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    產(chǎn)低溫蛋白酶海洋細(xì)菌的篩選及發(fā)酵條件

    2011-10-10 02:53:36郭艾英張志雯
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)酶氮源發(fā)酵液

    郭艾英,凌 云,張志雯

    (1河北科技師范學(xué)院生命科技學(xué)院,河北秦皇島,066600;2中糧華夏長城葡萄酒有限公司)

    蛋白酶是一類可催化蛋白質(zhì)水解反應(yīng)的酶,是重要的工業(yè)用酶之一,已被廣泛應(yīng)用于食品、洗滌、皮革、飼料等工業(yè)。目前國內(nèi)蛋白酶在常溫和低溫下酶活力不高,不能滿足市場需求,大規(guī)模用酶主要依賴進(jìn)口[1]。海洋微生物自身生長環(huán)境(高壓、高鹽、低溫、低營養(yǎng)、低光照等)決定其分泌的胞外酶具有在低溫和高鹽存在下能夠繼續(xù)保持較高的活力,并且經(jīng)過溫和的熱處理即可使低溫酶活力喪失或低溫菌株選擇性失活,而不會影響產(chǎn)品的品質(zhì),這使得該酶也能夠應(yīng)用于某些條件苛刻的生產(chǎn)工藝中[2~4]。對海洋微生物低溫酶的研究與開發(fā),已在國內(nèi)外引起了廣泛關(guān)注。由海洋微生物生產(chǎn)低溫酶已成為發(fā)達(dá)國家開發(fā)新型酶制劑的重要途徑[5~7],國內(nèi)已經(jīng)從黃海海水、北極沉積物或海水中分離到多株產(chǎn)低溫蛋白酶的菌株[1,8~10],其菌種、酶的性質(zhì)也不盡相同。作者首次從渤海海域采集的樣品分離獲得一株產(chǎn)蛋白酶活力較高的菌株HYM-16,初步鑒定為黃色桿菌屬,該菌株所產(chǎn)的蛋白酶在4℃條件下處理48 h,酶活保持不變,屬低溫酶,筆者對其生長條件進(jìn)行分析,以期為工業(yè)應(yīng)用和后續(xù)研究奠定理論和應(yīng)用基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 樣品采集

    2009年10月上旬于渤海秦皇島海域東經(jīng)119°60′,北緯39°93′附近,采集海水樣品共20份。

    1.2 培養(yǎng)基

    1.2.1 營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基 牛肉膏5 g/L,蛋白胨10 g/L,瓊脂20 g/L,作為菌體初篩和斜面菌種保藏用。

    1.2.2 篩選培養(yǎng)基 葡萄糖 0.5 g/L,KH2PO40.5 g/L,K2HPO40.5 g/L,酪蛋白 10 g/L,瓊脂 20 g/L,用于篩選蛋白酶產(chǎn)生菌。

    1.2.3 種子培養(yǎng)基 葡萄糖5 g/L,蛋白胨10 g/L。

    1.2.4 基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基 葡萄糖0.5 g/L,K2HPO40.5 g/L,KH2PO40.5 g/L,蛋白胨 10 g/L。以上培養(yǎng)基pH 7.2~7.4,均用陳海水代替蒸餾水配制,121℃滅菌30 min。

    1.3 菌株篩選

    1.3.1 菌株初篩 將采集到的樣品經(jīng)肉湯培養(yǎng)基富集培養(yǎng)24 h,用滅菌陳海水進(jìn)行梯度稀釋后涂布營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基,于25℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待形成單菌落,再點種于篩選平板進(jìn)行初篩。培養(yǎng)48 h后,在菌落周圍滴加10 g/L三氯乙酸,以鋪滿平板為度。選取水解圈較大的菌株,平板劃線純化,斜面保藏,備用。

    1.3.2 菌株復(fù)篩 將初篩菌株接種于裝液量50 mL種子培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,180 r/min,25℃震蕩培養(yǎng)48 h,收集發(fā)酵液進(jìn)行酶活力測定。

    1.4 酶活力測定

    將發(fā)酵液在4 500 r/min,4℃離心10 min,取上清液作為粗酶液,采用Folin-酚法測定蛋白酶活力[11]。以1 mL酶液在一定條件下每分鐘水解酪蛋白產(chǎn)生1 μg酪氨酸所需的酶量定義為1個酶活單位(U)。

