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    山藥糖蛋白純化條件及其理化方法鑒定

    2011-11-14 07:14:58孫宇婧李麗萍
    中國糧油學(xué)報 2011年3期
    關(guān)鍵詞:糖蛋白柱層析蒸餾水

    孫宇婧 韓 濤 卞 科 李麗萍

    (北京農(nóng)學(xué)院食品科學(xué)系1,北京 102206)

    (陜西省榆林市農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全檢驗檢測中心2,榆林 719000)

    (河南工業(yè)大學(xué)3,鄭州 450002)

    (北京工商大學(xué)植物資源研究開發(fā)北京市重點實驗室4,北京 100037)

    山藥糖蛋白純化條件及其理化方法鑒定

    孫宇婧1,2韓 濤1卞 科3李麗萍4

    (北京農(nóng)學(xué)院食品科學(xué)系1,北京 102206)

    (陜西省榆林市農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全檢驗檢測中心2,榆林 719000)

    (河南工業(yè)大學(xué)3,鄭州 450002)

    (北京工商大學(xué)植物資源研究開發(fā)北京市重點實驗室4,北京 100037)

    采用熱水浸提法得到山藥糖蛋白粗提物,經(jīng)過不同洗脫液進(jìn)行DEAE-52柱層析純化和SephadexG-75柱層析純化,得到山藥糖蛋白組分CYG-1和CYG-2。其中,DEAE-52柱層析中以NaHCO3作為洗脫液時,只能得到1個CYG組分。I2-KI顯色反應(yīng)、茚三酮反應(yīng)、斐林試劑反應(yīng)、硫酸-咔唑反應(yīng)、以及與FeCl3反應(yīng)和與CTAB反應(yīng)、糖肽鍵特征等理化方法鑒定的結(jié)果表明,得到的CYG-1和CYG-2為純品,屬酸性糖蛋白,糖肽鍵為O-糖肽鍵。CYG-1和CYG-2分子中蛋白和多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為20.62%、15.16%和68.56%、72.31%。

    山藥 糖蛋白 純化 糖肽鍵

    糖蛋白是一類由較短往往具有分支的寡糖鏈與蛋白質(zhì)(多肽鏈)共價相連而構(gòu)成的糖復(fù)合物[1-3]。對糖蛋白的藥理作用及保健功能研究已取得一些重要成果[4-5],顯示了在新型藥物及功能性食品開發(fā)方面具有廣闊的應(yīng)用前景。

    山藥又名白苕、土薯、大薯、薯藥,為薯蕷科(Dioscoreae opposite Thumb)多年生宿根蔓性草本植物的地下塊莖,多分布在熱帶和亞熱帶地區(qū)[6],其性平味甘,健脾益肺,是我國傳統(tǒng)的藥食同源類植物。山藥主要含蛋白質(zhì)和淀粉,還含有比較豐富的維生素和多種礦物質(zhì)元素及黏液質(zhì)等活性成分,黏蛋白的氨基酸組成全面,人體必需氨基酸的含量比較高。有報道稱山藥糖蛋白具有增強(qiáng)人體免疫力、降低血糖、抗衰老、抗腫瘤、抗突變等功效,是山藥活性成份之一[7]。國外對山藥的研究較集中在山藥質(zhì)地結(jié)構(gòu)及加工性質(zhì)方面[8-9],鮮見山藥糖蛋白研究,國內(nèi)關(guān)于山藥糖蛋白研究的全面報道也較少。

    本試驗采取熱水浸提法抽提山藥糖蛋白,Sevag法除游離蛋白,再經(jīng)過DEAE-52和SephadexG-75柱層析進(jìn)行純化,并通過其理化性質(zhì)的分析,對所得到的山藥糖蛋白進(jìn)行鑒定,為今后開發(fā)山藥糖蛋白產(chǎn)品或進(jìn)行功能性質(zhì)研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試驗原料

    新鮮山藥:北京回龍觀鎮(zhèn)城北交易市場。

    1.1.2 試劑與儀器

    DEAE-52:Whatman公司;SephadexG-75:Pharmacia公司;透析袋(MwCo8000D):Sigma公司;乙醇、無水乙醚、丙酮等試劑均為分析純,北京化工廠。

