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    水貂犬瘟熱動物模型的建立

    2012-01-30 08:02:14王勝樂王鐵成李元果于志君許薇薇岳秀芳鄭學星楊松濤趙永坤高玉偉夏咸柱
    中國比較醫(yī)學雜志 2012年11期
    關鍵詞:犬瘟熱水貂動物模型

    王勝樂,王鐵成,馮 娜,李元果,于志君,丁 潔,許薇薇,忻 悅,岳秀芳,王 錚,鄭學星,楊松濤,黃 耕,趙永坤,高玉偉,夏咸柱

    (1.吉林農業(yè)大學動物科學技術學院,長春 130062;2.中國軍事醫(yī)學院軍事獸醫(yī)研究所,長春 130062;

    3.吉林省人畜共患病預防與控制重點實驗室,長春 130062)

    水貂犬瘟熱動物模型的建立

    王勝樂1,2,3,王鐵成2,3,馮 娜1,2,3,李元果2,于志君2,丁 潔2,許薇薇2,忻 悅2,岳秀芳2,王 錚2,鄭學星2,3,楊松濤2,3,黃 耕2,3,趙永坤2,3,高玉偉2,3,夏咸柱2,3

    (1.吉林農業(yè)大學動物科學技術學院,長春 130062;2.中國軍事醫(yī)學院軍事獸醫(yī)研究所,長春 130062;

    3.吉林省人畜共患病預防與控制重點實驗室,長春 130062)

    目的 建立水貂犬瘟熱動物模型,并利用水貂犬瘟熱模型評價不同犬瘟熱強毒株的毒力,為水貂犬瘟熱病毒疫苗的研究奠定基礎。方法 從猴、藏獒、犬的病料中分離犬瘟熱病毒,測定犬瘟熱病毒的毒力,并進行傳代培養(yǎng)。利用犬的犬瘟熱動物模型篩選穩(wěn)定的犬瘟熱強毒株,進行水貂犬瘟熱動物模型的建立及其毒力評估。結果 篩選出了穩(wěn)定的犬瘟熱強毒株并進行了家犬動物實驗,同時表現出了強烈的臨床癥狀,并利用不同的代次毒進行了犬瘟熱動物模型的建立。結論 成功建立了犬瘟熱動物模型并對不同來源的犬瘟熱病毒毒力進行了評估。

    水貂;模型,動物;毒力評估;大瘟熱病毒

    犬瘟熱病毒屬于副粘病毒科麻疹病毒屬RNA病毒成員。水貂犬瘟熱又稱貂瘟,是一種嚴重危害水貂養(yǎng)殖的烈性傳染性疾病。水貂犬瘟熱呈現慢性或急性經過,慢性型的病程通常為2~4周,急性型的病程為3~10d,主要表現為眼和鼻內排出粘稠分泌物,有時會阻塞眼、鼻,體溫升高至40℃以上。當貂群中感染犬瘟熱病毒,經3~4周即可在貂群中廣泛傳播,癥狀嚴重,死亡率較高,有時可達80%~90%,對2~4月齡幼貂感染更為嚴重[1]。隨著水貂做為一種經濟動物在我國集約化養(yǎng)殖范圍越來越廣,規(guī)模逐漸擴大,一旦在貂場發(fā)生該病感染,很難治愈,同時發(fā)生犬瘟熱時會繼發(fā)細菌感染,為本病的治療又帶來了巨大困難,會給貂場造成了嚴重的經濟損失[2]。

    應用疫苗可以較好的的預防犬瘟熱病毒[3],犬瘟熱疫苗在犬等動物中取得較為滿意的預防效果,但在水貂中因缺少水貂動物模型[4],犬瘟熱疫苗在水貂中起到預防作用還不完全明確,為此,本試驗通過建立水貂犬瘟熱動物模型,并對毒力進行評估,為水貂犬瘟熱疫苗的研究提供理論和技術依據。

