王剛 周廣東 蔣朝華 曹衛(wèi)剛
肢體淋巴水腫是淋巴循環(huán)系統(tǒng)最常見的疾病之一,其原因?yàn)榱馨凸芟忍彀l(fā)育不良或繼發(fā)性淋巴管阻塞等。目前,淋巴水腫的治療方法包括物理治療及手術(shù)治療等,雖然有一定效果,但仍不理想。尋求有效、簡(jiǎn)便、安全且能針對(duì)淋巴水腫的治療方法,一直是國內(nèi)外淋巴醫(yī)學(xué)工作者努力的方向。
近年來,應(yīng)用脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞(Adipose derived stem cells,ADSC)修復(fù)缺血損傷的研究已顯示出良好的應(yīng)用前景。研究發(fā)現(xiàn),ADSC在體內(nèi)可以向血管內(nèi)皮分化,形成血液回流的通道,從而修復(fù)缺血損傷[1]。另外,促進(jìn)淋巴管再生的研究發(fā)展也很快,如VEGF-c與其受體VEGFR-3相互作用可促進(jìn)受損區(qū)淋巴管再生,可減輕肢體淋巴水腫[2]。血液循環(huán)與淋巴循環(huán)具有同源性,ADSC是否可用于淋巴管修復(fù)?能否形成淋巴回流的通道?如果可行的話,因ADSC來源廣,獲取的細(xì)胞數(shù)量多,且對(duì)病人損傷小,無疑可以成為淋巴水腫的新的治療方法。
本研究通過分離提取ADSC,并植入鼠尾淋巴水腫淋巴回流阻塞區(qū),通過微淋巴管熒光示蹤,檢測(cè)其是否可以參與淋巴管再生并促進(jìn)急性淋巴水腫的消退。
CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(Forma,美國);培養(yǎng)皿(Corning,美國);50 mL 離心管(Falcon,美國);低速離心機(jī)(Heraeus,美國);倒置相差顯微鏡(Olympus,日本);熒光體式顯微鏡(Leica,德國);手術(shù)顯微鏡;游標(biāo)卡尺;膠原酶NB4(包含Ⅰ型膠原酶,Ⅱ型膠原酶和中性蛋白酶1,Serva公司),MesenPRO RS Medium(Gibco,美國),DMEM (HyClone,美國),胎牛血清 (SAFC Bioscience, 美國);PBS 緩沖液;Dextran rhodamine(Eugene Oregon,美國)。
基礎(chǔ)培養(yǎng)液:LG-DMEM,10%胎牛血清,L-谷氨酰胺 300 μg/mL,抗壞血酸 50 μg/mL,青霉素、鏈霉素各100 U/mL。
成骨誘導(dǎo)液:LG-DMEM,10%胎牛血清,L-谷氨酰胺 300 μg/mL,抗壞血酸 50 μg/mL,青霉素、鏈霉素各 100 U/mL,10 mM β-磷酸甘油、10 nM 維生素D3。
將6周齡的GFP小鼠腹股溝部位的脂肪作為ADSC的來源。用氯霉素滅菌水反復(fù)沖洗脂肪,用等體積膠原酶消化 (0.075%)1.5 h。1 500 r/min離心10 min,收集底層沉淀物。將細(xì)胞震蕩混勻,細(xì)胞計(jì)數(shù)儀常規(guī)計(jì)數(shù)有核細(xì)胞數(shù)。按4×105cells/cm2細(xì)胞密度接種于培養(yǎng)皿內(nèi),用含10%胎牛血清的低糖DMEM培養(yǎng)。將接種細(xì)胞的培養(yǎng)皿置于37℃、5%CO2、100%飽和濕度條件下培養(yǎng)。48 h后進(jìn)行首次換液,PBS沖洗去除漂浮組織及血細(xì)胞,更換培養(yǎng)液,繼續(xù)在相同條件下培養(yǎng)。每隔3~4 d換液,直至細(xì)胞接近80%融合時(shí)進(jìn)行傳代,用0.25%胰蛋白酶消化傳代。 以(0.5~1)×l04cells/cm2細(xì)胞密度接種于新的培養(yǎng)皿內(nèi)。再次達(dá)到80%融合繼續(xù)傳代培養(yǎng),取第2代細(xì)胞用于成骨誘導(dǎo),誘導(dǎo)2周后進(jìn)行茜素紅染色。
取15只6周齡的C57小鼠,腹腔內(nèi)注射10%的水合氯醛0.1 mL。麻醉成功后,鼠尾根部用75%乙醇消毒,尾基部切開皮膚達(dá)深筋膜,環(huán)形切除寬為1 mm的皮膚,鼠尾尖部皮內(nèi)注射亞甲藍(lán)0.01 mL,使切除部位的兩條深層淋巴管均顯色并將其阻斷。
取第一代ADSC,0.25%胰酶消化,PBS重懸,制成細(xì)胞懸液40 μL,細(xì)胞計(jì)數(shù)約為2×106cells/mL。將細(xì)胞懸液注入到鼠尾淋巴回流阻塞區(qū)(在模型制作30 d后),分別于近心端和遠(yuǎn)心端等量注射。每隔7 d重復(fù)注射(n=10)。 對(duì)照組(n=5)注射等量生理鹽水。