    1.5 發(fā)酵培養(yǎng)條件的優(yōu)化

    1.5.1 培養(yǎng)時間對菌株產(chǎn)酶的影響 挑1環(huán)菌株接入種子培養(yǎng)基,180 r/min,震蕩培養(yǎng)12 h,以體積分?jǐn)?shù)為 0.01 的菌液轉(zhuǎn)接發(fā)酵培養(yǎng)基,180 r/min,25 ℃震蕩培養(yǎng),分別培養(yǎng) 12,24,36,48,60,72 h,測定發(fā)酵液中蛋白酶活力。

    1.5.2 接種量對產(chǎn)酶的影響 將震蕩培養(yǎng)12 h的種子液,分別以體積分?jǐn)?shù)為0.005,0.010,0.015和0.020的菌液轉(zhuǎn)接發(fā)酵培養(yǎng)基,180 r/min,25℃的條件下震蕩培養(yǎng),48 h后測定發(fā)酵液中蛋白酶活力。

    1.5.3 搖床轉(zhuǎn)速對產(chǎn)酶的影響 將震蕩培養(yǎng)12 h的種子液,以體積分?jǐn)?shù)為0.01的菌液轉(zhuǎn)接發(fā)酵培養(yǎng)基,控制搖床轉(zhuǎn)速分別為120,140,160,180,200,220 r/min,25 ℃的條件下震蕩培養(yǎng),48 h 后測定發(fā)酵液中蛋白酶活力。

    1.5.4 不同碳源、氮源對產(chǎn)酶的影響 在基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中分別加入相同質(zhì)量濃度(0.5 g/L)的4種碳源(麥芽糖、蔗糖、乙酸鉀、淀粉)和4種氮源(硝酸鉀、酵母粉、豆餅粉、硫酸銨),研究其對產(chǎn)酶的影響。將震蕩培養(yǎng)12 h的種子液,以體積分?jǐn)?shù)為0.01的接種量,培養(yǎng)48 h后測定發(fā)酵液中蛋白酶活力。

    1.5.5 不同金屬離子對產(chǎn)酶的影響 在基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中分別添加質(zhì)量濃度為0.1 g/L的4種不同金屬離子(Mg2+,Mn2+,F(xiàn)e2+,Ca2+),將震蕩培養(yǎng)12 h的種子液,以體積分?jǐn)?shù)0.01接種量,培養(yǎng)48 h后測定發(fā)酵液中蛋白酶活力。

    1.5.6 培養(yǎng)基優(yōu)化試驗 選擇影響酶活的碳源、氮源和金屬離子為考慮因素,選用L9(34)正交設(shè)計(表1),以酶活力為指標(biāo),優(yōu)化培養(yǎng)基的組成成分。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 菌株的分離

    將取得的水樣20份,經(jīng)富集培養(yǎng),稀釋涂布,培養(yǎng)18~24 h后得到148個單菌落,挑取單菌落于篩選平板上培養(yǎng),37株分泌蛋白酶。挑選其中D/d大于3的13株經(jīng)搖瓶復(fù)篩,依據(jù)Folin-酚法測定蛋白酶活,確定HYM-16號菌株,酶活達(dá)410.1×103U·L-1,是一株性能良好的出發(fā)菌株。國內(nèi)報道的出發(fā)菌株的活力在100×103U·L-1上下[10]。該菌株在篩選平板上培養(yǎng)48 h時所形成的水解圈如圖1所示。

    表1 正交試驗因素水平表 g·L-1

    圖1 HYM-16菌株在篩選平板培養(yǎng)48 h產(chǎn)生的水解圈

    2.2 菌種的初步鑒定

    篩選的HYM-16菌株為長桿狀,在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上菌落呈圓形同心環(huán),臍狀,邊緣整齊,表面閃光,油脂狀,淺黃色。生理生化反應(yīng)為革蘭氏染色陰性,接觸酶陽性,好氧,能在甲醇、乙醇、丙醇丁醇和有機(jī)酸為唯一碳源時異養(yǎng)生活。根據(jù)《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊》[12]相關(guān)內(nèi)容,初步鑒定為黃色桿菌屬(Xanthobacter sp.)。

