田雪飛 ,孫 婧 ,方 圓 ,伍參榮 ,周 青 ,廖興華
(1.湖南中醫(yī)藥大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合學(xué)院,湖南 長沙 410208;2.湖南中醫(yī)藥大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,湖南 長沙 410208;3.湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,湖南 長沙 410007)
DNA甲基化是復(fù)制后的修飾,在細(xì)胞增殖、分化過程中起重要作用。肝癌相關(guān)抑癌基因,例如P16基因等啟動(dòng)子區(qū)域的CpG島甲基化,在肝癌的發(fā)生發(fā)展過程中起著重要的作用[1]。已有部分研究證實(shí)中藥成分槲皮素[2]、CDP成分[3]及復(fù)方左金丸[4]等具有降低抑癌基因甲基化水平的作用,提示探索中藥DNA去甲基化作用對(duì)中醫(yī)藥抗腫瘤研究具有重要的意義。前期研究中我們發(fā)現(xiàn)水蛭提取物具有體外抑制肝癌HepG2細(xì)胞增殖及誘導(dǎo)凋亡的作用[5],為此本實(shí)驗(yàn)通過觀察水蛭提取物對(duì)肝癌細(xì)胞甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMTs)表達(dá)的影響,研究中藥有效成分的DNA去甲基化作用,進(jìn)一步探討水蛭提取物的抗肝癌作用機(jī)制?,F(xiàn)將實(shí)驗(yàn)方法及結(jié)果報(bào)道如下。
1.1.1 藥物 水蛭購于湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,并由湖南省中醫(yī)藥研究院超微工程中心制備成水蛭超微粉。提取物參照研究組前期建立的液氮快速凍融法制備[5]:取水蛭超微粉1.5 g置15 mL離心管內(nèi),加10 mL滅菌雙蒸水制成混懸液,再將離心管置液氮內(nèi)5 min取出,立即放入37℃水浴中迅速融解,重復(fù)3次,3 000 r/min離心10 min,取上清液0.22μm微孔濾膜濾過,冷凍干燥18 h即得水蛭提取物凍干粉,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.1.2 試劑 Trizol RNA提取試劑為美國Gibco公司產(chǎn)品,RT-PCR相關(guān)試劑及引物為大連寶生物工程有限公司產(chǎn)品或合成;胎牛血清、低糖DMEM培養(yǎng)基干粉為Gibco公司產(chǎn)品;5-脫氧雜氮胞苷 (5-Aza-cdR)為Sigma公司產(chǎn)品。兔抗人DNMT1、DNMT3a、DNMT3b多克隆抗體購自美國Abcam公司;二抗為生物素標(biāo)記的羊抗兔IgG,DAB顯色試劑盒購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。
1.1.3 細(xì)胞株 人肝癌細(xì)胞株HepG2購自中南大學(xué)湘雅細(xì)胞中心并保存。
1.1.4 儀器 倒置熒光顯微鏡 (日本OLYMPUS公司);自動(dòng)酶標(biāo)儀(奧地利TECAN公司);CO2培養(yǎng)箱(美國Hitachi公司),基因擴(kuò)增儀(中國杭州大和熱磁力電子公司);凝膠電泳儀(中國杭州博日科技公司);凝膠圖像分析系統(tǒng)(中國上海天能科技公司)。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) HepG2培養(yǎng)于含10%小牛血清,100 U/mL鏈霉素和青霉素的DMEM培養(yǎng)液中,37℃,飽和濕度和5%CO2條件下培養(yǎng),2~4 d更換培養(yǎng)基1次,常規(guī)傳代培養(yǎng),取對(duì)數(shù)生長期細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 藥物干預(yù)濃度及分組 HepG2細(xì)胞接種24 h后分別用水蛭提取物、5-Aza-cdR處理。水蛭提取物臨用前用含10%小牛血清的DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液溶解稀釋成工作濃度。根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果確定工作濃度為 3.0、6.0、9.0、12.0、15.0 mg/mL;5-Aza-cdR臨用前用含10%胎牛血清的DMEM細(xì)胞培養(yǎng)液稀釋成工作濃度,根據(jù)文獻(xiàn)[6]及預(yù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果確定工作濃度為 0.3、0.6、0.9、1.2、1.5 μM;DNMTs 表達(dá)檢測(cè)以MTT檢測(cè)1/2 IC50含藥量作為工作濃度;均采用未加藥物處理的細(xì)胞作為對(duì)照組。
