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      無抗生素微生物發(fā)酵飼料對仔豬免疫及抗氧化功能的影響

      2011-07-12 00:32:34中國農(nóng)業(yè)大學工學院王娟娟王順喜
      中國飼料 2011年16期
      關鍵詞:發(fā)酵飼料轉(zhuǎn)化率斷奶

      中國農(nóng)業(yè)大學工學院 王娟娟 王順喜 *

      中國農(nóng)業(yè)大學農(nóng)業(yè)部飼料工業(yè)中心 陸文清

      北京晟亞育達生物科技有限公司 胡起源

      研究表明,飼料經(jīng)微生物發(fā)酵后,營養(yǎng)價值可得到明顯改善,pH明顯降低,富含有益微生物和有機酸。本試驗旨在應用固態(tài)發(fā)酵技術(shù)生產(chǎn)微生物發(fā)酵飼料,進行豬的無抗生素飼養(yǎng),在前期試驗基礎上(陸文清和王翔,2008),進一步檢測發(fā)酵飼料對斷奶仔豬的免疫功能及抗氧化功能的影響。

      1 材料與方法

      1.1 試驗動物及日糧 試驗動物選用 “杜長大”三元雜交仔豬,試驗采用玉米-豆粕型基礎日糧?;A日糧為對照組;基礎日糧+金霉素為抗生素組;基礎日糧+發(fā)酵飼料為發(fā)酵料組。參考NRC(1998)豬的營養(yǎng)需要,按照等能量等蛋白質(zhì)的原則配制基礎日糧,日糧組成及營養(yǎng)水平見表1。發(fā)酵飼料為北京晟亞育達生物科技有限公司研制,含有發(fā)酵乳桿菌(Lactobacillus fermentum)、釀酒酵母 (Saccharomyces cerevisae)和枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis),預混料由北京德寶群興科貿(mào)有限公司提供。

      1.2 試驗設計與飼養(yǎng)管理 選取72頭平均體重為(14.17±0.24)kg 斷奶的健康“杜長大”三元雜交仔豬,按飼養(yǎng)試驗要求隨機分為3個處理,每個處理設3個重復(圈),每圈8頭。按體重相近,公母各半,同一圈中每頭仔豬盡可能來自不同母豬的原則,隨機分成9圈。免疫消毒程序按豬場常規(guī)方法進行。

      1.3 測定指標 試驗開始后,在第7天和第21天時,清晨前腔靜脈采血10 mL。其中,2 mL注入EDTA-K2抗凝瓶中混勻,在日本產(chǎn)F-800型全自動血細胞分析儀進行白細胞數(shù)量和分類的測定,淋巴細胞轉(zhuǎn)化率試驗根據(jù) 《全國臨床檢驗操作規(guī)程》(1991)執(zhí)行。余下的血液靜置、離心(3000 r/min,10 min),分離血清,用于免疫球蛋白及抗氧化酶活性的測定。

      表1 試驗日糧組成及營養(yǎng)水平

      血清免疫球蛋白(IgA、IgG和IgM)采用用免疫透射比濁法測定,用日本島津CL-7200型全自動生化分析儀測定。

      血清中總抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)和過氧化氫酶(CAT)的活性以及丙二醛(MDA)的含量,按照試劑盒說明書測定(南京建成生物工程研究所)。

      1.4 統(tǒng)計分析 數(shù)據(jù)的統(tǒng)計分析采用SPSS13.0 for Windows(SPSS Inc.,USA)軟件進行方差分析,用Tukey法進行多重比較。P<0.05為差異顯著程度。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 斷奶仔豬血液免疫指標 結(jié)果見表2。

      表2 發(fā)酵飼料對斷奶仔豬免疫功能的影響

      由表2可知,試驗開始后的第21天與第7天相比,血液中白細胞數(shù)量和淋巴細胞轉(zhuǎn)化率呈上升趨勢。試驗第7天白細胞數(shù)量組間無顯著差異(P>0.05),但在試驗期末白細胞數(shù)量組間差異顯著(P<0.05),發(fā)酵料組顯著高于對照組。單核細胞、嗜酸性粒細胞在試驗第7天還未分化出來,試驗期末二者在血液中的含量組間無顯著差異,此外,在試驗開始后的第7天和21天,白細胞分類的其他成分在各處理組也無顯著差異(P>0.05)。在試驗第7天,淋巴細胞轉(zhuǎn)化率以發(fā)酵料組最高,顯著高于其他兩組(P<0.01)。試驗期末淋巴細胞轉(zhuǎn)化率以發(fā)酵料組最高,抗生素組次之,對照組最低,顯著低于其他兩組(P<0.001)。

      由表2可見,隨著試驗期的增加,仔豬血清I-gA、IgG和IgM水平呈上升趨勢。在試驗期末,發(fā)酵料組仔豬血清IgA濃度顯著高于其他兩組(P<0.01)。在整個試驗期內(nèi),三組仔豬血清IgG和IgM的含量無顯著差異(P>0.05)。

      2.2 斷奶仔豬血液抗氧化指標 結(jié)果見表3。

      表3 發(fā)酵飼料對斷奶仔豬抗氧化指標的影響

      從表3可以看出,隨著試驗期的增加,發(fā)酵料組仔豬血液中 T-AOC、SOD、GSH-Px和 CAT水平均呈上升趨勢,MDA的濃度呈下降趨勢。在試驗期第7天,發(fā)酵料組仔豬血液中SOD、GSH-Px和CAT的活性均顯著高于對照組 (P<0.01或P<0.001)。發(fā)酵料組除SOD的活性顯著高于抗生素組外(P<0.01),兩組間其他酶的活性均差異不顯著(P>0.05)。在試驗第7天,仔豬血液的MDA值在各組間差異不顯著(P>0.05)。

