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    神經(jīng)干細胞移植對大鼠腦缺血損傷的影響及清熱化瘀方的干預*

    2011-09-12 02:28:04胡躍強雷龍鳴祝美珍畢方方胡玉英
    關(guān)鍵詞:模型

    胡躍強,唐 農(nóng),雷龍鳴,祝美珍,畢方方,胡玉英,陳 煒

    (1.廣西中醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,南寧 530023;2.廣西中醫(yī)學院經(jīng)典中醫(yī)研究所,

    南寧 530001;3.中南大學湘雅醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,長沙 410008)

    腦缺血所造成的神經(jīng)功能缺失一直為臨床治療的難點,中樞神經(jīng)系統(tǒng)神經(jīng)元不可再生的觀念被打破后,腦缺血后神經(jīng)干細胞(NSCs)的移植、分化方面的研究成為當今神經(jīng)科學領(lǐng)域研究的熱點,這也為NSCs移植治療腦缺血損傷提供了可能。本研究通過觀察鼠NSCs移植治療腦缺血大鼠的效果及清熱化瘀方的影響,探討該方的作用機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試劑與耗材 DMEM/F12干粉培養(yǎng)基、B27、堿性成纖維生長因子(bFGF)、表皮生長因子(EGF)、5-溴脫氧尿苷(BrdU)均為 Sigma公司產(chǎn)品;小鼠抗 BrdU單克隆抗體(Chemicon,USA)及兔抗nestin單克隆抗體(Pharmingen公司);兔抗神經(jīng)絲蛋白200(NF200)多克隆抗體(Santa Cruz,USA);熒光素Cy3標記的兔抗IgG和FITC標記的羊抗IgG(北京中山)。

    1.1.2 藥物 清熱化瘀方由水牛角30g、丹參15g、赤芍 15g、地龍 10g、石菖蒲 10g等中藥組成,單味中藥濃縮顆粒劑由江蘇省江陰市江陰天江藥業(yè)有限公司生產(chǎn)。

    1.2 方法

    1.2.1 NSCs的培養(yǎng) 取新生3d SD大鼠,用75%酒精浸泡30min后斷頭處死取出大腦,分離海馬,機械分離組織成單細胞,細胞以105/ml種入平皿,培養(yǎng)基用 DMEM/F12加 B27、bFGF(20ng/ml)和EGF(20ng/ml),2d更換半量培養(yǎng)基,10d左右用機械消化法進行傳代。將誘導擴增后的NSCs以105/ml種于0.1%明膠包埋的平皿中,放入含 5%CO2的培養(yǎng)箱中37℃常規(guī)培養(yǎng)。

    1.2.2 動物分組及處理 SD大鼠100只,重200g~250g,隨機分為假手術(shù)組(A組)、模型組(B組)、干細胞移植組(C組)、干細胞移植 +清熱化瘀組(D組),每組25只大鼠,各組按處死時間分為術(shù)后第 2、4、7、14、28天 5個亞組,每個亞組 5只動物。A組:線栓只插入頸內(nèi)動脈9mm;B組:動物造模后2h灌胃同清熱化瘀組等體積的蒸餾水,并給予側(cè)腦室注射等量生理鹽水;C組:大鼠在模型制作成功24h后進行 NSCs移植;D組:動物造模后,清熱化瘀湯14g/(kg·d)灌胃(按體表面積計算為臨床70kg成人劑量的3倍),各組動物均在術(shù)前6h灌胃1次,在手術(shù)清醒后開始灌胃,每天 1次,每次 1.4m1/100g大鼠,余同 C組。

    1.2.3 動物造模 參照 Longa's線栓法阻斷左側(cè)大腦中動脈(MCAO)制備局灶性腦缺血模型。

    1.2.4 NSCs移植 大鼠在腦缺血模型制作成功24h后進行NSCs移植。移植前NSCs經(jīng) Brdu(濃度5μmol/l)標記 2d,離心后將其溶解于生理鹽水中,細胞濃度調(diào)整為 6×105/ml。參照文獻方法[1],將大鼠麻醉、固定,缺血側(cè)側(cè)腦室處(前囟左側(cè)旁1.5mm,前囟后 1.0mm)頭皮針垂直進針,在進入5.6 mm后各緩慢推入 10μl細胞懸液,留針 10min后緩慢拔針。

    1.3 神經(jīng)功能缺損評分(NSS)

    參照 Chen 等[2]方法,分別于移植后第 2、4、7、14、28天對大鼠進行 NSS,主要觀察其運動、感覺功能、平衡能力及生理反射能力;總分為18分,正常為0分,分值越高示其神經(jīng)損害程度越嚴重。