    2.3 發(fā)酵條件的優(yōu)化

    2.3.1 培養(yǎng)時間對產(chǎn)酶的影響 在不同培養(yǎng)時間處理下,測定酶活力,該菌株在12 h開始產(chǎn)酶,24 h后大量產(chǎn)酶,至48 h時,酶產(chǎn)量達(dá)到高峰,酶活為416.6×103U·L-1,繼續(xù)培養(yǎng),酶活力顯著下降(圖2)。其原因可能是在發(fā)酵前期菌體經(jīng)過短暫的適應(yīng)期即進(jìn)入對數(shù)生長期,外部環(huán)境有利于菌體的生長和代謝產(chǎn)物的合成,在48 h產(chǎn)酶量達(dá)到最大;到發(fā)酵后期,培養(yǎng)基中的營養(yǎng)物質(zhì)減少,產(chǎn)物量及有害代謝物的增多抑制菌體的生長和產(chǎn)物的合成,造成酶活力的下降,因此選擇48 h為最佳培養(yǎng)時間。

    2.3.2 不同接種量對產(chǎn)酶的影響 在三角瓶裝液量相同的條件下,測試了不同接種量對產(chǎn)酶的影響(圖3)。結(jié)果表明,接種量的大小對產(chǎn)酶影響較大,接種量較低和較高都會抑制酶活,體積分?jǐn)?shù)0.01時蛋白酶活力最大。小于0.01時,隨接種量的增加其產(chǎn)酶活力也增大,再增加接種量,酶活反而降低。這可能是接種量較小時,菌體產(chǎn)生的胞外酶較少,影響菌體對營養(yǎng)物質(zhì)的利用,抑制產(chǎn)酶,而接種量較大時,菌體生長過快,發(fā)酵液黏度增加,造成溶氧不足,影響產(chǎn)物的合成。

    圖2 不同培養(yǎng)時間對產(chǎn)酶的影響

    圖3 不同接種量對產(chǎn)酶的影響

    2.3.3 不同搖床轉(zhuǎn)速對產(chǎn)酶的影響 在其它條件相同的情況下控制不同的搖床轉(zhuǎn)速,測定發(fā)酵液中蛋白酶活力(圖4)。結(jié)果表明,隨著搖床轉(zhuǎn)速的增加,產(chǎn)酶量增多,180 r/min時產(chǎn)酶量最大,為411.3×103U·L-1,再增大轉(zhuǎn)速,產(chǎn)酶量有所下降。說明搖床轉(zhuǎn)速影響培養(yǎng)液的溶氧量,適當(dāng)?shù)娜苎跛接欣谠摼甑纳L和代謝產(chǎn)物的合成,但溶氧太高反而抑制蛋白酶的形成。

    2.3.4 不同碳源、氮源對產(chǎn)酶的影響 在產(chǎn)酶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中試驗了相同濃度的4種碳源和氮源,培養(yǎng)后測定蛋白酶活力(圖5)。結(jié)果表明,碳源中蔗糖效果最好,產(chǎn)酶量最高,酶活為506.4×103U·L-1,其次為葡萄糖和淀粉。蔗糖優(yōu)于葡萄糖的原因可能是菌體以蔗糖作為碳源可解除葡萄糖效應(yīng),與國外報道的葡萄糖抑制蛋白酶的生成相似[13];淀粉作為一種廉價的碳源也具有較高的產(chǎn)酶水平,可能是其中含有復(fù)雜蛋白成分具有誘導(dǎo)作用。

    菌株利用有機(jī)氮源產(chǎn)酶能力均高于無機(jī)氮源,其中豆餅粉效果最好,達(dá)468.0×103U·L-1(圖6),酵母浸出物和蛋白胨次之。其原因可能是無機(jī)氮源成分較單一,影響產(chǎn)酶量;(NH4)2SO4為生理酸性物質(zhì),影響產(chǎn)酶環(huán)境的pH,抑制蛋白酶的分泌,因而產(chǎn)量最低,此研究結(jié)果與Sinha報道的硫酸銨對產(chǎn)酶的促進(jìn)作用存在分歧[14];而有機(jī)氮源中可能含有的無機(jī)鹽、較豐富的B族維生素及生長因子促進(jìn)了蛋白酶的產(chǎn)生,與Sen和Gajju等的研究結(jié)果一致[13,15]。因此確定豆餅粉為后續(xù)試驗氮源。

