白,其中ABF1主要參與低溫、ABA脅迫的應(yīng)答反應(yīng);ABF3主要受 ABA、高鹽、低溫、熱、氧化脅迫誘導(dǎo);ABF2/AREB1、ABF4/AREB2則主要參與ABA、干旱、高鹽、熱和氧化脅迫應(yīng)答反應(yīng)[2].AREBs轉(zhuǎn)錄因子特異存在于植物中,超表達和abf4突變體植株,分析它們對ABA和鹽脅迫響應(yīng)特點,揭示ABF3和ABF4的功能差異,為深入研究ABF在ABA信號途徑的作用提供依據(jù).

    1 材料與方法

    1.1 材料與處理

    哥倫比亞生態(tài)型野生型擬南芥(Columbia,縮寫為Col).擬南芥突變體abf3(SALK 127755)和abf4(SALK 069523)購于擬南芥資源中心(Arabidopsis Biological Resource Center,ABRC),經(jīng)本實驗室純化鑒定.

    ABA處理:種子消毒后,播種于含有不同濃度的ABA的1/2MS固體培養(yǎng)基上,4℃放置2 d,然后在光照培養(yǎng)箱中(晝夜溫度為22°/20°,光照周期為16 h/8 h,平均濕度為40% ~60%)培養(yǎng).

    鹽脅迫處理:種子播種于含有 0、100、200 mmol/L NaCl的1/2MS固體培養(yǎng)基上,4℃同步化處理2 d,然后光照培養(yǎng)箱中(晝夜溫度為22°/20°,光照周期為16 h/8 h,平均濕度為40% ~60%)培養(yǎng).

    1.2 試驗試劑及PCR引物

    Taq DNA聚合酶、RNA提取試劑TRizol、DNase I(RNAase-free)、One Step RT-PCR試劑盒均購自TaKaRa;引物合成和PCR產(chǎn)物測序由上海英俊公司完成,名稱及序列如下:2Bd3-LP(ABF4)5’-GGGTTTTAGGGCTTGGATGCT-3’,2Bd3-R(ABF)5’-TTCACAGGCGCAGAAAATGCT-3’,ABF3-F 5’-TTGATGGTGTGAGTGAGCAGC-3’,ABF3-R 5’-TGGCAAGAGTTGGACGTTGTG-3’,LBa1 5’-TGGTTCACGTAGTGGGCCATCG-3’;其他常規(guī)試劑均為國產(chǎn)分析純.

    1.3 試驗方法

    1.3.1 RT-PCR檢測 按照 TaKaRa提供的 TR-izol使用方法提取南芥葉片RNA備用,使用one step RT-PCR對基因的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進行基因表達鑒定.程序:50℃逆轉(zhuǎn)錄30 min,94℃終止反應(yīng)2 min,94℃變性2 min,94℃變性 30 s,60℃退火30 s,72℃延伸70 s,28個循環(huán),72℃延伸5 min.質(zhì)量分數(shù)為1%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物.

    1.3.2 種子萌發(fā)率 種子經(jīng)春比后,在光照條件下培養(yǎng)1 d后,統(tǒng)計萌發(fā)率,每12 h統(tǒng)計1次,重復(fù)3次.

    1.3.3 綠胚率統(tǒng)計 種子經(jīng)光照培養(yǎng)16 d統(tǒng)計綠胚率,重復(fù)3次.

    1.3.4 根長比率 擬南芥在1/2 MS培養(yǎng)基培養(yǎng)至長出2片子葉(約3 d),點種在1/2MS固體培養(yǎng)基正常板和含質(zhì)量分數(shù)0.8%蔗糖的1/2MS固體培養(yǎng)基上,平板垂直培養(yǎng)8 d,測量主根長度.

    1.3.5 氣孔開度和開度率測定 3周齡葉片置于氣孔開度溶液(KCl 50 mmol/L,CaCl250 μmol/L,MES 10mmol/L,pH 6.15)0.5 h,撕下葉片表皮立即放入固定液(V(無水乙醇)∶V(冰醋酸)=3∶1)中為對照葉片.處理葉片置于含10μmol/L ABA的氣孔處理溶液1 h后固定,顯微鏡下拍照記錄結(jié)果.