1.2.3 MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖抑制率 取對(duì)數(shù)生長期HepG2細(xì)胞接種96孔板,每孔接種2×104個(gè)細(xì)胞,分別培養(yǎng)48 h后每孔加入5 g/L MTT 10μL,37℃條件下繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清液,每孔加入100μL DMSO,酶標(biāo)儀波長490 nm處檢測(cè)吸光度A值,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。按下列公式計(jì)算細(xì)胞抑制率:細(xì)胞生長抑制率(%)=(對(duì)照孔A值-試驗(yàn)孔A值)/對(duì)照孔A值×100%。根據(jù)不同藥物濃度條件下細(xì)胞生長抑制率數(shù)值進(jìn)行相關(guān)回歸分析,并根據(jù)回歸方程計(jì)算半數(shù)抑制濃度(IC50)。
1.2.4 RT-PCR 法 檢 測(cè) DNMT1、DNMT3a、DNMT3b mRNA表達(dá) 取對(duì)數(shù)生長期1×106個(gè)HepG2細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶,培養(yǎng)6 h待貼壁后,換含水蛭提取物、5-Aza-cdR(IC50含藥量)的培養(yǎng)基處理,對(duì)照組以不含藥物的培養(yǎng)基處理。繼續(xù)培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞,總RNA提取按Trizol試劑盒說明進(jìn)行,紫外分光光度計(jì)測(cè)定總RNA濃度與純度,-70℃保存?zhèn)溆?。逆轉(zhuǎn)錄取2μL總RNA,10mM Oligo dT 1μL,用DEPC水補(bǔ)至總體積12μL,70℃ 5 min,冰上驟冷后加入5×buffer 4μL,20 mU/L RNA酶抑制劑 1 μL,10 mM dNTP 2 μL, 200 mU/L MMLV 1 μL,37 ℃ 反應(yīng) 60 min,94 ℃滅活 5 min。PCR序列根據(jù) Genebank中人 DNMT1、DNMT3a、DNMT3b、GAPDH cDNA序列進(jìn)行設(shè)計(jì)。PCR反應(yīng)體系為總體積 25μL,其中 10×PCR buffer 2.5 μL,dNTP 0.2mM, 上下游引物各 0.5 mM,MgCL21 mM,Taq酶 0.25 μL,cDNA 模板 2 μL,余下用無菌ddH2O補(bǔ)足,引物序列及PCR反應(yīng)條件見表1。取PCR產(chǎn)物5μL在1.5%瓊脂糖凝膠上電泳 (含0.5 mg/L溴化乙錠),PCR條帶應(yīng)用Eagle EyeⅡ圖像分析處理系統(tǒng)分析結(jié)果,基因的相對(duì)表達(dá)水平等于該基因RT-PCR產(chǎn)物電泳條帶的灰度值/GAPDH RT-PCR產(chǎn)物電泳條帶的灰度值。
表1 PCR引物序列、反應(yīng)條件及擴(kuò)增的目的片段大小
1.2.5 免疫組化法檢測(cè)DNMT1、DNMT3a、DNMT3b蛋白表達(dá) 對(duì)培養(yǎng)貼壁細(xì)胞洗脫涂片于已消毒的載玻片上,37℃過夜;PBS液輕洗,用冷丙酮固定5 min,自然干燥,SABC法免疫組織化學(xué)染色(操作流程按說明書進(jìn)行)。顯微鏡下觀察DNMT1、DNMT3a、DNMT3b蛋白染色和在細(xì)胞中的分布情況。并對(duì)每組標(biāo)本計(jì)數(shù)300個(gè)細(xì)胞,計(jì)算染色陽性比率。
所有數(shù)據(jù)均采用SPSS 11.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,數(shù)值變量資料以“x±s”表示,采用單因素方差分析,組間均數(shù)比較采用q檢驗(yàn),以P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。IC50采用直線相關(guān)回歸分析,根據(jù)回歸方程計(jì)算求出。
MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,水蛭提取物、5-Aza-cdR以劑量依賴性方式抑制HepG2細(xì)胞增殖,增殖抑制率隨水蛭提取物、5-Aza-cdR的濃度增高而增加。水蛭提取物、5-Aza-cdR各劑量組吸光度OD值與對(duì)照組比較差異均有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。求出直線回歸方程水蛭提取物為y(增殖抑制率)=7.587x(藥物濃度)+7.488,計(jì)算可得作用HepG2細(xì)胞48 h時(shí)的水蛭提取物半數(shù)有效抑制濃度IC50=6.0 mg/mL,因此確定3 mg/mL為水蛭提取物進(jìn)行下一步試驗(yàn)的工作濃度;直線回歸方程5-Aza-cdR為 y(增殖抑制率)=55.357x(藥物濃度)-3.029,計(jì)算可得作用HepG2細(xì)胞48 h時(shí)的5-Aza-cdR半數(shù)有效抑制濃度IC50=0.96μM,因此確定0.48μM為5-Aza-cdR進(jìn)行下一步試驗(yàn)的工作濃度。見表2。
