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    腦膠質(zhì)瘤細胞SHG44與U87-MG輻射敏感性差異及其機制初步研究

    2011-08-04 01:21:22孫志強
    中國醫(yī)藥指南 2011年29期
    關(guān)鍵詞:存活曲線膠質(zhì)瘤存活率

    孫志強

    (常州市第二人民醫(yī)院放療科,江蘇 常州 213000)

    腦膠質(zhì)瘤屬膠質(zhì)細胞源性的良、惡性中樞神經(jīng)系統(tǒng)腫瘤,其中惡性膠質(zhì)母細胞瘤是成人原發(fā)性腦腫瘤中最普遍的亞型[1],因為大多數(shù)膠質(zhì)瘤呈浸潤性生長且與周圍腦組織邊界不清,所以治療十分困難。放射治療是最有效的輔助治療,但膠質(zhì)瘤為中等放射敏感度,如何增加腫瘤組織的輻射敏感性,減輕正常組織損傷,以提高治療效果,是我們的目的所在。環(huán)氧化酶2(Cyclooxygenase,COX-2)在許多惡性腫瘤中呈高表達,與局部浸潤、遠處轉(zhuǎn)移及預后等關(guān)系密切[2]。許多研究發(fā)現(xiàn)COX-2抑制劑在體外和動物實驗中均有抗腫瘤與放射增敏作用,但其具體作用機制目前尚不清楚[3-5]。本實驗通過克隆法、反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(Reverse transcriptase PCR,RT-PCR)法檢測60Co-γ射線照射兩種膠質(zhì)瘤細胞SHG44與U87-MG克隆存活率及COX-2 mRNA表達水平的關(guān)系,探討膠質(zhì)瘤細胞輻射敏感性差異的可能機制,為尋求增強放射敏感性藥物提供理論支持。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    腦膠質(zhì)瘤細胞SHG44及細胞U87-MG,由蘇州大學腫瘤放射生物研究室提供;RPMI 1640培養(yǎng)基(Gibco);胎牛血清購(四季青);RNeasy Mini Kit,QIAshredder Homogenizers(QIAGEN);Rtase M-MLV/RTase Hˉ,Random primers(Takara);COX-2引物、18S rRNA引物(生工)。

    1.2 方法

    1.2.1 輻照條件

    60Co-γ射線(劑量率1Gy/min,源距2.8m)輻照。

    1.2.2 克隆法檢測細胞存活率

    以對數(shù)生長期細胞制備單細胞懸液,接種24h后細胞貼壁,給予不同劑量60Co-γ射線照射,照射后胰酶消化制備單細胞懸液,以500個細胞/皿接種至60mm培養(yǎng)皿,培養(yǎng)11~12d后甲醇固定、Gimsa染色后,顯微鏡下計數(shù)50個細胞以上的細胞集落。每組每個劑量點設(shè)三個平行樣。計算各種實驗條件下的克隆形成率。應用Graphpad prism 5 Demo 軟件,以單擊多靶模型S= 1 - (1 - e - D/ Do) N,擬合細胞存活曲線,測定、計算Do、Dq和SF2等多個放射生物學參數(shù)。獨立性實驗重復3次。

    1.2.3 RT-PCR法測定COX-2 mRNA的表達水平

    對數(shù)生長期的SHG44細胞和U87-MG接種24h后,胰蛋白酶消化,收集細胞。RNeasy Mini Kit提取細胞總mRNA??俁NA先逆轉(zhuǎn)錄反應合成第一鏈。取1μL逆轉(zhuǎn)錄反應產(chǎn)物進行PCR擴增,COX-2上游引物為5’-TGAAACCCACTCCAAACACA-3’,下游引物 3’-AACTGATGC GTGAAGTGCTG-5’,18S rRN下游引物5’-GTAACCCGTTGAACCC CATT-3’,下游引物3’-CCATCCAATCGGTAGTAGCG-5’。反應條件:94℃預變性3min,94℃變性30s,57℃退火30s,72℃延伸30s,擴增25個循環(huán)PCR產(chǎn)物經(jīng)3%瓊脂糖凝膠水平電泳分離,并與DNA分子量Marker進行比較,Bandscan5.0圖像分析軟件行半定量分析。

    1.3 統(tǒng)計學處理

    2 結(jié) 果

    2.1 克隆法測定60Co-γ線照射對SHG44和U87-MG細胞存活率的影響

    隨著照射劑量的增加,細胞漸失去分裂增生的能力,在10 Gy組僅有極少數(shù)細胞能形成克隆。圖1不同照射劑量下SHG44和U87-MG細胞的存活曲線;兩種細胞的存活分數(shù)隨著照射劑量的增高而下降,屬于單擊多靶模型。

    表1為采用單擊多靶模型擬合后獲得的多個放射生物學參數(shù):平均致死劑量D0,細胞受損所需準閾劑量Dq,2Gy時細胞存活分數(shù)SF2。

    由表1可見,U87-MG細胞的D0、Dq、SF2值均較SHG44細胞的值小,其差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