    1 材料和方法

    1.1 細胞、毒株及試驗動物

    細胞、毒株:Dog-DST細胞,犬瘟熱強毒株:猴源犬瘟熱(monkey-CDV)、藏獒源犬瘟熱(ZACDV)、黑川犬源犬瘟熱病毒(HC-CDV)由本實驗室分離、鑒定和保存。試驗動物:2~3月齡水貂 購自長春某水貂場。

    1.2 主要試劑

    抗CDV單克隆抗體 6H8由本實驗室制備;DMEM(HyClone);G418(Sigma公司);新生犢牛血清(長春西諾生物科技有限公司)。青霉素、鏈霉素(華聯(lián)醫(yī)藥有限公司);犬瘟熱診斷試劑盒,購自韓國BIT產品。

    1.3 主要儀器設備

    HEMAVET 950FS型血液五分類分析儀;電子顯微鏡(JEM-1200EXⅡ型,日本);XDS-1B倒置顯微鏡(中國上海);CO2細胞培養(yǎng)箱(Thermo);高速冷凍離心機(Centrifuge 5418,Eppendorf);生物安全柜(北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司);電子天秤(Sartorious);Tissuelyser II 型 組 織 研 磨 器(QIAGEN);制冰機(常熟市雪科電器有限公司);冰箱(Siemens)。

    1.4 試驗動物的選擇

    試驗前分別采集水貂血液,分離血清,并進行初步處理(各血清樣本56℃滅活30min,分別加青、鏈霉素4℃ 12h),進行中和試驗[5-6],選用血清犬瘟熱中和抗體效價小于1∶8的水貂進行試驗。

    1.5 犬瘟熱毒株毒力測定

    將分離培養(yǎng)穩(wěn)定的犬瘟熱病毒用無血清的細胞培養(yǎng)液按10倍連續(xù)稀釋10-1、10-2……10-6,每個稀釋度接種4個孔,每孔0.1mL,再于各孔中加入50μL Vero-DST細胞懸液,最后2列加細胞培養(yǎng)液,作為Vero細胞對照。置于5%CO2培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng),記錄細胞出現CPE,5d后,按Reed-Muench方法計算各毒株的TCID50,選病毒滴度為104TCID50/m L以上的犬瘟熱毒株進行試驗[7]。

    1.6 犬瘟熱病毒對水貂的攻毒試驗及臨床癥狀評分標準

    犬瘟熱病毒對水貂的攻毒試驗:為檢測犬瘟熱各毒株對水貂感染情況,進行攻毒試驗,試驗共分4組,第1組為對照組,其他各組為犬瘟熱攻毒組,見表1。隔天采血,每天測量體溫、收集糞便、鼻洗液、咽拭子及眼拭子,并用犬瘟熱診斷試劑盒檢測排毒情況[8]。

    (3)環(huán)境執(zhí)法監(jiān)測存在部門沖突。在縣級基層,政府并未建立專門的環(huán)境執(zhí)法監(jiān)測部門,主要以地方農業(yè)部門、環(huán)保部門等多個部門為主體實施。在此之下,環(huán)境執(zhí)法檢測浪費了過多行政資源,并且容易造成職能沖突,部門之間存在責任推卸,對環(huán)境執(zhí)法造成負面影響。

    臨床癥狀評分標準:主要依據水貂臨床癥狀等制定評分標準,評分高說明臨床癥狀明顯(表2)。

    表1 水貂犬瘟熱攻毒方法試驗設計Tab.1 The method of CDV infect the mink

    表2 水貂感染犬瘟熱臨床評分標準Tab.2 The standard score of the mink infected CDV

    1.7 水貂的血項檢測

    攻毒后從第0天隔日采血,并用抗凝管采集各組水貂血液,用HEMAVET 950FS型血液五分類分析儀對每只貂血液進行血相分析。

    1.8 水貂各臟器病理組織切片制備

    將即將死亡的水貂麻醉后,取肺、脾、腸等臟器于組織固定液中,選擇適宜時間制備石蠟切片。把各臟器修成厚度小于2mm的小組織塊,放入組織處理標準盒,流水沖洗24h后,利用生物組織自動脫水機進行脫水、透明和浸蠟;石蠟包埋機包埋成標準蠟塊,每個蠟塊切4μL厚的連續(xù)切片4片,進行編號,烘干后4℃保存.

