成 鳳 匡文斌 王 秦 秦曉林 范曉卿 董晉豫 梁勤東 李 樸 涂植光
(重慶醫(yī)科大學(xué)檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)院臨床檢驗(yàn)診斷學(xué)教育部重點(diǎn)試驗(yàn)室,重慶 400016)
IL-12是由單核巨噬細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞等分泌的具有免疫調(diào)節(jié)活性的細(xì)胞因子,由P35和P40兩個(gè)亞基通過二硫鍵相連而成,P35、P40任何一個(gè)亞基單獨(dú)存在時(shí)沒有生物學(xué)活性,只有不同基因編碼的兩個(gè)亞基結(jié)合成異二聚體才具有生物學(xué)作用[1]。IL-12主要參與細(xì)胞免疫,能夠與NK細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞等協(xié)同發(fā)揮抗腫瘤效應(yīng),也能夠通過自身或誘導(dǎo)其它因子如IFN-γ抗腫瘤,在發(fā)現(xiàn)的早期就開始臨床應(yīng)用研究,成為腫瘤免疫治療的研究熱點(diǎn)。但是全身應(yīng)用IL-12毒副作用大,而且半衰期短,制約了其在臨床的推廣應(yīng)用。因此,我們擬采用重組腺病毒作為基因治療的載體,將IL-12基因?qū)爰?xì)胞,在細(xì)胞內(nèi)高表達(dá)IL-12,發(fā)揮抗腫瘤作用。本研究中首先構(gòu)建攜帶IL-12雙亞基基因的腺病毒載體,觀察其對人肝癌細(xì)胞Hep3B增殖及轉(zhuǎn)化生長因子(TGF-β)表達(dá)的影響,為進(jìn)一步研究腫瘤免疫治療奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料 腺病毒穿梭質(zhì)粒pAdTrack-CMV、骨架質(zhì)粒pAdEasy-1和大腸桿菌BJ5183由美國芝加哥大學(xué)分子腫瘤實(shí)驗(yàn)室何通川教授饋贈(zèng)。人胚腎293細(xì)胞、人肝癌細(xì)胞Hep3B、大腸桿菌DH5α均由本室保存。LipofectamineTM2000購自Invitrogen公司。高保真酶、限制性內(nèi)切酶、T4DNA連接酶等均購自TaKaRa公司。質(zhì)粒提取試劑盒、凝膠回收試劑盒均購自O(shè)MEGA公司。鼠抗人IL-12單克隆抗體、鼠抗人β-actin單克隆抗體、HRP標(biāo)記兔抗鼠二抗均購自Santa Cruz公司。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) AD293、Hep3B在37℃、5%CO2條件下,用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)。
1.3 重組腺病毒載體的構(gòu)建及鑒定 以pEGFPN1-IL12p40-p35 為模板,以 p1(CGGGGTACCGCCACCATGTGTCACCAGCAGTTGGTC,下劃線部分是KpnⅠ酶切位點(diǎn))、p2(CCGCTCGAGTTAGGAAGCATTCAGATAGCTCATCA,下劃線部分是XhoⅠ酶切位點(diǎn))為引物,PCR擴(kuò)增IL-12 P40、P35雙亞基融合基因,產(chǎn)物以0.8%瓊脂糖凝膠電泳,回收融合目的基因。以 KpnⅠ、XhoⅠ雙酶切 pAdTrack-CMV和PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,回收目的DNA片段,用TaKaRa公司的T4 DNA連接酶進(jìn)行連接,PCR確認(rèn)正確的質(zhì)粒再經(jīng)雙酶切鑒定,送TaKaRa測序。測序正確的穿梭質(zhì)粒命名為:pAdTrack-IL-12。
CaCl2法制備大腸桿菌BJ5183感受態(tài)細(xì)胞,將骨架質(zhì)粒pAdEasy-1轉(zhuǎn)化入BJ5183,挑取單克隆提取質(zhì)粒,將從BJ5183和DH5α中提取的 pAdEasy-1質(zhì)粒分別用 HindⅢ和 PstⅠ進(jìn)行單酶切,并用0.8%的凝膠電泳鑒定,觀察電泳條帶的差別,鑒定正確的克隆用CaCl2法制備感受態(tài) AdEasier cell。Pme Ⅰ單酶切穿梭質(zhì)粒 pAdTrack-IL-12,乙醇沉淀法回收線性化DNA,轉(zhuǎn)化AdEasier cell,卡那霉素平板培養(yǎng)20小時(shí),挑取小菌落,提取質(zhì)粒,用PacⅠ酶切鑒定,用P1、P2 PCR鑒定,鑒定正確的重組質(zhì)粒命名為:pAd-IL-12。以同樣的方法構(gòu)建空載重組質(zhì)粒 pAd-EGFP。