    1.3.6 葉綠素含量測定 參照李合生等[4]的方法測定和計算葉綠素含量,單位為mg/g.

    1.3.7 葉片黃化率統(tǒng)計 植株鹽處理采用人工澆鹽水的方式.選取規(guī)格一致的花盆裝入質(zhì)量相同的土,將在光照培養(yǎng)箱中生長至四片子葉的幼苗移栽入土中,每次實驗處理中野生系和轉(zhuǎn)基因系均為32株.在第3周,幼苗長到約12片葉時,進行即分別在第1、第 5、第 9 天分別澆 100、200、300 mmol/L 的NaCl溶液0.8 L,處理后第12~15天拍照,統(tǒng)計葉片黃化率.

    1.3.8 鹽脅迫葉片鮮重減少率統(tǒng)計 使用1.3.7中的植株,分別在鹽處理第1、15天統(tǒng)計葉片蓮座葉子鮮重,統(tǒng)計葉片鮮重變化率.

    1.3.9 數(shù)據(jù)統(tǒng)計 數(shù)據(jù)結(jié)果通過Excel 2003分析,T檢驗雙樣本異方差分析.

    2 結(jié)果與分析

    2.1 突變體的鑒定篩選

    根據(jù)abf3和abf4突變體的基因結(jié)構(gòu)圖譜(圖1 A)為依據(jù)合成基因表達鑒定的引物,通過RT-PCR檢測突變體中ABF3,ABF4基因表達的電泳圖.a(chǎn)bf3和abf4突變體株系中相應(yīng)突變基因在基因表達鑒定中均表達缺失(圖1B),表明基因組鑒定所得的abf3和abf4突變體植株為單基因缺失表達的純合子,用于后續(xù)生理實驗.

    圖1 abf3和abf4突變體的基因結(jié)構(gòu)圖譜(A)和分子鑒定(B)Figure 1 Schematic diagram(A)and molecular identification(B)of abf3 and abf4

    2.2 突變體對外施ABA的響應(yīng)

    種子在光照條件下培養(yǎng)60 h后,abf3、abf4在沒有ABA處理(對照)條件下,其萌發(fā)率與Col差別不明顯,經(jīng) 0.1、0.5、1.0 μmol/L ABA 處理的種子,萌發(fā)率均高于Col,均表現(xiàn)為對ABA不敏感,說明外源ABA抑制種子萌發(fā)通過ABF3和ABF4起作用(圖2).

    在正常生長條件下,擬南芥各株系綠胚率均為100%;abf3和abf4經(jīng)1μmol/L ABA 處理16 d,其綠胚率高于Col(圖3A),abf3綠胚率高于abf4植株,表明abf3和abf4顯著降低對ABA的敏感性,ABF3基因在響應(yīng)ABA信號途徑中所起的作用比ABF4明顯.

    分析ABA處理12 d后突變體和野生型的根長比率,結(jié)果表明,用20μmol/L或50μmol/L ABA處理abf3的根長比率都顯著高于Col;而20μmol/L ABA處理的abf4的根長比率與Col沒有明顯變化,但50μmol/L處理的abf4的根長比率低于Col(圖3B).表明與ABF4比較,ABF3基因的根生長在響應(yīng)ABA信號途徑中起到更關(guān)鍵作用的結(jié)果.

    abf3、abf4葉片經(jīng)氣孔開放乳液浸泡0.5 h后,其葉片的氣孔開度均比Col略大,但無明顯差異(圖4A).10μmol/L ABA 浸泡1 h處理的 abf3、abf4氣孔開率均比Col大,abf4氣孔開率變化僅為10%左右.說明 abf3、abf4的氣孔對 ABA的敏感性低于Col.ABF3、ABF4均參與ABA信號通路對氣孔開度的調(diào)節(jié),其中ABF4可能比ABF3起到更關(guān)鍵作用.

