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    津黑兩地大白菜褐腐病病原菌鑒定及生物學(xué)特性的比較

    2012-06-12 03:10:28苗國輝聞鳳英張耀偉
    植物保護(hù) 2012年4期
    關(guān)鍵詞:核菌菌核氮源

    苗國輝, 聞鳳英, 張耀偉*

    (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,哈爾濱 150030;2.天津市農(nóng)業(yè)科學(xué)院科潤蔬菜研究所,天津 300384)

    大白菜[Brassica campestris L.ssp.pekinensis(Lour.)Olsson]是我國廣泛種植的蔬菜。褐腐病是大白菜生產(chǎn)中近幾年逐漸發(fā)展起來的病害,在武漢、天津、哈爾濱等地呈現(xiàn)出蔓延的趨勢,并被誤認(rèn)為細(xì)菌性軟腐病。大白菜褐腐病主要危害大白菜的葉柄,導(dǎo)致葉柄腐爛,使大白菜品質(zhì)降低,產(chǎn)量下降,其區(qū)別于細(xì)菌性軟腐病的特征是腐爛斑為褐色,無臭味。大白菜褐腐病致病菌為Rhizoctonia solani Kühn[1]。劉志恒[2]等對遼寧地區(qū)白菜葉腐病進(jìn)行鑒定,確定白菜葉腐病的病原菌是立枯絲核菌(Rhizoctonia solani Kühn)。何蘇琴等[3]通過對辣椒莖腐和根腐病的病組織進(jìn)行分離鑒定,發(fā)現(xiàn)辣椒莖腐和根腐病的致病菌是立枯絲核菌。立枯絲核菌是一類廣泛存在于自然界中、并能引起多種作物病害的土壤習(xí)居真菌,到目前為止,立枯絲核菌共劃分為14個(gè)融合群、21個(gè)融合亞群[4],Yang G H 等[5]確定甘藍(lán)葉腐病的病原菌是立枯絲核菌AG-4融合群;段春芳[6]等對云南地區(qū)的白菜、薄荷、萵苣葉腐病進(jìn)行鑒定,確定引起白菜、薄荷、萵苣葉腐病的病原菌是立枯絲核菌的AG-1IB亞群。Kuramae等[7]從巴西萵苣上分離的立枯絲核菌被鑒定屬于AG1-IA亞群;從花莖甘藍(lán)、菠菜、甜瓜、番茄4種作物上分離的立枯絲核菌被鑒定屬于AG-4融合群。肖勇等[8]通過對四川省水稻立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)進(jìn)行鑒定,分離得到55株立枯絲核菌,確定除D42菌株外,其余均屬于AG-1IA群;郭慶元等[9]研究發(fā)現(xiàn)立枯絲核菌的 AG-1、AG-2、AG-4也可危害豆類作物。

    本試驗(yàn)通過對天津、黑龍江兩省市大白菜褐腐病進(jìn)行田間癥狀觀察、病原菌的形態(tài)學(xué)鑒定及分子鑒定,確定兩地大白菜褐腐病的病原菌,并對兩地區(qū)的病原菌進(jìn)行生物學(xué)特性的比較分析。

    1 材料與方法

    1.1 田間癥狀調(diào)查與取樣

    對天津市農(nóng)業(yè)科學(xué)院科潤蔬菜試驗(yàn)站和哈爾濱市東北農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)實(shí)習(xí)基地的大白菜褐腐病癥狀進(jìn)行田間觀察,并取樣。

    1.2 病原菌鑒定

    1.2.1 病原菌的分離和純化

    將上述采集的病組織用水瓊脂法分離[10],病原菌經(jīng)分離純化后保存于PDA斜面培養(yǎng)基上,置于4℃冰箱儲存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 病原菌形態(tài)學(xué)鑒定

    將供試菌株接種于PDA平板上,25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d后,對其菌落形態(tài)進(jìn)行觀察。12d后觀察是否產(chǎn)生菌核。菌絲形態(tài)觀察采用鄧振山[11]、許志剛的方法[12]。