    RE52CS-1旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:上海亞榮生化儀器廠;HL-24恒流泵:上海滬西分析儀器廠;TH-1000梯度混合器:上海楚柏實驗室設(shè)備有限公司;BSZ-100自動部分收集器:上海滬西分析儀器廠;T6新世紀(jì)紫外可見分光光度計:北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;TDL-40B離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠。

    1.2 方法

    1.2.1 山藥糖蛋白的提取

    山藥經(jīng)破碎勻漿,65℃熱水浸提,離心收集上清液,減壓濃縮,用4倍體積的95%乙醇沉淀,收集沉淀復(fù)溶,淀粉酶除淀粉,Sevag法除游離蛋白,再用無水乙醇沉淀,依次用無水乙醚、丙酮洗滌2~3次,最后經(jīng)低溫干燥得糖蛋白粗提物。

    1.2.2 DEAE -52柱層析純化

    DEAE-52纖維素50 g于25℃環(huán)境中,用10倍體積的蒸餾水浸泡24 h。充分溶脹后,用蒸餾水反復(fù)洗滌,傾去懸浮顆粒;抽濾后再用0.5 mol/L NaOH溶液浸泡,攪拌片刻,自然沉降后,用蒸餾水洗滌至中性;然后用0.5 mol/L HCl浸泡,攪拌片刻,自然沉降后,用蒸餾水洗滌至中性;最后用0.5 mol/L NaOH溶液浸泡,攪拌片刻,自然沉降后,用蒸餾水洗滌至中性。經(jīng)過“堿、酸、堿”處理后的纖維素將結(jié)合OH-,可與帶負(fù)電荷的糖蛋白陰離子進(jìn)行交換。處理后的DEAE-52纖維素濕法裝柱(離子交換柱規(guī)格:1.6 cm ×40 cm),再用蒸餾水平衡 3 d[10]。

    將山藥糖蛋白粗提物配制成質(zhì)量濃度為5.0 mg/mL的樣液,上樣量5mL,分別采用 NaHCO3和NaCl進(jìn)行梯度洗脫,洗脫速度為 0.5 mL/min,3 mL/管。采用苯酚-濃硫酸法分別檢測280 nm和490 nm處的吸收峰,收集并合并兩波長處同時具有吸收峰的組分,透析后干燥并收集,得到糖蛋白純品(CYG)。

    1.2.3 SephadexG -75 柱層析

    SephadexG-75層析柱的制備:將SephadexG-75干粉浸泡在10倍體積的0.02 mol/L pH 7.2的Tris-HCl緩沖溶液,沸水浴中逐漸加熱使之充分溶脹,約需8~12 h,然后用自然沉降法裝柱,0.02 mol/L pH 7.2 Tris-HCl緩沖溶液平衡 3 d。

    1.0 cm×70 cm的層析柱,濕法裝柱,用蒸餾水平衡2 d。將經(jīng)過DEAE-52層析得到的山藥糖蛋白純品配成1.0 mg/mL,樣液上樣量為5 mL。用蒸餾水作洗脫液,洗脫速度為1 mL/min,3 mL/管。同1.2.2中方法,采用苯酚-濃硫酸法在280 nm和490 nm波長下追蹤,將兩波長處同時具有吸收峰的相應(yīng)組分收集合并,濃縮、透析,干燥后備用。

    1.2.4 山藥糖蛋白的理化方法鑒定

    1.2.4.1 化學(xué)方法鑒定

    碘-碘化鉀反應(yīng)[11]:分別把結(jié)晶碘5 g,碘化鉀10 g,定容至500 mL,貯于棕色瓶內(nèi)。配制10 mg/mL的山藥糖蛋白分別等量置于兩管,加入I2-KI溶液,并觀察顏色變化。

    茚三酮反應(yīng)[12]:稱取5 g茚三酮,用125 mL沸蒸餾水溶解,冷卻后備用。配制10 mg/mL的山藥糖蛋白,加入茚三酮溶液,混勻,觀察顏色變化。

    斐林試劑反應(yīng)[12]:在10 mg/mL的山藥糖蛋白溶液中加入由0.1 g/mL NaOH溶液和0.05 g/mL硫酸銅溶液配制而成的斐林試劑,觀察顏色變化。