在動(dòng)物模型制作完成后,每隔3 d測(cè)量鼠尾直徑并記錄。在距第一次植入后30 d做尾尖皮內(nèi)注射Lysine-fixable rhodamine dextran(700 KDa,Molecular Prob,紅色熒光)10 μL,注射后 10 min,用熒光體式顯微鏡觀察鼠尾淋巴回流的情況。
原代細(xì)胞接種5 h后,開始貼壁,24~48 h內(nèi)細(xì)胞形態(tài)呈小圓形,色深;48 h后細(xì)胞伸展呈成纖維細(xì)胞樣;72 h后克隆開始形成;傳代后細(xì)胞仍呈成纖維細(xì)胞樣生長(zhǎng)(圖1-A,B)。
ADSC在成骨誘導(dǎo)液中培養(yǎng)3周,行茜素紅染色,可見紫紅色結(jié)晶沉積(圖 1-C,D),說明 ADSC具有成骨分化能力。
模型制備后3 d,鼠尾開始明顯增粗,直到術(shù)后3周,鼠尾直徑達(dá)到最大并保持穩(wěn)定。30 d后,鼠尾直徑逐漸下降,至70 d時(shí)鼠尾創(chuàng)面恢復(fù)。實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組經(jīng)配對(duì)t檢驗(yàn),P>0.05,無顯著差異(圖2)。
移植后1個(gè)月,鼠尾淋巴管熒光造影顯示注射區(qū)呈綠色,迂曲的淋巴管顯示為黃色,說明移植入的細(xì)胞貼附到了淋巴回流的通道。對(duì)照組則無該現(xiàn)象(圖 3)。
圖1 小鼠原代ADSCs培養(yǎng)形態(tài)學(xué)觀察和成骨誘導(dǎo)檢測(cè)(倒置相差顯微鏡,40×)Fig.1 Morphology observation of primary passage of mouse ADSCs and detection of osteogenic induction(Inverted phase contrast microscope,40×)
圖2 鼠尾淋巴水腫模型在60 d內(nèi)的形態(tài)變化Fig.2 The morphology of the lymphedema model on mouse tail
圖3 鼠尾淋巴水腫模型阻塞區(qū)淋巴管熒光造影Fig.3 Fluorescence micro-lymphangiography of the mouse tail in the lymphedema model on mouse tail
ADSC在缺血等低氧刺激下可以表達(dá)血管內(nèi)皮細(xì)胞表型,同時(shí)具備血管內(nèi)皮的部分功能[3];也有研究發(fā)現(xiàn),ADSC可以分泌內(nèi)皮生長(zhǎng)因子與肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子,從而促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞的增殖、遷移和血管新生[4];Cai等[5]發(fā)現(xiàn),干擾ADSC分泌肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子,會(huì)影響其修復(fù)血管損傷的能力。鑒于淋巴循環(huán)與血液循環(huán)具有同源性,我們假設(shè)ADSC也可用于修復(fù)損傷的淋巴管。
經(jīng)典的淋巴水腫動(dòng)物模型有很多種,如犬后肢、兔后肢、兔耳等。我們選擇鼠尾淋巴水腫模型是因?yàn)樵搫?dòng)物模型可復(fù)制性強(qiáng)、穩(wěn)定性高、操作相對(duì)容易。但由于低等動(dòng)物的淋巴管再生能力強(qiáng),大部分種系的鼠尾淋巴水腫模型僅能夠維持20~30 d,而部分品系老鼠維持時(shí)間較久,如C57小鼠可維持60~70 d左右,選擇此種小鼠模型能更好地觀察淋巴管損傷修復(fù)的過程和各實(shí)驗(yàn)因素的影響。同時(shí),由于時(shí)間窗的存在,鼠尾模型更多的被用于觀察急性淋巴管損傷后的病理變化,如膠原、淋巴管再生、異常的皮內(nèi)脂肪堆積等。本實(shí)驗(yàn)中,我們利用鼠尾自身淋巴管再生的時(shí)間段,研究ADSC是否參與該再生過程。
近期有多項(xiàng)研究發(fā)現(xiàn),VEGF-c作用于其特異性受體VEGFR-3,可以促進(jìn)淋巴管再生,如將重組人VEGF-c注射入鼠尾淋巴水腫模型,發(fā)現(xiàn)水腫消退加快;在注射抗VEGFR-3的單克隆抗體后,VEGF-c的治療作用下降[6]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,ADSC植入后,水腫消退速度沒有明顯加快。我們認(rèn)為原因可能是:①鼠尾皮下組織致密,細(xì)胞植入后易聚集,與組織接觸面少,難以存活,故我們采用少量反復(fù)注射的方法;②實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)部分C57小鼠水腫期可達(dá)70 d以上,形成慢性淋巴水腫;③細(xì)胞之間及其與機(jī)體之間的相互作用復(fù)雜,不利因素難以排除。