    1.2.3 病原菌致病性測定

    采用苗期離體葉片法對分離的菌株進(jìn)行致病性測定。在接種時(shí)取完整的幼嫩葉片,洗凈后置于鋪有無菌吸水紙的鐵盤中,并在鐵盤中加入少許無菌水以保持濕度。將菌株在PDA上進(jìn)行擴(kuò)繁,在25℃恒溫黑暗條件下培養(yǎng)3d,用直徑為6mm的打孔器在活化好的菌落邊緣打取菌絲塊,用無菌接種針將菌絲塊接種于葉柄上,每個(gè)菌株接種20個(gè)葉片,以瓊脂塊接種的葉片作為對照。

    1.2.4 病原菌分子鑒定

    病原菌DNA提取采用Sun的方法[13]。用真菌的ITS序列通用引物ITS1和ITS4[14]對病原菌的ITS序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系總體積為50μL,反應(yīng)液組分為:10×Buffer(含 mg2+)5μL,10mmol/L dNTP 4μL,5U/μLTap酶0.5μL,模板DNA1.0μL,用ddH2O使總體積達(dá)到50μL。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性3min;94℃變性1min;55℃退火1min,72℃延伸1min,共30個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10min。PCR產(chǎn)物通過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,克隆至pEASY-T3克隆載體上,再轉(zhuǎn)化至大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中(兩者均由全式金公司提供),在含IPTG、X-gal、氨芐青霉素的LB平板上進(jìn)行藍(lán)白斑法篩選,PCR檢測后送北京華大生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測序。測序結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫(www.ncbi.nlm.nih.gov)中進(jìn)行BLAST比對分析,并從GenBank中下載23個(gè)菌株的相關(guān)ITS序列,用DNAStar軟件Meglign程序構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

    1.2.5 病原菌融合群鑒定

    融合群鑒定標(biāo)準(zhǔn)菌株由華中農(nóng)業(yè)大學(xué)周而勛教授提供,采用陳延熙等改進(jìn)的玻片配對法[15],將已分離鑒定出的立枯絲核菌TJ、DB兩菌株分別與AG1~AG8及AG-BI標(biāo)準(zhǔn)測試菌株配對培養(yǎng)進(jìn)行融合群鑒定。

    1.3 津黑兩地病原菌生物學(xué)特性比較

    1.3.1 不同碳源對菌絲生長、菌核形成的影響

    基本培養(yǎng)基為查氏培養(yǎng)基[16],以其蔗糖含碳量42.07%為標(biāo)準(zhǔn),碳源用等質(zhì)量含碳量的葡萄糖、蔗糖、乳糖、果糖、可溶性淀粉代替。供試菌株在PDA平板上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下沿菌落邊緣打取直徑6mm的菌絲塊接種到不同碳源的查氏培養(yǎng)基上,25℃恒溫黑暗條件下培養(yǎng)。3d后測其菌落直徑,12d后測定氣生菌核干重。3次重復(fù)。

    1.3.2 不同氮源對菌絲生長、菌核形成的影響

    基本培養(yǎng)基為查氏培養(yǎng)基[16],以其硝酸鈉含氮量16.47%為標(biāo)準(zhǔn),氮源用等質(zhì)量含氮量的硝酸鉀、蛋白胨、硝酸銨、甘氨酸、硫酸銨5種氮源代替。供試菌株在PDA平板上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下沿菌落邊緣打取直徑6mm的菌絲塊,接種到含不同氮源的查氏培養(yǎng)基上,置于25℃恒溫黑暗條件下培養(yǎng)。3d后測其菌落直徑,12d后測定氣生菌核干重。3次重復(fù)。

    1.3.3 不同溫度對菌絲生長、菌核形成的影響

    供試菌株在PDA平板培養(yǎng)基上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下沿菌落邊緣打取直徑6mm的菌絲塊移植到PSA培養(yǎng)基平板中央,置于21、23、25、27、29℃不同溫度下恒溫黑暗培養(yǎng)。3d后測定菌落直徑,12d后測定氣生菌核干重。3次重復(fù)。