    圖4 搖床不同轉(zhuǎn)速對產(chǎn)酶的影響

    圖5 不同碳源對產(chǎn)酶的影響

    2.3.5 金屬離子對產(chǎn)酶的影響 在基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中分別以適宜濃度添加4種金屬離子考察對蛋白酶活的影響(圖7),結(jié)果表明,較低金屬離子濃度下,與對照相比,Mg2+和Ca2+對該菌產(chǎn)酶具有促進(jìn)作用,F(xiàn)e2+和Mn2+則對蛋白酶抑制作用明顯,其中Fe2+作用更強(qiáng),酶活僅是對照的10.99%。這可能是由于Ca2+和Mg2+穩(wěn)定酶結(jié)構(gòu)的同時,也起到了激活酶的作用;而Mn2+及Fe2+可能與酶中心的活性基團(tuán)結(jié)合形成化合物,導(dǎo)致蛋白酶活力下降。

    圖6 不同氮源對產(chǎn)酶的影響

    圖7 不同金屬離子對產(chǎn)酶量的影響

    2.3.6 碳源、氮源和金屬離子合適濃度對產(chǎn)酶的影響 產(chǎn)酶最適培養(yǎng)基優(yōu)化試驗結(jié)果如表2表3所示,由表2各列的極差R值和表3中F值可得,各因素影響主次順序為B>A>D>C,即在實驗設(shè)定的因素中,氮源中豆餅粉和碳源蔗糖的添加量對菌株產(chǎn)酶影響顯著,而Mg2+的添加量對產(chǎn)酶影響不大,Sun-og等研究結(jié)果表明,高濃度的Mg2+有助于提高蛋白酶活力[16]。由2.3.5可知Mg2+的添加能夠促進(jìn)產(chǎn)酶,但其添加量對產(chǎn)酶影響較小,其原因有待進(jìn)一步考察。在優(yōu)化培養(yǎng)基因素水平上,對因素A和B,最大數(shù)均是K2,因此選擇A2B2,對于因素C和D選擇最大數(shù)C2D1,因此最佳組合為:A2B2C2D1,綜合基礎(chǔ)培養(yǎng)基得最佳發(fā)酵培養(yǎng)基:蔗糖 1 g/L,豆餅粉 20 g/L,MgCl20.4 g/L,K2HPO40.5 g/L,KH2PO40.5 g/L。

    表2 正交試驗L9(34)結(jié)果及極差分析

    表3 方差分析結(jié)果

    表4 培養(yǎng)基優(yōu)化后的蛋白酶活力及相對產(chǎn)率變化

    2.4 優(yōu)化培養(yǎng)條件的驗證試驗

    為了進(jìn)一步驗證正交試驗優(yōu)選出的最佳組合方案A2B2C2D1,將活化菌株接入種子培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h后,以體積分?jǐn)?shù)0.01的接種量分別轉(zhuǎn)接最佳發(fā)酵培養(yǎng)基和基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基,培養(yǎng)48 h,測定酶活(表4)??芍獌?yōu)化后的培養(yǎng)基酶活較基礎(chǔ)培養(yǎng)基增加了46.9%,3次試驗具有重現(xiàn)性,結(jié)果一致。

    3 結(jié) 論

    (1)采用梯度稀釋法從渤海海域分離得到148株單菌落,其中37株具有分泌蛋白酶的能力,經(jīng)過平板初篩和搖瓶復(fù)篩確定酶活410.1×103U·L-1的HYM-16為研究的出發(fā)菌株,初步鑒定為黃色桿菌屬(Xanthobacter sp.)。

    (2)研究了發(fā)酵條件、培養(yǎng)基成份對發(fā)酵產(chǎn)酶的影響。以酶活力為依據(jù),得出在裝液量為50 mL的250 mL的三角瓶中,以體積分?jǐn)?shù)為0.01的接種量,180 r/min進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),48 h時達(dá)到最高產(chǎn)酶水平;最佳的碳源、氮源分別是蔗糖和豆餅粉,Mg2+能夠促進(jìn)產(chǎn)酶。

    (3)優(yōu)化培養(yǎng)條件得出各因素影響主次順序:豆餅粉>蔗糖>K2HP04>MgCl2;最佳發(fā)酵培養(yǎng)基:蔗糖 1 g/L,豆餅粉 20 g/L,MgCl20.4 g/L,K2HPO40.5 g/L,KH2PO40.5 g/L。優(yōu)化后的培養(yǎng)基較基礎(chǔ)培養(yǎng)基酶活提高46.9%。該蛋白酶的穩(wěn)定性較好,粗酶液在4℃條件下處理48 h后酶活不變,具有進(jìn)一步開發(fā)利用的潛力。

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