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    鈍化NF-κB的活化對哮喘大鼠肺組織MIF及血清IL-4的影響

    2011-05-31 08:48:58朱惠源薛永志閆少峰
    中國藥理學(xué)通報 2011年7期
    關(guān)鍵詞:免疫組化炎性支氣管

    朱惠源,薛永志,閆少峰

    (1.包頭醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,內(nèi)蒙古 包頭 014060,2.包頭市中心醫(yī)院呼吸內(nèi)科,內(nèi)蒙古包頭 014040)

    支氣管哮喘是一種炎性氣道高反應(yīng)性疾病,其發(fā)病機制至今仍未完全闡明,可能與多種炎性細胞、炎癥介質(zhì)和以Th2型淋巴因子為主的細胞因子網(wǎng)絡(luò)參與的慢性變應(yīng)性炎癥反應(yīng)有關(guān)。以往的研究表明[1-3],巨噬細胞移動抑制因子(MIF)和 NF-κB 均參與了哮喘的疾病進程。而IL-4是哮喘炎癥反應(yīng)中Th2淋巴細胞分泌,促進IgE介導(dǎo)的免疫應(yīng)答反應(yīng),還能促進血管內(nèi)皮細胞黏附分子的表達從而導(dǎo)致嗜酸粒細胞在炎癥部位的選擇性聚集,導(dǎo)致氣道炎癥[2]。柳氮磺胺吡啶(SASP)為治療炎癥性腸病的主要藥物,具有抗炎抗免疫作用,并可作為NF-κB的特異性抑制劑[4-5]。本研究觀察哮喘大鼠肺組織中MIF、NF-κB及血清IL-4水平變化,并使用工具藥SASP鈍化NF-κB的活化,探討對MIF、IL-4和哮喘的影響,揭示其在支氣管哮喘發(fā)病機制中的作用及其環(huán)節(jié),為支氣管哮喘的藥物治療提供新的靶點和研究方向。

    1 材料與方法

    1.1動物清潔級♀Wistar大鼠40只,體質(zhì)量180~230 g,購自河南省實驗動物中心,實驗動物許可證號:SCXK(豫)2005-0001。

    1.2主要試劑卵蛋白(OVA,Ⅱ級,Sigma公司,A5253);氫氧化鋁分析純(天津金匯太亞化學(xué)試劑有限公司);柳氮磺吡啶結(jié)腸溶膠囊(潮州市強基制藥廠,批號:100505);地塞米松針劑(鄭州卓峰制藥有限公司,批號:08121957);兔抗大鼠 MIF、NF-κB p65多克隆抗體、SABC試劑盒、DAB顯色劑、大鼠IL-4 ELISA試劑盒(武漢博士德公司)。

    1.3方法

    1.3.1動物分組和模型建立大鼠于動物房(環(huán)境溫度20℃ ~25℃,相對濕度50% ~70%)適應(yīng)飼養(yǎng)1周后造模。造模方法依據(jù)文獻報道進行[6]。按隨機數(shù)字表分為4組,每組10只。A組(哮喘模型組):大鼠于d 1腹腔注射1 ml含有OVA 100 mg和氫氧化鋁100 mg的生理鹽水溶液進行致敏,自d15開始,將大鼠置于密閉容器內(nèi),以1%OVA生理鹽水溶液霧化吸入激發(fā)哮喘,每次30 min,每天1次,連續(xù)7 d;B組(柳氮磺胺吡啶組):以同樣方法致敏和激發(fā)大鼠,并于每次激發(fā)前30 min腹腔注射SASP生理鹽水溶液(250 mg×2粒溶入10 ml NS中,配制成濃度為50 g·L-1的混懸液,超聲助溶,每日投藥量按成人70 kg體質(zhì)量與大鼠200 g體質(zhì)量1∶0.018比例,給藥劑量300 mg·kg-1);C組(地塞米松組):以同樣方法致敏和激發(fā)大鼠,并于每次激發(fā)前30 min腹腔注射地塞米松(1 mg·kg-1);D組(空白對照組):以生理鹽水代替OVA注射致敏和霧化激發(fā),余同模型組。

    1.3.2取材各組于最后一次霧化激發(fā)后24 h麻醉處死,取肺左葉置于10%中性福爾馬林液中固定12 h后,常規(guī)石蠟包埋切片,以備進行常規(guī)HE染色和免疫組化實驗;腹主動脈取血,室溫凝固2 h后,低溫離心2 000×g15 min,分離血清并冷凍于-20℃以備進行血清IL-4含量測定。