    1.4 組織處理

    將大鼠常規(guī)麻醉后,經(jīng)左心室先后用生理鹽水和4%的多聚甲醛進行灌注。然后取腦組織固定、脫水、石蠟包埋,按4μm厚度連續(xù)切片。

    1.5 神經(jīng)干細胞增殖檢測

    采用免疫組化ABC法。石蠟切片以1%H2O2滅活內(nèi)源性過氧化物酶,滴加正常山羊血清封閉液室溫下孵育 30min,接著分別滴加 1∶100稀釋的小鼠抗nestin單克隆抗體和兔抗 BrdU單克隆抗體,4℃過夜,然后以 PBS洗滌。再滴加 1∶100的二抗生物素化兔 IgG,PBS沖洗。陰性對照用正常羊血清代替一抗。

    1.6 新生神經(jīng)元檢測

    采用熒光雙標免疫組化法檢測BrdU和NF200表達雙陽性細胞為新生神經(jīng)元,小鼠抗 BrdU抗體(1∶100)以 Cy3標記,兔抗 NF200抗體以 FITC標記。被標記新生神經(jīng)細胞同時發(fā)出紅色(Cy3)核染區(qū)和綠色(FITC)胞漿染色區(qū)。

    1.7 細胞圖像分析

    用計算機圖像分析系統(tǒng)計數(shù)腦梗死后不同時間段陽性細胞數(shù)。每個動物隨機選取相同位置的6張腦片,每張腦片在大鼠腦缺血半暗帶隨機選取6個視野(×400),計算每個視野的免疫陽性細胞(BrdU、Nestin、BrdU/NF200)數(shù)目的平均值。

    1.8 統(tǒng)計學分析

    2 結(jié)果

    2.1 大鼠NSS的比較

    表1顯示,大鼠造模后出現(xiàn)不同程度的神經(jīng)功能缺損,其癥狀隨缺血時間的延長而逐漸減輕;NSCs組移植后第2、4、7天 NSS與模型組比較差異均無顯著性(P>0.05),但第 14、28天其 NSS均顯著低于模型組(P<0.05);而 NSCS移植 +清熱化瘀組則在第7、14、28天的 NSS顯著優(yōu)于模型組(P<0.05)。

    表1 大鼠 NSS的變化±s)

    表1 大鼠 NSS的變化±s)

    注:與 B組比較:*P<0.05

    NSS組別2d 4d 7d 14d 28d B組7.8±1.7 7.2±1.6 6.9±1.6 6.6±1.5 6.0±1.2 C組 7.5±1.5 7.0±1.4 6.4±1.2 5.5±1.1* 4.8±1.0*D組 7.3±1.4 6.7±1.3 5.8±1.1* 5.0±1.0* 4.0±0.8*

    2.2 大鼠缺血腦損傷后NSCs增殖的比較

    模型組大鼠腦缺血損傷后可以檢測到少量的nestin陽性細胞,其表達于缺血后7d達高峰(P<0.05),以后表達逐漸減弱;與模型組相比,NSCs組移植后 nestin表達在第 7、14、28天顯著增加;移植加中藥組在第14、28天時缺血半暗帶區(qū) nestin陽性細胞數(shù)較單純移植組顯著增加(P<0.01,P<0.05)。模型組大鼠腦缺血損傷后未能檢測到 BrdU陽性細胞,NSCs移植后可檢測到BrdU陽性細胞,主要分布在缺血周圍區(qū),并可見其從室旁區(qū)向缺血區(qū)移行,其表達于移植后14d達高峰(P<0.05),以后表達逐漸減弱;移植加中藥組在第14、28天時缺血半暗帶區(qū)BrdU陽性細胞數(shù)較單純移植組顯著增加(P <0.05)(見表 2、3圖① ~ ④)。

    表2 各組大鼠 nestin蛋白陽性細胞數(shù)比較±s,n=5)

    表2 各組大鼠 nestin蛋白陽性細胞數(shù)比較±s,n=5)

    注:與 B組比較:*P<0.05,**P<0.01;與 C 組比較:△P <0.05;與組內(nèi)其他時間點比較:#P<0.05

    組別 時相2d 4d 7d 14d 28d A組00000 B組 4.22±1.46 8.89±1.63 13.78±2.15# 9.20±1.78 7.67±1.60 C組 5.03±1.34 10.65±1.93 20.32±2.45#**15.24±2.21** 11.56±2.02*D組 6.12±1.27 12.29±1.98 22.25±2.73 18.79±2.67△ 15.25±2.36△

    表3 各組大鼠 BrdU陽性細胞數(shù)比較±s,n=5)

    表3 各組大鼠 BrdU陽性細胞數(shù)比較±s,n=5)

    注:與 C組比較:△P<0.05;與組內(nèi)其他時間點比較:*P<0.05

    組別 時相2d 4d 7d 14d 28d A組00000 B組 0 0 0 0 0 C組 16.23±2.65 25.74±3.21 33.26±4.76* 48.55±6.32* 30.58±5.24 D組 18.36±2.87 29.13±3.36 40.05±5.50 60.49±6.68△ 47.66±5.87△