    1.3.4 不同pH對菌絲生長、菌核形成的影響

    供試菌株在PDA平板培養(yǎng)基上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下沿菌落邊緣打取直徑6mm的菌絲塊移植到pH 分別為5.0、6.0、7.0、8.0、9.0的PSA培養(yǎng)基平板中央。于25℃恒溫黑暗條件下培養(yǎng)。3d后測定菌落直徑,12d后測定氣生菌核干重。3次重復(fù)。

    1.3.5 不同光照條件對菌絲生長、菌核形成的影響

    供試菌株在PDA平板培養(yǎng)基上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下沿菌落邊緣打取直徑6mm的菌絲塊移植于PSA培養(yǎng)基平板中央,于25℃恒溫培養(yǎng)。光照分別為24h光照、12h光照、全黑暗。3d后測定菌落直徑,12d后測定氣生菌核干重。3次重復(fù)。

    1.3.6 菌絲、菌核致死溫度測定

    菌絲致死溫度測定:用水浴鍋設(shè)定40、42、44、46、48、50℃,將裝有無菌水的試管在水浴鍋里升至與水浴鍋的水相同溫度。供試菌株在PDA平板培養(yǎng)基上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)3d,在無菌條件下從邊緣打取直徑6mm的菌絲塊移植于裝有無菌水的試管里,在不同溫度下處理10min后,移植于PSA平板上,3d后觀察其菌絲生長狀況。3次重復(fù)。

    菌核致死溫度測定:供試菌株在PDA平板培養(yǎng)基上25℃恒溫黑暗培養(yǎng)12d后選取大小一致的菌核,將菌核移植于裝有無菌水的試管里,在不同溫度下處理10min后,在無菌環(huán)境下將菌核移植于PSA平板上,5d后觀察菌核萌發(fā)狀況。3次重復(fù)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 大白菜褐腐病癥狀

    大白菜褐腐病主要危害大白菜葉柄;病害初期從葉柄基部發(fā)病,病斑大小為1~4cm,病斑淺黃色且中間著生小黑點(diǎn),以后逐漸擴(kuò)大凹陷成褐色至深褐色大斑,有時(shí)病斑表面呈現(xiàn)隱約的輪紋,濕度大時(shí)病斑上密生灰白色菌絲,逐漸聚集成團(tuán),并形成褐色菌核;后期葉柄腐爛(圖1a、b)。

    圖1 大白菜褐腐病癥狀

    2.2 大白菜褐腐病病原菌分離

    2.2.1 病原菌形態(tài)特征

    菌絲初期白色,絨毛狀,有隔,近分支處有縊縮,分支初期成直角,后漸近銳角(圖2a)。生長后期,天津地區(qū)分離的TJ菌株的菌絲由白色變?yōu)楹稚酥辽詈稚▓D2b),黑龍江地區(qū)分離的DB菌株的菌絲由白色變?yōu)榈稚▓D2c),并在生長后期均形成菌核(圖2d)。

    圖2 立枯絲核菌菌絲及菌落形態(tài)特征

    2.2.2 致病性測定結(jié)果

    將分離到的病菌菌絲塊接種到大白菜葉柄上,結(jié)果表明,葉柄接種2d后,出現(xiàn)黑褐色腐爛病斑,接種5d(圖1c、d)后,病斑擴(kuò)大至整個(gè)葉柄,且葉柄腐爛。接種發(fā)病率為100%,且癥狀與田間發(fā)病癥狀相同。對照葉片未發(fā)病。對發(fā)病葉片進(jìn)行再分離,可分離到與接種菌株形態(tài)一致的病原菌。說明該菌為致病菌株。

    2.2.3 大白菜褐腐病分離菌株的分子鑒定

    用引物ITS1和ITS4擴(kuò)增了兩個(gè)菌株的核糖體基因ITS序列,利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。結(jié)果顯示,分離菌株的核糖體基因ITS序列全長為650bp左右,這與預(yù)期片段長度一致。經(jīng)北京華大基因公司對PCR產(chǎn)物測序,確定兩菌株的ITS序列全長均為663bp。將兩菌株的序列與GenBank數(shù)據(jù)庫中相關(guān)的立枯絲核菌菌株的基因序列進(jìn)行比對分析,結(jié)果表明TJ菌株ITS序列與Rhizoctonia solani isolate(JF817349.1、AY241 672.1、AY154 317.1,AB054 852.1、DQ279 002.1、EF532 828.1)相似性為100%,DB菌株序列與Rhizoctonia solani isolate(EU-591 761.1、DQ356 412.1、AF354 063.1、FJ435 141.1)相似性最高為99%。