      在試驗期末,發(fā)酵料組仔豬血液中T-AOC、SOD、GSH-Px和CAT水平均顯著高于對照組(P<0.05或P<0.01或P<0.001),MDA值顯著低于對照組(P<0.05)。發(fā)酵料組除SOD的活性顯著高于抗生素組外(P<0.01),兩組間其他抗氧化指標均差異不顯著(P>0.05)。

      3 討論

      3.1 發(fā)酵飼料對斷奶仔豬血液免疫指標的影響從試驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著試驗期的增加,發(fā)酵飼料組豬血液中白細胞數(shù)量高于對照組,淋巴細胞轉(zhuǎn)化率也高于抗生素組和對照組。研究表明,日糧添加益生素(含酪酸菌、糞鏈球菌、嗜酸乳桿菌、乳鏈球菌、酵母菌和芽孢桿菌)可以增加血液中白細胞數(shù)量(武晶等,2009)。T淋巴細胞是體內(nèi)主要的免疫活性細胞,在胸腺中發(fā)育成熟以后經(jīng)血液、淋巴循環(huán)運行定居于外周免疫器官,發(fā)揮免疫細胞的功能,以植物凝集素作為促分裂因子來檢測淋巴細胞的轉(zhuǎn)化功能,其轉(zhuǎn)化率的高低常作為衡量機體免疫水平的指標,T淋巴細胞轉(zhuǎn)化率越高,意味著淋巴細胞在外來因子的刺激下增殖反應越強,機體的細胞免疫能力越強。有研究報道,斷奶仔豬飼料中添加益生菌 (酵母菌和乳酸菌),T淋巴細胞的轉(zhuǎn)化率提高(朱元招等,2008;胡發(fā)軍等,2003)。這表明,發(fā)酵飼料中益生菌有刺激免疫的作用,日糧添加發(fā)酵飼料能刺激仔豬的非特異性免疫反應,使得豬在疫病應激情況下生長性能良好。

      本試驗期第21天時,發(fā)酵料組仔豬血清IgA的濃度高于抗生素組和對照組。Erickson和Hubbard(2000)研究表明,乳酸桿菌能夠提高試驗動物模型IgA的產(chǎn)量。Perdigon等(1995)研究報道,小鼠口服嗜酸乳酸桿菌或干酪乳酸桿菌能夠顯著提高分泌IgA漿細胞的數(shù)量。由此看來,該發(fā)酵飼料可能因其富含發(fā)酵乳桿菌,從而促進仔豬機體的體液免疫反應,提高機體抵抗能力,抵抗各種病原微生物感染。

      3.2 發(fā)酵飼料對斷奶仔豬血液抗氧化指標的影響 大量研究表明,益生菌具有抗氧化活性(張江巍和蕾郁生,2005),本試驗結(jié)果顯示,與抗生素添加組相比,日糧添加發(fā)酵飼料可顯著提高仔豬血液SOD含量。由此可見,添加富含益生菌發(fā)酵飼料的日糧可增強仔豬機體清除自由基的能力,有助于提高仔豬的抗應激能力。

      4 結(jié)論

      從血液中白細胞數(shù)量、淋巴細胞轉(zhuǎn)化率和I-gA的含量看,采食添加發(fā)酵飼料的日糧后,能刺激仔豬機體的非特異性免疫反應和體液免疫反應,從而提高豬的抗應激和抗病能力,改善豬的生長性能。

      從血液抗氧化指標的測定結(jié)果看,采食添加發(fā)酵飼料的仔豬機體抗氧化能力增強,利于緩解仔豬斷奶應激。

      [1]胡發(fā)軍,林映才,鄭黎,等.活性酵母對早期斷奶仔豬生產(chǎn)性能和免疫機能的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2003,15(4):49 ~ 53.

      [2]陸文清,王翔.發(fā)酵飼料對大腸桿菌感染仔豬的生長性能、腸道菌群和血清生化參數(shù)的影響[J].飼料與畜牧,2008,9:28~30.

      [3]武晶,趙克斌,王立賢,等.育肥豬日糧中通過營養(yǎng)調(diào)控和添加益生素或牛至油替代抗生素的研究[J].動物營養(yǎng)學報,2009,21(5):645 ~ 651.

      [4]張江巍,蕾郁生.乳酸菌抗氧化活性的研究進展 [J].中國乳品工業(yè),2005,33(1),33 ~ 37.

      [5]中華人民共和國醫(yī)政司.全國臨床檢驗操作規(guī)程[M].南京:東南大學出版社,1991.

      [6]朱元招,尚秀國,楊立彬,等.乳酸桿菌復合菌劑對仔豬生長和免疫的影響[J].飼料研究,2008,1:1 ~ 3.

      [7]Erickson K L,Hubbard N E.Probiotic immunomodulation in health and disease[J].J Nutr,2000,130:403 ~ 409.

      [8]NRC.Nutient Requirements of Swine (10th revised edition) [M].Washington,DC:National Academy Rress,1998.

      [9]Perdigon G,Alvarez S,Rachid M,et al.Immune system stimulation by probiotics[J].J Dairy Sci,1995,78:1597 ~ 1606.

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