    2 結果

    2.1 攻毒后水貂排毒情況

    犬瘟熱各毒病感染水貂后排毒時間并不相同,從收集各部分樣本檢測結果可初步判定各毒株在水貂各器官排毒情況也不相同,第4天開始,攻ZACDV的水貂,可以在其肛拭子、鼻洗液里檢測到犬瘟熱病毒,而Monkey-CDV毒株在肛拭子、鼻洗液里從第6天開始排毒,HC-CDV從第6天的肛拭子、鼻洗液開始檢測到犬瘟熱病毒。

    表3 第4天犬瘟熱病毒攻擊水貂結果Tab.3 The result of the mink infected CDV at the 4th day

    2.2 感染犬瘟熱病毒各組水貂臨床評分結果

    攻毒后第20天計算水貂臨床總體評分情況。感染藏獒源犬瘟熱病毒的水貂臨床癥狀特別明顯;感染猴源犬瘟熱病毒的水貂臨床癥狀較為明顯;感染犬源犬瘟熱病毒的水貂沒有表現出臨床癥狀(表4).

    表4 犬瘟熱病毒攻擊水貂20天后總體評分結果Tab.4 The overall score of the mink effected CDV after 20days

    2.3 水貂感染犬瘟熱病毒后血項變化

    水貂感染犬瘟熱后單核細胞、淋巴細胞和白細胞在感染后10~12d均明顯下降(圖1、2、3)。

    2.4 水貂感染犬瘟熱后體溫變化

    水貂感染犬瘟熱病毒后體溫不同程度呈現雙相熱變化(圖4、5、6)。

    2.5 感染犬瘟熱病毒組織病理變化

    感染犬瘟熱病毒水貂肺臟表現為間質性肺炎,肺泡間隔增厚,腸壁內毛細血管擴張,肺泡有滲出物,肺細胞大量增生(彩插3圖7);小腸絨毛短縮,上皮細胞脫落,黏膜固層毛血管擴張、充血(彩插3圖8)。

    水貂犬瘟熱目前已成為影響我國水貂養(yǎng)殖業(yè)的重要傳染性疾病,開始時在貂場小范圍傳播,繼而在整個水貂場流行,病死率高。建立水貂犬瘟熱動物模型不僅有助于水貂犬瘟熱病毒的研究,而且能夠為研制水貂犬瘟熱疫苗提供模型[10]。許多科研人員進行了雪貂犬瘟熱動物模型的建立,但是對于水貂犬瘟熱動物模型的研究還較少。

    圖1 感染犬瘟熱后水貂單核細胞變化Fig.1 The infected CDV mink monocytes change

    圖2 感染犬瘟熱后水貂淋巴細胞變化Fig.2 The infected CDV mink lymphocytes change

    圖3 感染犬瘟熱后水貂白細胞變化Fig.3 The infected CDV mink WBC change

    3 討論

    圖4 水貂感染藏獒源犬瘟熱后體溫變化1-4號為攻毒水貂,5號為對照Fig.4 The body temperature changes of the m ink infected Tibetan mastiff CDV

    圖5 水貂感染猴源犬瘟熱后體溫變化1-4號為攻毒水貂,5號為對照Fig.5 The body temperature changes of the mink infected monkey CDV

    圖6 水貂感染犬源犬瘟熱后體溫變化1-4號為攻毒水貂,5號為對照Fig.6 The body temperature changes of the m ink infected canine CDV