    2.2 RT-PCR測定SHG44、U87-MG細胞COX-2 mRNA表達水平,見圖2和表2。

    圖1 60Co-γ線照射后SHG44和U87-MG細胞克隆形成率

    表1 SHG44和U87-MG細胞放射增敏參數(shù)(±s,n=3)

    與SHG44細胞相比,*P<0.05

    細胞組別 D0 Dq SF2 SHG44 3.18±0.21 2.63±0.11 0.83±0.03 U87-MG 3.07±0.17* 1.86±0.09* 0.74±0.02*

    圖2 SHG44和U87-MG細胞COX-2 mRNA與18S rRNA表達

    圖2示,SHG44和U87-MG細胞組COX-2 mRNA與18S rRNA泳道上可見一大小與引物設(shè)計理論值相符的特異性擴增條帶。以18S rRNA灰度定為1,COX-2 mRNA 相對表達量=COX-2 cDNA/18S rRNA cDNA。

    表2 SHG44細胞COX-2 mRNA相對表達水平

    表2中,U87-MG細胞COX-2 mRNA相對表達水平較SHG44細胞高,其差異具有顯著性 (P<0.01)。

    3 討 論

    環(huán)氧化酶(cyclooxygenase,COX)是參與花生四烯酸轉(zhuǎn)化為各種內(nèi)源性前列腺素(PGs)過程中重要的限速酶,參與機體的多種病理生理過程。其中COX-2是一種誘導型酶。近年來研究顯示,COX-2在一些腫瘤中存在過度表達現(xiàn)象,提示COX-2可能與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[6]。國外相關(guān)研究表明放療中射線是刺激COX-2表達的一種因素,能增強細胞內(nèi)COX-2的表達水平,并隨具有劑量效應[7]。

    從細胞存活曲線圖發(fā)現(xiàn),兩種膠質(zhì)瘤細胞的存活分數(shù)隨輻射劑量的增高呈指數(shù)性降低,細胞的劑量-存活曲線符合單擊多靶模型。放射生物學參數(shù)中,D0是存活率下降63%所需劑量,D0越小,放射敏感性越強;Dq代表細胞累積亞致死性損傷的能力,Dq減小,放射敏感性增強;SF2是代表細胞放射敏感性的重要指標,SF2越大,放射抗拒性越強。U87-MG細胞的D0、Dq、SF2值均小于SHG44細胞,其差異具有顯著性(P<0.05),表明U87-MG細胞的輻射敏感性大于SHG44細胞。本實驗中,檢測了兩種膠質(zhì)瘤細胞SHG44與U87-MG 的COX-2 mRNA表達水平,發(fā)現(xiàn)U87-MG細胞的COX-2 mRNA相對表達水平高于SHG44細胞,其差異具有顯著性(P<0.01)。Pyo H等[8]用COX-2選擇性抑制劑NS-398處理人NCI-H460肺癌移植瘤裸鼠時發(fā)現(xiàn),NS-398的輻射增敏作用與細胞表達COX-2的能力相關(guān)。NS-398聯(lián)合輻射可顯著抑制高表達COX-2的NCI-H460肺癌移植瘤的生長。Amirghahari[9]等認為COX-2選擇性抑制劑通過COX-2蛋白依賴機制增強細胞的輻射敏感性。由此我們推測膠質(zhì)瘤細胞的輻射敏感性與其COX-2 mRNA表達水平密切相關(guān),這些實驗結(jié)果為放療過程中應用靶向調(diào)節(jié)COX-2 水平的藥物提供重要的參考。

    [1]Legler JM,Gloeckler Ries LA,Smith MA,et al.Brain and other central nervous system cancers:recent trends in incidence and mortality[J].Natl Cancer Inst,1999,91(16):1382-1390.

    [2]Patrignani P,Tacconelli S,Sciulli M G,et al.New insights into COX-2 biology and inhibition[J].Brain Res Brain Res Rev,2005,48(2): 352-359.

    [3]Thomas W,Janet M,Mark D,et al.Synergy between Celecoxib and Radiotherapy Results from Inhibition of Cyclooxygenase-2-Derived Prostaglandin E2, a Survival Factor for Tumor and Associated Vasculature[J].Cancer Res,2004,64(1): 279-285.

    [4]Nakata E,Mason K A,Hunter N,et al.Potentiation of tumor response to radiation or chemoradiation by selective cyclooxygenase-2 enzyme inhibitors[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2004,58(2): 369-375.

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    [8]Pyo H,Choy H,Amorino GP,et al.A Selective Cyclooxygenase-2 Inhibitor,NS-398,Enhances the Effect of Radiation in Vitro and in Vivo Preferentially on the Cells That Express Cyclooxygenase-2[J].Clin Cancer Res,2001,7(10):2998-3005.

    [9]Amirghahari N,Harrison L,Smith M,et al.NS398 radiosensitizes an HNSCC cell line by possibly inhibiting radiation-induced expression of COX-2[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2003,57(5):1405–1412.

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