    1.3.3肺組織免疫組化分析MIF及NF-κB蛋白表達的檢測參照免疫組化試劑盒說明書執(zhí)行,一抗稀釋度均為1∶100。PBS代替一抗作為陰性對照,切片染色中出現(xiàn)棕黃色為陽性表達。每張大鼠切片隨機選取5支中小支氣管高倍視野,采用Image-Pro Plus 6.0圖像分析軟件,分別計算每支中小支氣管陽性染色區(qū)域的平均光密度值(MOD),以所有小支氣管平均光密度值的均值作為該大鼠切片的蛋白表達值[7-8]。

    1.3.4ELISA方法檢測血清IL-4水平按照ELISA檢測試劑盒說明書操作,TMB顯色劑孔為空白對照孔,大鼠血清樣品直接加樣,按程序添加一抗、ABC及TMB顯色劑,終止顯色后立即使用酶標(biāo)儀讀取每孔的吸光度(OD)值。通過CurveExpert 1.3軟件獲得標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算每只大鼠血清的IL-4濃度值。

    1.4統(tǒng)計學(xué)處理所有數(shù)據(jù)采用±s表示,利用SPSS 13.00統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,經(jīng)正態(tài)性分布及方差齊性檢驗后進行單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗。

    2 結(jié)果

    2.1病理學(xué)檢查模型組可見各級支氣管周圍炎性細胞大量浸潤、管腔痙攣狹窄、黏膜上皮細胞水腫、脫落,多見黏液栓,肺組織中炎性細胞浸潤明顯,肺泡間隔增寬;B組和C組各級支氣管周圍炎性細胞浸潤數(shù)量明顯減少,管腔痙攣狹窄減輕,黏液栓減少,肺組織炎細胞浸潤減輕。正常對照組各級支氣管黏膜上皮完整,未見上皮細胞水腫、脫落,管腔無痙攣狹窄,肺組織中未見明顯炎性細胞浸潤,肺泡間隔正常,見Fig 1。

    Fig 1 Pathological changes in lung in different groups (HE strains,×200)

    2.2MIF、NF-κB免疫組化結(jié)果分析A組可見深棕黃色強陽性表達,陽性區(qū)域主要位于各級支氣管黏膜上皮和黏膜下層;B組和C組可見棕黃色陽性表達,主要位于各級支氣管黏膜上皮和黏膜下層;D組支氣管黏膜上皮和黏膜下層可見弱陽性表達。A組肺組織中 MIF、NF-κB的表達高于 D組(P<0.05);B組、C組肺組織中MIF、NF-κB的表達低于A組(P均<0.05);B組和C組之間MIF、NF-κB的表達差異無顯著性(P>0.05)。對 NF-κB、MIF蛋白表達與血清IL-4水平進行相關(guān)性分析,NF-κB與MIF蛋白表達之間具有高度相關(guān)性(r=0.94,P<0.01);NF-κB蛋白表達與血清IL-4水平之間具有高度相關(guān)性(r=0.73,P<0.01);MIF蛋白表達與血清IL-4水平之間具有高度相關(guān)性(r=0.71,P<0.01)。各組肺組織MIF、NF-κB表達免疫組化檢測結(jié)果如Tab 1,各組肺組織MIF、NF-κB表達免疫組化染色見 Fig 2、3。

    2.3血清IL-4水平ELISA檢測結(jié)果模型組血清IL-4水平高于正常對照組(P<0.05);SASP組和DXM組血清IL-4水平低于模型組(P均<0.05);SASP組和DXM組之間血清IL-4水平差異無顯著性(P>0.05)。各組IL-4檢測的濃度值結(jié)果如Tab 1。

    Tab 1 MOD of lung tissue MIF,NF-κB p65 expression and IL-4 level in serum in each group(±s,n=10)

    Tab 1 MOD of lung tissue MIF,NF-κB p65 expression and IL-4 level in serum in each group(±s,n=10)

    A:Asthmatic model;B:Sulfasalazine;C:Dexamethasone;D:Control.*P<0.05 vs control;#P<0.05 vs asthma;△P<0.05 vs Asthma+DXM