1.4 重組腺病毒 pAd-IL-12的包裝及滴度測定PacⅠ單酶切重組質(zhì)粒pAd-IL-12,乙醇沉淀法回收線性化DNA。轉(zhuǎn)染前12小時(shí)將2×106個(gè)AD293細(xì)胞接種于25 cm2的組織培養(yǎng)瓶,按LipofectamineTM2000說明書的操作步驟,按3μg線性化DNA、15μl脂質(zhì)體(1∶5)的比例轉(zhuǎn)染,6小時(shí)后更換成含10%FBS的DMEM完全培養(yǎng)基。48小時(shí)通過熒光顯微鏡觀察綠色熒光蛋白表達(dá)情況,了解轉(zhuǎn)染效果。每48小時(shí)觀察熒光及細(xì)胞病變情況,監(jiān)測病毒產(chǎn)量。12天后3 500 r/min、4℃離心10分鐘,收集細(xì)胞。37℃、80℃之間反復(fù)凍融4次,期間不斷渦旋,2 200 r/min、4℃離心5分鐘,收集含病毒顆粒的上清。
感染前20小時(shí)將AD293接種于培養(yǎng)瓶,融合至80%時(shí)進(jìn)行感染,3天后細(xì)胞病變脫落,收集細(xì)胞,連續(xù)擴(kuò)增3代。
感染前20小時(shí)將AD293接種于24孔板,融合至80%時(shí)進(jìn)行感染。用無血清培養(yǎng)基將病毒作10-2到10-13倍比稀釋,每一稀釋度重復(fù) 2 孔,24 小時(shí)后熒光顯微鏡(×100)下計(jì)數(shù)熒光細(xì)胞,計(jì)算病毒滴度。
1.5 重組腺病毒感染Hep3B及IL-12基因表達(dá)的情況 分別用重組腺病毒pAd-IL-12及空載腺病毒pAd-EGFP感染Hep3B,48小時(shí)后通過熒光顯微鏡觀察綠色熒光蛋白表達(dá)情況,用Trizol提取細(xì)胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄后用引物 P1、P2進(jìn)行 PCR,檢測 IL-12基因mRNA水平的表達(dá)情況,并用 Western blot檢測IL-12蛋白表達(dá)情況。
1.6 表達(dá)IL-12對Hep3B細(xì)胞增殖的影響 收集對數(shù)期細(xì)胞,按6 000個(gè)細(xì)胞每孔接種細(xì)胞,37℃、5%CO2培養(yǎng)至細(xì)胞貼壁,分為空白對照組、空載腺病毒組及pAd-IL-12組,加入相應(yīng)的病毒。分別于感染后0、24、48和72 小時(shí)每孔加入20 μl MTT(5 mg/ml),繼續(xù)培養(yǎng)4小時(shí),吸去培養(yǎng)液,于孔內(nèi)加入150μl二甲基亞砜,輕輕振蕩10分鐘,用酶聯(lián)免疫檢測儀490 nm處測定各孔的吸光度值OD,每組3個(gè)復(fù)孔。
1.7 Hep3B細(xì)胞TGF-β 表達(dá)量的檢測 在 Gene-Bank查找TGF-β基因序列(NM_000660),設(shè)計(jì)合成引物(TGF-F:CATCAACGGGTTCACTACC;TGFR:CTCCGTGGAGCTGAAGCA,擴(kuò)增166 bp片段)。重組腺病毒感染Hep3B 48后,提取RNA,逆轉(zhuǎn)錄制備cDNA。設(shè)計(jì)內(nèi)參 β-actin 引物序列 β-actin-F:CTGGGACGACATGGAGAAAA;β-actin-R:AAGGAAGGCTGGAAGAGTGC,擴(kuò)增564 bp片段。以cDNA作模板,TGF-F、TGF-R、β-actin-F、β-actin-R 為引物,PCR 檢測TGF-β及內(nèi)參β-actin表達(dá)。PCR條件:94℃ 30秒,60℃ 30 秒,72℃ 30 秒,35 cycles。PCR 產(chǎn)物經(jīng)1.5%凝膠電泳,凝膠成像儀下觀察攝像,用軟件Quantity One對電泳區(qū)帶掃描,計(jì)算各組目的基因TGF-β與內(nèi)參β-actin的灰度比值,再進(jìn)一步統(tǒng)計(jì)分析。