表2 水蛭提取物、5-Aza-cdR處理48 h后對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞增殖抑制作用
水蛭提取物對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞DNMT1、DNMT3a、DNMT3b mRNA表達(dá)有抑制作用,IC50藥物濃度下處理 48 h 后,DNMT1、DNMT3a、DNMT3b mRNA表達(dá)降低,與對(duì)照組比較兩者間比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);與陽性對(duì)照 5-Aza-cdR 組比較,對(duì) DNMT1 mRNA 表達(dá)降低要弱于對(duì)照組(P<0.05),但水蛭提取物抑制DNMT3a、DNMT3b mRNA表達(dá)的作用要強(qiáng)于5-Aza-cdR,兩者比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。 見表 3,圖 1~3。
圖1 RT-PCR擴(kuò)增肝癌細(xì)胞HepG2 DNMT1 mRNA表達(dá)電泳圖
圖2 RT-PCR擴(kuò)增肝癌細(xì)胞HepG2 DNMT3a mRNA表達(dá)電泳圖
圖3 RT-PCR擴(kuò)增肝癌細(xì)胞HepG2 DNMT3b mRNA表達(dá)電泳圖
對(duì)照組 HepG2 細(xì)胞 DNMT1、DNMT3a、DNMT3b表達(dá)依次為DNMT1高度表達(dá),而DNMT3a、DNMT3b分別中、低度表達(dá)。經(jīng)水蛭提取物處理后,DNMT1、DNMT3a、DNMT3b 表 達(dá) 明 顯 降低 , 尤 其DNMT3b表達(dá)降低最為明顯,與對(duì)照組比較差異有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P<0.01),與陽性對(duì)照5-Aza-cdR組比較,DNMT1表達(dá)要高,但降低DNMT3a、DNMT3b效果明顯優(yōu)于5-Aza-cdR組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,P<0.01)。 數(shù)據(jù)見表 4。
表3 水蛭提取物對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞DNMT1、DNMT3a、DNMT3b mRNA表達(dá)水平的影響(灰度值,目的基因/GAPDH)
表4 水蛭提取物對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞DNMT1、DNMT3a、DNMT3b蛋白表達(dá)水平的影響 (光密度值,)
表4 水蛭提取物對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞DNMT1、DNMT3a、DNMT3b蛋白表達(dá)水平的影響 (光密度值,)
組 別水蛭提取物組5-Aza-cdR組對(duì)照組DNMT1 562±183**△△323±241**1127±355 DNMT3a 496±164**△624±201*873±352 DNMT3b 182±84**△△341±127*483±212
雖然肝癌細(xì)胞發(fā)生甲基化異常的模式目前仍不清楚, 但 DNMTs, 包括 DNMT1,DNMT3a,DNMT3b已被證實(shí)在肝癌細(xì)胞內(nèi)存在表達(dá)異常[6-7]。其中DNMT1在正常細(xì)胞S期復(fù)制過程中具有維持甲基化的功能,多數(shù)表現(xiàn)為散在的C被甲基化,而CpG島未被甲基化[8]。DNMT1高表達(dá)是CpG島甲基化紊亂的重要因素之一,DNMT1高表達(dá)總是伴有總基因組DNA低甲基化和癌基因低甲基化或抑癌基因高甲基化。通過siRNA靶向抑制DNMT1表達(dá)后腫瘤相關(guān)基因啟動(dòng)子如RASSF1A、p16等可發(fā)生去甲基化而重新表達(dá)[9-10]。
有報(bào)道及我們本課題組前期研究結(jié)果表明水蛭可通過直接殺傷、誘導(dǎo)分化及凋亡等機(jī)制發(fā)揮抗腫瘤作用[5,11],能否通過DNA去甲基化作用發(fā)揮抗腫瘤作用是值得研究的問題。本研究發(fā)現(xiàn),水蛭提取物對(duì)肝癌HepG2細(xì)胞具有增殖抑制作用,且具有劑量依賴性。HepG2細(xì)胞中DNMT1基因表達(dá)明顯增高,DNMT3a、DNMT3b基因呈中、低度表達(dá)。而經(jīng)IC50濃度的水蛭提取物處理后 DNMT1、DNMT3a、DNMT3b基因表達(dá)顯著降低,尤其可完全抑制DNMT3b基因的表達(dá),其蛋白表達(dá)也呈弱陽性。雖然水蛭降低DNMT1表達(dá)作用遠(yuǎn)低于對(duì)照藥物甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-cdR,但降低DNMT3a、DNMT3b的作用要優(yōu)于5-Aza-cdR。結(jié)果表明DNA去甲基化作用可能是水蛭提取物抗腫瘤的機(jī)制之一,也提示從抗腫瘤中藥中篩選DNA去甲基化中藥有效成分具有可行性。
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