    2.3 新生神經(jīng)元比較

    NSCs移植后 7d可見,少量的 BrdU/NF200雙陽性細胞出現(xiàn)在缺血周圍處,其表達隨缺血時間延長而逐漸增加;移植加中藥組在第14、28天時缺血半暗帶區(qū)BrdU/NF200雙陽性細胞數(shù)較單純移植組顯著增加(P<0.05)(見表4和圖⑤⑥)。

    3 討論

    NSCs是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中具有自我更新能力和多種分化潛能的細胞,雖然終身存在,但由于其絕對數(shù)量和局部微環(huán)境所限,致使中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷或變性時,自我修復作用微乎其微。因此,采用外源性干細胞移植成為近年來治療中樞神經(jīng)損傷的熱點研究領(lǐng)域,也同樣為腦缺血損傷的治療提供了新的思路。

    表4 各組大鼠BrdU/NF200陽性細胞數(shù)比較± s,n=5)

    表4 各組大鼠BrdU/NF200陽性細胞數(shù)比較± s,n=5)

    注:與 C組比較:*P<0.05

    組別 時相2d 4d 7d 14d 28d B組0 0 0 0 0 C組 0 3.61±0.92 6.73±1.20 19.54±2.24 26.82±3.16 D組 0 5.24±1.08 9.24±1.33 31.60±3.57* 39.75±4.28*

    ①②:缺血7天C組和D組頂葉皮質(zhì)nestin蛋白表達(×400);③、④:缺血28天C組和D組頂葉皮質(zhì)BrdU陽性細胞表達(×400);⑤⑥:缺血14天C組和D組頂葉皮質(zhì)BrdU/NF200雙陽性細胞表達(免疫熒光 ×400)

    已有研究證實,NSCs移植能夠促進局灶性腦缺血大鼠神經(jīng)功能的恢復。如Park將NSCs注入缺血鼠腦中,NSCs可接合入變性的 CNS中,可優(yōu)先移入缺血區(qū),并增殖分化為神經(jīng)元[3]。Shen等將 NSCs注入鼠腦缺血損傷區(qū),可縮小缺血后腦梗死面積,改善神經(jīng)功能[4]。最近也有聯(lián)合移植的相關(guān)報道,如Yu等將NSCs和I型膠原聯(lián)合移植治療腦缺血,能夠顯著促進損傷腦組織結(jié)構(gòu)和功能的恢復[5]。中藥作為體內(nèi)微環(huán)境的調(diào)節(jié)劑,可能在減少神經(jīng)干細胞移植后的副反應,促進其分化和遷移等方面具有重要的作用,國內(nèi)在這方面也開始了有益的嘗試[6],顯示出較大潛力。但聯(lián)合應用中藥復方和NSCs治療腦缺血的報道甚少,值得進一步探討。

    “毒損腦絡(luò)”學說是中醫(yī)中風認識上的新理論,認為中風發(fā)病是由于毒邪損傷腦絡(luò)、絡(luò)脈破損或絡(luò)脈拘攣瘀閉、氣血滲灌失常所致[7]。結(jié)合腦缺血損傷后 NSCs的變化,我們認為腦缺血急性期產(chǎn)生的痰瘀熱毒混雜腦內(nèi),損傷腦髓及腦絡(luò),NSCs的增殖分化遷移之源受到抑制、破壞,導致神經(jīng)功能缺損及功能恢復受限。因此我們認為,解毒通絡(luò)是治療大法[8],據(jù)此理論而設(shè)的清熱化瘀方,其功能為清熱解毒化痰、活血化瘀通絡(luò),是治療腦梗死的有效方劑。一系列研究表明,其通過不同途徑對腦缺血損傷組織具有保護作用,作為腦神經(jīng)功能保護劑在臨床運用方面有較好的療效[9~11]。

    本研究發(fā)現(xiàn),大鼠腦缺血損傷可以誘導少量nestin的表達,且在缺血后 7d時表達呈高峰;經(jīng)BrdU標記的NSCs側(cè)腦室移植后2d即可見BrdU蛋白陽性細胞,主要分布在缺血周圍區(qū),并可見其從室旁區(qū)向缺血區(qū)移行,其表達于移植后14d達到高峰,說明移植的 NSCs能夠在宿主腦內(nèi)存活;免疫熒光顯示,NSCs移植后 7d可見 BrdU/NF200雙陽性細胞出現(xiàn)在缺血周圍處,其表達隨缺血時間延長而逐漸增加,說明移植的 NSCs能夠分化為新生神經(jīng)元,也提示移植NSCs對腦缺血大鼠的神經(jīng)功能恢復起到了積極作用;移植加中藥組可顯著增加缺血后第14、28天時缺血半暗帶區(qū) nestin、BrdU和 BrdU/NF200陽性蛋白表達,說明清熱化瘀方可促進 NSCs增殖為神經(jīng)元并促進其遷移,從而發(fā)揮腦保護作用,這為其早期給藥治療提供了實驗基礎(chǔ)。

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