1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 組間差異采用統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件SPSS16.0進(jìn)行方差分析,P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 重組腺病毒載體的構(gòu)建及鑒定 利用引物P1和P2,以構(gòu)建的腺病毒穿梭質(zhì)粒 pAdTrack-IL-12為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,產(chǎn)物通過0.8%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定,長度約1.7 kb(圖1)。重組穿梭質(zhì)粒經(jīng)雙酶切,可切下約1.7 kb的片段(圖1),與理論相一致。測序結(jié)果與GeneBank比對,堿基序列完全吻合(圖略)。
從AdEasier cell和DH5α中提取的腺病毒骨架質(zhì)粒pAdEasy-1分別用PstⅠ和HindⅢ酶切,得到完全相同的條帶(圖2),說明AdEasier cell中的骨架質(zhì)粒未發(fā)生變化,可供進(jìn)行重組。
用PacⅠ酶切重組腺病毒質(zhì)粒可以看到一條4.5 kb的條帶(圖 3A);以 pAd-IL-12 為模板 PCR 擴(kuò)增得到1.7 kb的片段(圖3B),說明成功構(gòu)建了IL-12重組腺病毒載體。
2.2 重組腺病毒的包裝及滴度測定 重組腺病毒質(zhì)粒轉(zhuǎn)染AD293,48小時(shí)觀察出現(xiàn)散在熒光;第7天出現(xiàn)成團(tuán)聚集的熒光,并能觀察到明顯的細(xì)胞病變,說明病毒包裝成功。4輪擴(kuò)增后得到1×1011滴度的病毒。
圖1 重組穿梭載體PCR、雙酶切鑒定結(jié)果Fig.1 PCR products and enzyme digestion maps of recombinant shuttle plasm id pAdTrack-IL-12
2.3 重組腺病毒感染Hep3B及IL-12基因表達(dá)的情況 腺病毒感染肝癌細(xì)胞后48小時(shí),約90%的細(xì)胞有綠色熒光蛋白表達(dá)(圖4),說明對肝癌細(xì)胞Hep3B,腺病毒是很好的基因載體工具。
感染病毒 pAd-IL-12的肝癌細(xì)胞 RT-PCR 可以檢測到目的基因的表達(dá)(圖5), Western blot在75 kD處有特異結(jié)合的條帶(圖6),而空白組和空載組則沒有,說明重組腺病毒攜帶的目的基因在肝癌細(xì)胞中可以正常表達(dá)。
2.4 表達(dá)IL-12對Hep3B細(xì)胞增殖的影響 感染病毒pAd-IL-12組與兩對照組相比,Hep3B細(xì)胞增殖顯著抑制(P<0.05);而空白對照組和空載組之間沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義差異(P>0.05,圖7)。
圖2 AdEasier cell鑒定Fig.2 Analysis pAdEasy-1 from AdEasier cell and DH5α
圖3 重組腺病毒質(zhì)粒pAdTrack-IL-12 PacⅠ酶切鑒定(A)和PCR鑒定(B)Fig.3 Identification of recombinant adenoviral plasm ids with PacⅠdigestion(A)and PCR(B)
2.5 檢測Hep3B細(xì)胞TGF-β的表達(dá)量 計(jì)算目的基因TGF-β與β-actin灰度值的比值,進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。與對照組(TGF-β/β-actin:0.37)相比,pAd-IL-12 感染組(TGF-β/β-actin:0.22)TGF-β 的表達(dá)量降低(P<0.05);而空白對照組和空載組(TGF-β/β-actin:0.36)沒有明顯差異(P >0.05,圖8)。
白介素12具有多種抗腫瘤相關(guān)生物學(xué)功能[2],如促進(jìn)Th0細(xì)胞向Th1細(xì)胞分化,增強(qiáng)細(xì)胞免疫;促進(jìn)T細(xì)胞、NK細(xì)胞的活化、增殖,并增強(qiáng)其細(xì)胞毒性;誘導(dǎo)細(xì)胞因子特別是IFN-γ的合成與分泌,通過α-趨化因子及 IFN-γ誘生蛋白10(IP-10)抑制腫瘤血管生成,是腫瘤免疫治療常用的細(xì)胞因子[3]。