    硫酸 -咔唑反應(yīng)[13]:配制 0.1%咔唑試液(50 mg咔唑溶于50 mL 95%乙醇中),取0.2 mL山藥糖蛋白樣品液,補(bǔ)水至1 mL,在冰水浴中加入6 mL濃H2SO4,搖勻后,在85℃水浴中保持20 min,取出后冷至室溫,加0.2 mL咔唑液,在室溫下保持2 h,觀察顏色變化。

    三氯化鐵反應(yīng)[14]:稱取 4.5 g 三氯化鐵,用 32%鹽酸溶液與水(1∶39)的混合液溶解,定容至100 mL,加入山藥糖蛋白樣品液,觀察顏色變化。

    十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)絡(luò)合反應(yīng)[14]:稱取CTAB 5 g,加到已標(biāo)定好的0.125 mol/L H2SO4溶液250 mL中,混勻,加入山藥糖蛋白樣品液,煮沸2 h,觀察顏色變化。

    1.2.4.2 糖蛋白糖肽鍵特征

    3.1 以供給側(cè)改革為導(dǎo)向,優(yōu)化資源配置 隨著越來越多的社會企業(yè)積極參與特色小鎮(zhèn)的建設(shè),從頂層設(shè)計、金融支持、開發(fā)建設(shè)和運營管理等多個方面暴露出了當(dāng)前我國特色小鎮(zhèn)建設(shè)地產(chǎn)化、文化流失、布局不合理等諸多問題[10]。針對這些問題,在以供給側(cè)結(jié)構(gòu)性改革為導(dǎo)向下優(yōu)化資源配置就顯得尤為重要。

    紫外光譜法[7,15]:稱取5 mg 糖蛋白溶于3 mL 蒸餾水中,分成兩等份,其中一份加入1.5 mL蒸餾水,另一份加入1.5 mL 0.4 mol/L NaOH溶液,測反應(yīng)開始和結(jié)束時(2 h)的紫外光譜,并記錄開始與結(jié)束時240 nm處的吸光值。

    1.2.5 糖蛋白中多糖含量與蛋白質(zhì)含量的測定

    苯酚-硫酸法[16],以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品;Folin-酚法[17],以牛血清白蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品。

    以上所有試驗和測定均為3次重復(fù)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 山藥糖蛋白粗提物DEAE-52柱層析結(jié)果

    2.1.1 不同濃度NaHCO3溶液洗脫結(jié)果

    用收集洗脫液的時間作為橫坐標(biāo),分別以每一管洗脫液的OD280nm(紫外分光法測定蛋白質(zhì))和OD490nm(苯酚-硫酸法測定多糖)吸光值為縱坐標(biāo),繪制出DEAE-52層析柱洗脫曲線圖,見圖1。

    圖1 山藥糖蛋白DEAE-52NaHCO3溶液洗脫曲線

    用DEAE-52纖維素柱層析純化糖蛋白可選用的洗脫液有蒸餾水、不同濃度的 NaHCO3溶液及NaCl溶液。用蒸餾水洗脫時,由于蒸餾水與DEAE-52纖維素之間不存在離子交換,因此可洗脫出不被吸附的糖蛋白,即不帶電荷的中性糖蛋白。用NaHCO3溶液洗脫時可置換出被纖維素上陽離子基團(tuán)吸附的帶負(fù)電荷的糖蛋白,即酸性糖蛋白;隨著溶液濃度的升高,HCO3-濃度及溶液的pH都升高,這對洗脫酸性糖蛋白更為有利[19]。因此先用 0.05、0.10、0.50 mol/L的NaHCO3溶液進(jìn)行階段洗脫試驗(圖1)。在 OD280nm下時間段為36~96 min、108~144 min出現(xiàn)明顯洗脫峰,而在OD490nm下時間段為54~132 min、180~216 min、216~246 min出現(xiàn)洗脫峰,其中第1個洗脫峰在280 nm和490 nm處的吸收峰重疊,為糖蛋白的特征吸收,表明該洗脫組分可能為糖蛋白;其余吸收峰則無此特征,可能為未除盡的游離蛋白質(zhì)。