    2.3 abf3和abf4突變體對鹽脅迫響應(yīng)

    在含100 mmol/L NaCl的1/2MS的培養(yǎng)基培養(yǎng)16 d后,與在正常生長條件培養(yǎng)結(jié)果相比,abf3和abf4突變體的綠胚率比Col低,abf3對NaCl的相應(yīng)程度高于abf4(圖5).在150 mmol/L NaCl處理的abf3根長比率比Col高.當NaCl濃度為200 mmol/L時,abf3的根長比率高于Col,而abf4與Col無明顯差異.總之ABF3對NaCl的敏感性.

    圖2 不同濃度ABA處理對abf3和abf4突變體萌發(fā)率的影響Figure 2 Effect of applying ABA at different concentration on germination rates in abf3 and abf4 mutants

    圖3 不同濃度ABA處理對abf3和abf4突變體的綠胚率(A)和根長比率(B)的影響Figure 3 Effect of applying ABA on green cotyledon rates(A)and relative root length(B)in abf3 and abf4 mutants

    圖4 ABA處理對突變體氣孔開度的影響Figure 4 Effect of applying ABA on stomatal aperture in abf3 and abf4 mutants

    圖5 NaCl處理對突變體的綠胚率(A)和主根長比率(B)的影響Figure 5 Effect of NaCl on green cotyledon rates(A)and relative root length(B)of the ABFmutants and wild-type plants

    abf3和abf4突變體在100 mmol/L NaCl處理后葉片的葉綠素含量均大幅度降低,與野生型比較,abf3降低達到極顯著水平,說明ABF3、ABF4突變體在擬南芥的抗鹽性中發(fā)揮重要作用(圖6).

    擬南芥植株抽薹前在第1、第5、第9天分別用100、200、300 mmol/L 的 NaCl溶液進行根處理,3 次處理后第3~6 d,abf3、abf4植株葉片的黃化率均高于Col,且 abf3黃化現(xiàn)象極為明顯(表1).鹽處理的同時,稱量第1天、第15天植株蓮座葉的鮮重,abf3、abf4鮮重比正常條件下培養(yǎng)值明顯降低,較Col極為明顯(圖7).

    圖6 NaCl處理對突變體葉綠素含量的影響Figure 6 Effectof NaCl on total chlorophyll contents inmutants and wild-type plants

    表1 鹽脅迫下突變體植株葉片黃化Table 1 Yellowing rates of 3-week-old plants under NaCl stress

    3 討論

    目前認為AREB/ABF轉(zhuǎn)錄因子屬于bZIP轉(zhuǎn)錄因子家族中的A亞族,N端含有3個保守的結(jié)構(gòu)域(C1、C2、C3),C端前端包含1個高度保守的堿性亮氨酸拉鏈結(jié)構(gòu),結(jié)合DNA和其他蛋白,需要磷酸化修飾被激活[5].水稻在干旱和高鹽脅迫下,存在類似的AREB/ABF調(diào)節(jié)因子并受到SnRK2磷酸化作用,其中 3個 SnRK2基因被 ABA激活[6].水稻AREB1類似基因TRAB1被SnRK2蛋白激酶家族成員SAPK磷酸化,通過迅速磷酸化響應(yīng)ABA[7-8].

    圖7 NaCl處理下突變體葉片鮮重變化率Figure 7 Effect of NaCl on frash weight changing rate in mutants under high salt condition

    本實驗證實在abf3、abf4突變體植株中,葉片氣孔不能關(guān)閉,對外施ABA信號不敏感.在突變體抗旱性分析實驗中,發(fā)現(xiàn)abf3、abf4抗旱性均弱于Col植株,表現(xiàn)低抗旱性,可能與ABA的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)能力下降有關(guān);KIM等[9]發(fā)現(xiàn)超表達 ABF3或 ABF4/AREB2誘導(dǎo)ABA的超敏感,可提高轉(zhuǎn)基因植株的抗旱能力,與本實驗結(jié)果一致.作者推測ABA應(yīng)答因子如ABF3或ABF4等通過被SnRK2磷酸化調(diào)節(jié)蛋白活性,而ABF3或ABF4作為轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子結(jié)合在rd29B、rab18、ICK1、ABI1等眾多基因的啟動子區(qū)域[9],調(diào)節(jié)氣孔開閉,控制水分流失,抵御干旱.正常情況下,擬南芥中ABF3、ABF4在根、葉、花以及未成熟的果莢中均有表達,且根中表達量最高,但ABF3在葉中表達微弱,ABF4在葉中表達較高[10],推測可能也是abf3中,氣孔開度變化較abf4大的原因.