    將兩個(gè)菌株與GenBank數(shù)據(jù)庫中立枯絲核菌5.8S rDNA-ITS序列比對,構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。從系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖3)可以看出,從大白菜褐腐病組織上分離的TJ菌株與Rhizoctonia solani isolate JF817 349列在同一組,表明它們之間差異不明顯,親緣關(guān)系近。而DB菌株獨(dú)立于其他立枯絲核菌菌株,表明DB菌株與其他已分離的立枯絲核菌菌株不同,為一株新的立枯絲核菌菌株,GenBank登錄號JN412 624。

    圖3 基于5.8SrDNA-ITS核苷酸序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹

    2.2.4 病原菌融合群鑒定

    融合群鑒定表明,天津地區(qū)分離的TJ菌株與AG-2-1融合群融合,而與AG-1-IA等其他9個(gè)菌株不融合;黑龍江地區(qū)分離的DB菌株與AG-1融合,而與AG-2等其他9個(gè)菌株不融合(表1)。因此確定TJ菌株屬于AG-2融合群,DB菌株屬于AG-1融合群。

    表1 TJ、DB兩菌株的融合群鑒定1)

    2.3 津黑兩地菌株的生物學(xué)特性比較

    2.3.1 不同碳源對菌絲、菌核生長的影響比較

    由圖4a①可知,不同碳源對兩菌株菌絲生長具有明顯的影響。兩菌株利用碳源相同點(diǎn)均是在以淀粉為碳源的查氏培養(yǎng)基上生長最快,在果糖上生長最慢,且與其他碳源呈顯著差異;不同點(diǎn)是以可溶性淀粉、葡萄糖為碳源時(shí),DB菌株生長速率較快,以果糖為碳源時(shí),TJ菌株生長速率較快。

    由圖4a②可知,兩菌株在不同碳源查氏培養(yǎng)基上生長時(shí),其菌核形成有明顯的差異。相同點(diǎn)是兩菌株在以可溶性淀粉為碳源生長時(shí)最先形成氣生菌核,且兩菌株在以蔗糖為碳源時(shí)形成的氣生菌核量均是最多,且與其他碳源呈顯著性差異。葡萄糖和可溶性淀粉次之,以乳糖和果糖為碳源時(shí)形成的氣生菌核量最少。半埋式菌核形成量均是蔗糖最多,葡萄糖和可溶性淀粉次之。兩菌株菌核形成差異是,TJ菌株在以乳糖和果糖為碳源的查氏培養(yǎng)基上生長時(shí)均生成半埋式菌核;DB菌株在以乳糖和果糖為碳源的查氏培養(yǎng)基上生長時(shí)未見半埋式菌核。并且TJ菌株在不同碳源的查氏培養(yǎng)基上生長時(shí)菌核形成量均快于并且多于DB菌株。

    圖4 TJ和DB菌株生物學(xué)特性比較

    2.3.2 不同氮源對菌絲、菌核生長的影響比較

    由圖4b①可知,不同氮源對兩菌株生長具有明顯影響。兩菌株利用氮源相同點(diǎn)是在以蛋白胨為氮源時(shí)生長最快,在以甘氨酸為氮源時(shí)生長最慢,且菌絲在兩氮源上的生長呈顯著性差異。兩菌株在氮源不同的查式培養(yǎng)基上生長時(shí)均是DB菌株生長速率快于TJ菌株。