    從圖2可看出,洗脫液在OD490nm處有3個吸收峰,在OD280nm出有2個吸收峰,其中24~36 min時出現(xiàn)的吸收峰只在OD490nm處有吸收峰,在OD280nm處沒有吸收峰。而在48~78 min時洗脫液在OD280nm和OD490nm處都有吸收峰,在138~186 min時洗脫液中也有一個二者共同出現(xiàn)的吸收峰。在相同組分中既含有多糖又含有蛋白質(zhì),可以認(rèn)定該組分為糖蛋白。因此山藥糖蛋白經(jīng)過DEAE-52纖維素陰離子交換柱層析后,分離出2個糖蛋白峰,暫分別稱為CYG-1和CYG-2。

    圖2 山藥糖蛋白DEAE-52NaCl溶液洗脫曲線

    2.2 山藥糖蛋白粗品SephadexG-75柱層析結(jié)果

    經(jīng)DEAE-52柱層析純化得到的2個山藥糖蛋白組分(CYG-1和CYG-2),再分別用SephadexG-75葡聚糖凝膠層析柱進(jìn)一步純化。

    2.2.1 CYG -1的 SephadexG -75柱層析結(jié)果

    山藥糖蛋白1(CYG-1)經(jīng)SephadexG-75層析柱純化后,在第24~45 min時OD280nm和OD490nm的洗脫液中同時出現(xiàn)了多糖和蛋白質(zhì)的吸收峰,且吸收峰單一,峰形基本對稱,表明組分均一(圖3)。

    圖3 山藥糖蛋白(CYG-1)SephadexG-75蒸餾水洗脫曲線

    2.2.2 CYG -2的 SephadexG -75柱層析結(jié)果

    山藥糖蛋白2(CYG-2)經(jīng)過SephadexG-75層析柱純化時,在33~57 min時OD280nm和OD490nm同時出現(xiàn)了多糖和蛋白質(zhì)的吸收峰,吸收峰單一且峰形對應(yīng),無拖尾現(xiàn)象(圖4)。

    圖4 山藥糖蛋白(CYG-2)SephadexG-75蒸餾水洗脫曲線

    2.3 山藥糖蛋白理化方法鑒定結(jié)果

    2.3.1 定性試驗

    山藥糖蛋白溶液與I2-KI不顯色,表明其是非淀粉類多糖;山藥糖蛋白溶液與茚三酮反應(yīng)呈藍(lán)紫色,表明其有蛋白質(zhì)存在;山藥糖蛋白溶液與斐林試劑反應(yīng),沒有銀鏡產(chǎn)生,表明其不含游離單糖;硫酸-咔唑反應(yīng)沒有呈現(xiàn)綠色,表明山藥糖蛋白不含糖醛酸;山藥糖蛋白溶液與FeCl3反應(yīng)未呈現(xiàn)藍(lán)色沉淀,表明其不含多酚類物質(zhì);山藥糖蛋白與CTAB反應(yīng)呈黃色,表明其是酸性糖蛋白。

    2.3.2 糖肽鍵特征

    堿性β-消除反應(yīng)被廣泛應(yīng)用于闡明糖蛋白的結(jié)構(gòu),當(dāng)糖蛋白受溫和的堿處理時,由于糖與蛋白質(zhì)的絲氨酸和蘇氨酸的β-位羥基之間形成的O-糖肽鍵對堿不穩(wěn)定,而N-糖肽鍵是穩(wěn)定的,因此可以通過堿處理后糖蛋白中絲氨酸和蘇氨酸殘基數(shù)的減少來確定O-糖肽鍵的存在[10]。

    等量的山藥糖蛋白中分別加入蒸餾水與0.4 mol/L NaOH,其反應(yīng)開始和2.0 h后的紫外光譜見圖5,處理開始和結(jié)束時在240 nm處的吸光度值變化見表1。

    圖5 山藥糖蛋白CYG-1和CYG-2的β-消除反應(yīng)前后紫外圖譜

    表1 山藥糖蛋白CYG-X經(jīng)蒸餾水和NaOH處理始末的紫外(240 nm)吸收值變化

    由圖5及表1可知,反應(yīng)開始時山藥糖蛋白2組分在280 nm處均有吸收峰,這表明了糖蛋白的特征吸收峰。反應(yīng)結(jié)束時,2個經(jīng)水處理的山藥糖蛋白在240 nm處沒有吸收峰,但經(jīng)堿處理過的山藥糖蛋白均在240 nm處產(chǎn)生明顯吸收,表明這2個山藥糖蛋白組分中均具有O-糖肽鍵。綜合試驗結(jié)果,表明得到的2個山藥糖蛋白為純度較高的酸性糖蛋白。