但我們發(fā)現(xiàn),ADSC可以貼附于淋巴液回流的通道。在組織間隙,從毛細(xì)血管漏出的蛋白通過間質(zhì)液體流回流入淋巴管系統(tǒng)。此間質(zhì)液體流可攜帶與淋巴系統(tǒng)相關(guān)的生長(zhǎng)因子和蛋白酶,從鼠尾遠(yuǎn)心端流入近心端。其中,蛋白酶可以分解組織,形成不規(guī)則的、迂曲的間質(zhì)液體流經(jīng)過的通道,此通道可看作為前淋巴管;間質(zhì)液體流所攜帶的VEGF-c所形成的梯度,可以引導(dǎo)淋巴內(nèi)皮遷移,從而形成淋巴管,完成淋巴循環(huán)的重建[7-8]。本研究中,我們觀察到ADSC形成了這一間質(zhì)液體流回流通道,但ADSC通過分化為淋巴管內(nèi)皮細(xì)胞來參與修復(fù),還是分泌相關(guān)因子促進(jìn)了殘存的內(nèi)皮細(xì)胞或骨髓來源的內(nèi)皮祖細(xì)胞參與再生,尚需進(jìn)一步研究。
[1]Planat-Benard V,Silvestre JS,Cousin B,et al.Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells[J].Circulation,2004,109(5):656-663.
[2]周劍國,胡學(xué)慶,曹衛(wèi)剛,等.人血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子-C基因治療淋巴水腫的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華整形外科雜,2007,23(6):519-521.
[3]Hamou C,Callaghan MJ,Thangarajah H,et al.Mesenchymal stem cells can participate in ischemic neovascularization[J].Plast Reconstr Surg,2009,123(2):45-55.
[4]Nakagami H,Maeda K,Morishita R,et al.Novel autologous cell therapy in ischemic limb disease through growth factor secretion by cultured adipose tissue-derived stromal cells[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2005,25(12):2542-2547.
[5]Cai L,Johnstone BH,Cook TG,et al.Suppression of hepatocyte growth factor production impairs the ability of adipose-derived stem cells to promote ischemic tissue revascularization[J].Stem Cells,2007,25(12):3234-3243.
[6]Rutkowski JM,Moya M,Johannes J,et al.Secondary lymphedema in the mouse tail:Lymphatic hyperplasia,VEGF-C upregulation,and the protective role of MMP-9[J].Microvasc Res,2006,72(3):161-171.
[7]Goldman J,Conley KA,Raehl A,et al.Regulation of lymphatic capillary regeneration by interstitial flow in skin[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2007,292(5):2176-2183.
[8]Rutkowski JM,Boardman KC,Swartz MA.Characterization of lymphangiogenesis in a model of adult skin regeneration[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,291(3):1402-1410.