臨床試驗(yàn)中IL-12的腫瘤治療作用得到了證實(shí),但是重組人IL-12全身用藥可導(dǎo)致一些毒副作用[4,5],而且半衰期短,停藥后作用迅速消失[6],所以局部應(yīng)用Il-12,特別是利用分子生物學(xué)技術(shù)內(nèi)源性表達(dá)IL-12,穩(wěn)定產(chǎn)生IL-12成為新途徑。現(xiàn)在常用的方法有瘤內(nèi)注射IL-12、病毒載體、脂質(zhì)體或電穿孔轉(zhuǎn)染質(zhì)粒、水流動(dòng)力學(xué)注射質(zhì)粒等,我們選擇了重組腺病毒。相較于其它方法,腺病毒具有滴度高、穩(wěn)定、不整合宿主基因組、給藥方便、感染范圍廣、安全的優(yōu)點(diǎn),并已被美國FDA批準(zhǔn)作為基因治療載體用于臨床試驗(yàn)。
轉(zhuǎn)化生長因子 β(Transforming growth factor-β,TGF-β)是一種能夠調(diào)節(jié)細(xì)胞生長、分化的多功能多肽超家族。TGF-β與腫瘤的關(guān)系非常復(fù)雜[7],在腫瘤發(fā)展的早期,TGF-β抑制腫瘤生長;而腫瘤進(jìn)展過程中TGF-β促進(jìn)血管形成、促進(jìn)腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移、抑制免疫反應(yīng)從而促進(jìn)腫瘤發(fā)展。隨著研究的不斷深入,TGF-β已經(jīng)成為腫瘤防治的靶基因[8]。實(shí)驗(yàn)證明,利用TGF-β單克隆抗體或者反義mRNA下調(diào)TGF-β,表現(xiàn)出抗腫瘤的作用。有研究表明IL-12和IFN-γ可以抑制TGF-β的表達(dá),并且在自身免疫性疾病的治療中起到重要作用[9],但是在腫瘤治療中關(guān)于IL-12和TGF-β的關(guān)系尚無報(bào)道。
文獻(xiàn)報(bào)道,TGF-β對腫瘤細(xì)胞的作用有細(xì)胞特異性[10]。對于Hep3B細(xì)胞,其表現(xiàn)為雙向性作用:應(yīng)用外源性 TGF-β 可以誘導(dǎo) Hep3B 凋亡[11],但TGF-β高表達(dá)的 Hep3B細(xì)胞表現(xiàn)出腫瘤治療抵抗[12],Shin 等[13]也證實(shí)腫瘤治療藥物他莫昔芬抑制Hep3B表達(dá)TGF-β從而抑制腫瘤生長。
本研究中我們成功構(gòu)建了攜人IL-12基因的重組腺病毒,構(gòu)建的重組腺病毒pAd-IL-12能高效感染Hep3B,并在 mRNA、蛋白水平高表達(dá) IL-12。高效的基因遞送系統(tǒng)是基因治療的基礎(chǔ),我們構(gòu)建的腺病毒對Hep3B有很好的感染及靶基因表達(dá)效率,說明對Hep3B而言,腺病毒是很好的基因運(yùn)載工具。研究中還發(fā)現(xiàn),在人肝癌細(xì)胞株Hep3B中,內(nèi)源性高表達(dá) IL-12可抑制腫瘤細(xì)胞增殖,并伴有TGF-β的表達(dá)的下調(diào),提示高表達(dá) IL-12抑制Hep3B細(xì)胞增殖的機(jī)制可能涉及下調(diào)TGF-β的表達(dá)。但由于前述IL-12和TGF-β對腫瘤細(xì)胞作用的復(fù)雜性,IL-12與TGF-β表達(dá)、Hep3B生長調(diào)控的確切關(guān)系尚需進(jìn)一步探討。
1 Yu D S,Lee C F,Hsieh D S etal.Antitumor effectsof recombinant BCG and interleukin-12 DNA vaccines on xenografted mutine bladder cancer[J].Urology,2004;63(3):596-601.
2 Schuetze N,Schoeneberger S,Mueller U et al.IL-12 family members:differential kinetics of their TLR4-mediated induction by Salmonella enteritidis and the impactof IL-10 in bonemarrow-derivedmacrophages[J].International Immunology,2005;17(5):649-659.