    由圖4b②可知,在不同氮源查式培養(yǎng)基上生長時(shí),兩菌株菌核形成的相同點(diǎn)是,兩菌株均在以硝酸銨和硫酸銨為氮源時(shí)最先形成氣生菌核,氣生菌核量均是硫酸銨最多,且均以甘氨酸為氮源時(shí)形成氣生菌核量最少,并且兩氮源之間呈顯著性差異。兩菌株菌核形成差異是,TJ菌株在以硝酸鉀為氮源時(shí)最先形成半埋式菌核,且形成半埋式菌核量最多,與其他氮源呈顯著性差異;DB菌株在以硝酸銨為氮源時(shí)最先形成半埋式菌核,且形成半埋式菌核最多;在不同氮源上生長時(shí)TJ菌株與DB菌株相比菌核形成速度快且形成量大。

    2.3.3 不同溫度對菌絲、菌核生長的影響比較

    由圖4c①可知,兩菌株均在25℃時(shí)生長最快且菌絲層最厚,21~25℃菌絲生長差異不顯著,29℃時(shí)菌絲均生長最慢且菌絲層最薄,25℃和29℃條件下菌絲生長呈顯著性差異。并且在不同溫度下生長速度DB菌株普遍快于TJ菌株,DB菌株菌絲層厚度大于TJ菌株,氣生菌絲多于TJ菌株。

    由圖4c②可知,在不同溫度下生長時(shí),兩菌株形成菌核的相同點(diǎn)是,均在25℃時(shí)氣生菌核和半埋式菌核量最多。兩菌株不同點(diǎn)是,TJ菌株半埋式菌核量及氣生菌核量在29℃時(shí)均是最少,而DB菌株則是在21℃時(shí)半埋式菌核量最少,氣生菌核量則是29℃時(shí)最少;兩種菌株在不同溫度下生長時(shí)菌核形成速度及形成量均是TJ菌株快于并且大于DB菌株。

    2.3.4 不同pH對菌絲、菌核生長的影響比較

    由圖4d①可以看出,不同pH對兩菌株的菌絲生長影響也有明顯影響。兩菌株在pH7時(shí)生長均是最快且菌絲層最厚,pH9時(shí)均是生長最慢且菌絲層最薄且兩者之間呈顯著性差異,pH5~7菌絲生長差異不明顯。在不同pH條件下DB菌株的菌絲生長速度快于TJ菌株。

    由圖4d②可知,兩種菌株均在pH7時(shí)氣生菌核和半埋式菌核量最多,pH5時(shí)氣生菌核量均是最少,且pH5和pH7的菌核量呈顯著性差異,不同的是TJ菌株的菌核量多于DB菌株,并先于DB菌株形成菌核。

    2.3.5 不同光照對菌絲、菌核生長的影響比較

    由圖4e①可知,兩菌株均是在12h光照時(shí)菌絲生長最快且菌絲層最厚,而在全黑暗時(shí)菌絲生長最慢且菌絲層最薄。并且在不同光照條件下菌株生長速度DB菌株普遍快于TJ菌株。

    由圖4e②可知,兩種菌株均是在12h光照時(shí)氣生菌核和半埋式菌核量最多,全黑暗時(shí)氣生菌核和半埋式菌核量最少。不同的是TJ菌株的菌核量多于DB菌株,并先于DB菌株形成菌核。

    2.3.6 致死溫度比較

    由表2可知兩菌株相同點(diǎn)是在低于40℃下均能存活,而在42℃以上時(shí)菌絲均不能生長。兩菌株的不同點(diǎn)是菌核致死溫度TJ菌株為46℃,而DB菌株則為48℃。

    表2 TJ、DB兩菌株菌絲、菌核致死溫度的比較

    3 結(jié)論與討論

    通過對天津和黑龍江兩個(gè)地區(qū)的大白菜褐腐病病原菌常規(guī)分離鑒定、分子鑒定,確定導(dǎo)致兩地區(qū)大白菜褐腐病的致病菌為立枯絲核菌(Rhizoctonia solani Kühn),通過融合群鑒定及5.8SrDNA-ITS序列系統(tǒng)進(jìn)化樹分析確定兩菌株分別屬于AG-2和AG-1兩個(gè)融合群,并且DB菌株為一個(gè)新菌株,GenBank登錄號JN412 624。