    2.4 山藥糖蛋白中多糖與蛋白質(zhì)的含量

    由圖6可知,CYG-1和CYG-2分子中蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為20.62%、15.16%,多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為68.56%、72.31%。山藥糖蛋白分子中多糖與蛋白質(zhì)組成的差異可能與其功能性質(zhì)有關(guān)。2個山藥糖蛋白分子中均含有除蛋白質(zhì)和多糖以外的部分,分別占10.82%和12.55%,它們的組成和對糖蛋白的功能性質(zhì)的影響尚不清楚。

    圖6 山藥糖蛋白中多糖與蛋白質(zhì)組成

    3 討論與結(jié)論

    本研究采用了DEAE-52和SephadexG-75兩種柱層析法對山藥糖蛋白粗品進(jìn)行純化,其中在DEAE-52柱層析時,選取NaHCO3和NaCl兩種洗脫液分別對山藥糖蛋白進(jìn)行洗脫,NaHCO3洗脫只得到1個組分,而NaCl洗脫得到的是2個重疊峰,可確定為CYG-1和CYG-2,這與丁青芝等[18]在山藥糖蛋白分離純化與鑒定中的結(jié)果基本相近。進(jìn)而通過一系列試驗進(jìn)一步鑒定了純化得到的山藥糖蛋白為純品,且糖肽鍵特征分析結(jié)果表明山藥糖蛋白的糖肽鍵是O-糖肽鍵,這與曾麒燕等[15]研究紅桂木凝集素糖蛋白特征及其糖肽鍵性質(zhì)的分析結(jié)果相似。

    在DEAE-52柱層析純化中分別使用NaHCO3和NaCl對山藥糖蛋白粗提物進(jìn)行洗脫,前者為堿性洗脫劑,酸性山藥糖蛋白可能被中和,與填充物的吸附作用減弱,CYG-1和CYG-2一同被洗脫下來,故只得到1個組分;后者為中性洗脫劑,CYG-1和CYG-2與填充物之間吸附作用能力的差異導(dǎo)致它們分別被洗脫下來,故得到2個組分。在隨后的SephadexG-75柱層析中,進(jìn)一步證明了它們是單一的組分。

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    Purification Conditions and Physical and Chemical Identification of Chinese Yam Glycoprotein

    Sun Yujing1,2Han Tao1Bian Ke3Li Liping4

    (Department of Food Science,Beijing University of Agriculture1,Beijing 102206)
    (Agri- Food Quality & Safety Testing Center,Yulin,Shaanxi2,Yulin 719000)
    (Henan University of Industry3,Zhengzhou 450002)
    (Beijing Plant Resources Research and Development Major Laboratory,Beijing Technology & Business University4,Beijing 100037)

    Extracted crude glycoprotein from Chinese yam tuber was exposed for purification with DEAE-52 and Sephadex G -75 column chromatography.2 pieces of Chinese yam glycoprotein were obtained by the elution with NaCl solution,i.e.CYG -1 and CYG -2,but only one with NaHCO3solution.A couple of physical and chemical tests for identification were conducted on CYG -1 and CYG -2.The results showed that both of them were pure and acidic glycoprotein.The bonds connecting peptide and polysaccharides in CYG -1 and CYG -2 were O -type.The contents of protein or polysaccharide in them were 20.62%and 15.16%or 68.56%and 72.31%,respectively.

    Chinese yam,glycoprotein,purification

    TS209

    A

    1003-0174(2011)03-0081-05

    農(nóng)產(chǎn)品加工及貯藏工程北京市重點建設(shè)學(xué)科(PXM 2009-014207-078172)

    2010-01-29

    孫宇婧,女,1986年出生,農(nóng)產(chǎn)品加工及貯藏工程

    韓濤,男,1963年出生,教授,農(nóng)產(chǎn)品加工及貯藏工程

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