    本試驗中應用穩(wěn)定的藏獒源犬瘟熱病毒、猴源犬瘟熱病毒和犬源犬瘟熱病毒對水貂進行了攻毒試驗,確定了建立水貂犬瘟熱動物模型的犬瘟熱毒株。藏獒源犬瘟熱對水貂有較強的致病性,水貂臨床癥狀明顯通常表現為眼、鼻有粘稠分泌物,有的水貂眼被分泌物封閉,糞便呈黃綠色粘稠狀,體溫呈現雙相熱,有的水貂發(fā)生神經癥狀,食欲減退,病程為2-4周,最終因機體器官功能衰竭死亡。當水貂感染犬瘟熱病毒后的2周左右白細胞下降明顯,淋巴細胞和單核細胞也有不同程度的降低。病理組織切片表明,當水貂感染犬瘟熱病毒后期,肺內充滿炎性細胞和粘性分泌物,對小腸粘膜也有很大的損傷,常出現腸粘膜脫落,腸絨毛壞死等,這為臨床診斷水貂犬瘟熱病毒提供參考。

    在水貂犬瘟熱動物模型建立過程中,試驗重復了2次,均得到相同結果,建立的水貂犬瘟熱模型較為穩(wěn)定,這為水貂犬瘟熱疫苗研制,藥物開發(fā)均有較好研究基礎,同時建立的水貂犬瘟熱模型具有較好的應用前景。

    [1]殷震,劉景華.動物病毒學.北京:科學出版社,1997,704-725.

    [2]鞠會艷,夏咸柱,高玉偉,等.犬瘟熱病毒核蛋白基因重組腺病毒的構建、鑒定與表達[J].中國病毒學,2006,21(4):380-384.

    [3]Seehusen F,Orlando EA,Wewetzer K,et a l.Vimentin-positive astrocytes in canine distemper:a target for canine distemper virus especially in chronic demyelinating lesions[J]. Acta Neuropathol,2007,114(6):597-608.

    [4]Von Messling V,Springfeld C,Devaux P,et al.A ferret model of canine distemper virus virulence and immunosuppression[J].J Virol,2003,77(23):12579-12591.

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    The M ink M odel Establishm ent of Canine Distem per Virus

    WANG Sheng-le1,2,3,WANG Tie-cheng2,3,FENG Na1,2,3,LI Yuan-guo2,YU Zhi-jun2,DING Jie2,XU Wei-wei2,XIN Yue2,YUE Xiu-fang2,WANG Zheng2,ZHENG Xue-xing2,3,YANG Song-tao2,3,HUANG Geng2,3,GAO Yu-wei2,3,XIA Xian-zhu2,3
    (1.Jilin Agricultural university Institute of Animal Science;Changchun 130062,China;
    2.Military Veterinary institute,Academy of Military Medical Science of PLA,Changchun 130062,China;3.Institute of Military Veterinary,AMMS,Key laboratory of Jilin province for zoonosis
    prevention and control,Changchun 130062,China)

    Ob jective To establish a mink model of canine distemper virus,and different canine distemper virulent strain virulence was evaluated by the mink animal model for laying the foundation for the study of the canine distemper virus.M ethods Different canine distemper viruses were separated from specimens,cell-cultured,passaged and determined virulence of CDV.And we compared the virulence of different generation virulent strains,stable virulent strains were used for establishing mink canine distemper animal model and evaluated their virulence.Resu lts We screened 3canine distemper virulent strains and made dog animal experiments,the three viruses infected dogs and they showed a strong clinical symptoms,and mink animal model was established using different generations.Conclusion we successfully established the canine distemper animal model and evaluated virulence of CDV.

    Mink;Model,animal;Virulence evaluation;Canine distemper virus

    973農業(yè)生物安全項目(20120001)。

    王勝樂,男,碩士;研究領域:主要從事動物病毒學研究。E-mail:wangshengle19850919@gmail.com。

    夏咸柱,E-mail:xia_xzh@yahoo.com.cn;高玉偉,E-mail:gywtext@yahoo.com.cn。

    R332

    A

    1671-7856(2012)11-0054-05

    10.3969.j.issn.1671.7856.2012.0011.0012

    2012-10-19

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