    不同培養(yǎng)條件對菌絲生長影響的測定結(jié)果表明,TJ、DB兩菌株生長最適pH為7,與劉志恒等研究結(jié)果相似[1,18];兩菌株均是在以可溶性淀粉和蛋白胨為碳源和氮源的培養(yǎng)基上生長時(shí)菌絲生長最快,這與林清等人研究結(jié)果相似[17],而劉志恒等人從番茄莖基腐病分離的立枯絲核菌,最適氮源為硝酸鈉[18]。試驗(yàn)確定TJ、DB兩菌株的最適生長溫度為25℃,在12h光照時(shí)菌絲生長最快且菌絲層最厚,這與劉志恒結(jié)果不一致,其研究發(fā)現(xiàn)黑暗條件有利于白菜絲核菌葉腐病病原菌(Rhizoctonia solani Kühn)菌絲生長,而全光照與12h光暗交替條件下菌絲生長緩慢[2];同時(shí)劉志恒認(rèn)為導(dǎo)致番茄莖基腐病的立枯絲核菌最適溫度為20℃[18]。在菌核形成方面,TJ、DB菌株均是在pH7時(shí)、以可溶性淀粉為碳源的培養(yǎng)基上生長時(shí)最先形成氣生菌核,這與劉志恒等研究結(jié)果相似[2]。兩菌株在氮源、溫度對菌核形成影響上與劉志恒等結(jié)果有所差異[2,18];兩菌株均在12h光照條件下氣生菌核和半埋式菌核形成量最多,全黑暗條件下最少,而劉志恒等認(rèn)為光照對白菜絲核菌葉腐病病原菌(Rhizoctonia solani Kühn)菌核形成量無關(guān)[2]。同時(shí)張麗等認(rèn)為甘藍(lán)立枯絲核菌球腐病病原菌在連續(xù)光照下有利于菌核形成[4]。據(jù)此認(rèn)為,寄主來源不同的立枯絲核菌由于其各自發(fā)生環(huán)境不同或是菌群分化等的影響,致使病原菌某些生物學(xué)特性存在一定差異。

    本試驗(yàn)測定致死溫度時(shí),先將試管溫度升至設(shè)定的溫度,確定兩菌株的菌絲致死溫度均為42℃,菌核致死溫度則分別為TJ菌株46℃,DB菌株48℃;而劉志恒等認(rèn)為從番茄莖基腐病分離的立枯絲核菌菌絲致死溫度為50℃,菌核致死溫度為59℃[18];張麗等人認(rèn)為包菜立枯絲核菌球腐病病原菌菌絲致死溫度為45℃,菌核致死溫度為50℃[4]。這些差異還需進(jìn)一步研究驗(yàn)證。

    在不同碳源、氮源、溫度、pH下,DB菌株菌絲生長速度快于TJ菌株,但TJ菌株先于DB菌株形成菌核,并且菌核量多于DB菌株,說明兩個(gè)菌株在生長發(fā)育過程中存在明顯差異,形成了與兩地生態(tài)環(huán)境相適應(yīng)的無性繁殖過程。同時(shí)發(fā)現(xiàn)在不同碳源、氮源、溫度、pH下,兩菌株菌核形成存在明顯差異,如TJ菌株在以硝酸鉀為氮源的培養(yǎng)基上形成半埋式菌核量最多;DB菌株以硝酸銨為氮源的培養(yǎng)基上形成半埋式菌核最多,這可能與兩菌株分屬于不同融合群、具有不同生態(tài)適應(yīng)性有關(guān)。

    [1]呂佩珂,李明遠(yuǎn),吳鉅文,等.中國蔬菜病蟲害原色圖譜[M].第2版.北京:農(nóng)業(yè)出版社,1998.

    [2]劉志恒,李艷君.白菜絲核菌葉腐病病原菌鑒定及生物學(xué)特性研究[J].北方園藝,2009(5):57-60.

    [3]何蘇琴.引起辣椒莖腐和根腐的立枯絲核菌的生物學(xué)特性及致病性研究[J].甘肅農(nóng)業(yè)科技,2002(9):44-45.

    [4]張麗.包菜立枯絲核菌球腐病的病原學(xué)研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué)植物科技學(xué)院,2008.

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