    Group MIF(MOD)MOD IL-4 concentration/ng·L -1 A 0.220 ±0.013* 0.171 ±0.009* 25.70 ±7.61*B 0.166 ±0.011#△ 0.137 ±0.004#△ 11.73 ±5.94#△C 0.158 ±0.008# 0.132 ±0.004# 8.49 ±3.33#D 0.097 ±0.003 0.106 ±0.006 5.98 ±4.02

    Fig 2 Expression of MIF protein in lung in different groups by immunohistochemistry(immunohistochemistry strains,×200)

    Fig 3 Expression of NF-κB protein in lung in different groups by immunohistochemistry(immunohistochemistry strains,×200)

    3 討論

    大鼠哮喘模型的制備,通常的方法是采用兩次致敏法(第1次致敏后1周再次OVA腹腔注射致敏1次),但我們的實驗采用吳巧珍等[6]介紹的模型制備方法,僅進行1次致敏,病理結(jié)果顯示,我們的大鼠哮喘模型與兩次致敏模型具備同樣效果,表明模型制備成功。

    MIF是作用廣泛的前炎癥因子和促炎因子,可拮抗糖皮質(zhì)激素的作用,促進多種炎性因子的表達[9]。Mizue 等[2]的研究顯示,MIF-/-哮喘小鼠肺組織中IL-4、IL-5、IL-13 mRNA及其蛋白表達明顯低于MIF+/+哮喘小鼠,可見MIF可上調(diào)哮喘中Th2細胞因子的表達。NF-κB作為一種重要的核轉(zhuǎn)錄因子,參與了多種炎癥蛋白基因的轉(zhuǎn)錄[10]。研究表明,這兩種因子均可促進Th2型細胞因子的表達,加重哮喘病程[1-3]。在我們的實驗結(jié)果中顯示,MIF和NF-κB在哮喘大鼠肺組織中明顯表達,血清IL-4升高,與先前的研究一致。以往對MIF和NF-κB的關(guān)系研究表明[11],MIF可抑制糖皮質(zhì)激素誘導(dǎo)的IκB的合成,從而使NF-κB轉(zhuǎn)位至核內(nèi)導(dǎo)致目的基因轉(zhuǎn)錄,產(chǎn)生相關(guān)的炎性因子;另有研究表明[12],TNF-α可通過激活NF-κB途徑刺激子宮內(nèi)膜間質(zhì)細胞MIF的基因轉(zhuǎn)錄和蛋白表達,從而加重炎癥反應(yīng)??梢娫贛IF和NF-κB的關(guān)系中存在著正反饋機制,兩者相互促進,進一步加重了炎癥反應(yīng)。因此,MIF和NF-κB或成為哮喘進程中重要的治療靶點。

    SASP具有抗菌、抗炎和免疫抑制等效應(yīng),主要用于炎癥性腸病的治療,Olmez等[13]對其在哮喘的應(yīng)用中顯示,SASP干預(yù)可使哮喘小鼠氣道組織病理學(xué)參數(shù)獲得明顯改善,對基底膜厚度的改善優(yōu)于地塞米松組。據(jù)以往的研究顯示[4],SASP是 NF-κB的特異性抑制劑,Weber等[14]的研究進一步提示,SASP可通過直接抑制lκB激酶的活性,抑制lκB的磷酸化及其降解,從而抑制NF-κB的活化。在我們的實驗中,經(jīng)SASP干預(yù)后,大鼠肺組織中MIF和NF-κB的表達較模型組減輕,血清IL-4水平下降,組織病理學(xué)結(jié)果也改善,與DXM的作用差異無顯著性,表明SASP抑制哮喘的機制之一有可能是通過對MIF和NF-κB的抑制作用。因此我們進一步推測,SASP可能是通過鈍化NF-κB的活化,間接地抑制了MIF的基因轉(zhuǎn)錄和蛋白表達,減輕了MIF對糖皮質(zhì)激素誘導(dǎo)的IκB合成的抑制作用,從而抑制了NF-κB和MIF介導(dǎo)的包括IL-4在內(nèi)的多種Th2細胞因子的生成和活化,從而減輕哮喘的炎癥反應(yīng)。

    目前,有關(guān)SASP對哮喘影響的研究較少,我們的實驗提示,SASP對哮喘具有抑制作用,其可能是通過抑制 NF-κB、MIF而實現(xiàn)的。因此,對于 NF-κB、MIF等重要治療靶點的研究,具有重要的指導(dǎo)意義,將為哮喘發(fā)病機制的深入研究以及臨床治療提供新的思路和方法。

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