3 NakamoriM,LwahashiM,Nakamura M etal.Intensification of antitumor effect by T helper 1-dominant adoptive immunogene therapy for advanced orthotopic colon cancer[J].Clin Cancer Res,2003;9(6):2357-2365.
4 Leonard JP,Sherman M L,F(xiàn)isher G L etal.Effects of single-dose interleukin-12 exposure on interleukin-12-associated toxicity and interferon production [J].Blood,1997;90(7):2541-2548
5 Hurteau JA,Blessing JA,Decesare SL etal.Evaluation of recombinant human interleukin-12 in patients with recurrentor refractory ovarian cancer:a gynecologic oncology group study[J].Gynecol Oncol,2001;82(1):7-10.
6 Liu L,Sakaguchi T,Kanda T etal.Delivery of interleukin-12 in gelatin hydrogels effectively suppresses development of transplanted colonal carcinoma in mice[J].Cancer Chemotherapy & Pharmacology,2003;51(1):53-57.
7 Barcellos-Hoff M H,Akhurst R J.Transforming growth factor-beta in breast cancer:toomuch,too late[J].Breast Cancer Res,2009;11(1):202-202.
8 Leivonen SK,K?h?ri V M.Transforming growth factor-beta signaling in cancer invasion and metastasisis[J].Int J Cancer,2007;121(10):2119-2124.
9 Marth T,Strober W,Seder T R et al.Regulation of transforming growth factor-beta production by interleukin-12 [J].Euro J Immun,1997;27(5):1213-1220.
10 Yang L,Moses H L.Transforming growth factor beta:tumor suppressor or promoter?Are host immune cells the answer?[J].Cancer Res,2008;68(22):9107-9111.
11 Pang L,Qiu T,Cao X et al.Apoptotic role of TGF-β mediated by Smad4 mitochondria translocation and cytochrome c oxidase subunit II interaction [J].Exp Cell Res,2011;317(11):1608-1620.
12 Liu P,Menon K,Alvarez E et al.Transforming growth factor-beta and response to anticancer therapies in human liver and gastric tumors in vitro and in vivo[J].Int JOncol,2000;16(3):599-610.
13 Shin JW,Chung Y H,Park M I et al.The effects of tamoxifen on human hepatocellular carcinoma cell proliferation and transforming growth factor-beta1 expression [J]. Taehan Kan Hakhoe Chi,2003;9(1):6-10.