    在種子萌發(fā)和幼苗生長階段,abf3和abf4突變體植株對ABA敏感性(萌發(fā)、綠胚)較Col弱,在根長方面,abf3突變株對 ABA敏感性顯著降低,而abf4對ABA敏感性與Col無明顯差異;TAKUYA和YOSHIDA 等[11]通過對 abf2、abf3、abf4 單突變、雙突變以及三突變的生理表型分析認為在萌發(fā)及幼苗生長階段,轉(zhuǎn)錄因子ABF3在ABA信號通路中起到關(guān)鍵作用.a(chǎn)bf4對ABA的敏感性可能是由于ABF2與ABF4功能上的互補[12],與本實驗結(jié)果基本一致.

    abf3和abf4突變體對NaCl脅迫的敏感性大于Col,NaCl處理后突變體葉片葉綠素含量降低,黃化率增加,均表現(xiàn)出對鹽脅迫的低抗性,其中abf3對鹽的抗性較 abf4更低.推測 ABF3、ABF4作為SnRK2的底物被磷酸化,調(diào)控下游基因的表達,在這一過程中轉(zhuǎn)錄因子ABF3可能起著更關(guān)鍵的作用,有待深入研究.

    [1]洪嵐,劉旭,李玲.植物AREB/ABF轉(zhuǎn)錄因子及其參與的ABA信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[J].植物生理學(xué)報,2011,47(3):211-217.

    [2]UNO Y,F(xiàn)URIHATA T,ABE H,et al.Arabidopsis basic leucine zipper transcription factors involved in an abscisic acid-dependent signal transduction pathway under drought and high-salinity conditions[J].Proc Natl Acad Sci USA,2000,97:11632-11637.

    [3]CHOIH,HONG J,HA J,et al.ABFs,a family of ABA-responsive element binding factors[J].JBiol Chem,2000,275:1723-1730.

    [4]李合生,孫群,趙世杰,等.植物生理生化實驗原理和技術(shù)[M].北京:高等教育出版社,2000.

    [5]FURIHATA T,MARUYAMA K,F(xiàn)UJITA Y,et al.Abscisic acid-dependent multisite phosphorylation regulates the activity of a transcription activator AREB1[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103:1988-1993.

    [6]KOBAYASHIY,YAMAMOTO S,MINAMIH,et al.Differential activation of the rice sucrose non fermenting1-related protein kinase2 family by hyperosmotic stress and abscisic acid[J].Plant Cell,2004,16:1163-1177.

    [7]KAGAYA Y,HOBO T,MURATA M,et al.Abscisic acidinduced transcription is mediated by phosphorylation of an abscisic acid response element binding factor,TRAB1[J].Plant Cell,2002,14:3177-3189.

    [8]KOBAYASHIY,MURATA M,MINAMIH,et al.Abscisic acid-activated SNRK2 protein kinases function in the gene-regulation pathway of ABA signal transduction by phosphorylating ABA response elementbinding factors[J].Plant J,2005,44:939-949.

    [9]KANG JY,CHOIH I,IM M Y,et al.Arabidopsis basic leucine zipper proteins that mediate stress-responsive abscisic acid signaling[J].Plant Cell,2002,14:343-357.

    [10]KIM S,KANG JY,CHO D I,etal.ABF2,and ABRE-binding bZIP factor,is an essential componentof glucose signaling and its overexpression affects multiple stress tolerance[J].Plant J,2004,40:75-87.

    [11]YOSHIDA T,F(xiàn)UJITA Y,SAYAMA H,et al.AREB1,AREB2,and ABF3 are master transcription factors that cooperatively regulate ABRE-dependent ABA signaling involved in drought stress tolerance and require ABA for full activation[J].Plant J,2010,61:672-685.

    [12]SCHLOQIPS,NOQUEIA F T,DRUMMOND R,etal.Identification of new ABA and MEJA-activated sugarcane bZIP genes by data mining in the SUCEST dat abase[J].Plant Cell Rep,2008,27:335-345.

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