劉艷琴,海 巖 ,吳樹清
(1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,呼和浩特 010018;2.內(nèi)蒙古疾病預(yù)防控制中心,呼和浩特 010031)
布魯氏菌(Brucella)是革蘭氏陰性兼性細(xì)胞內(nèi)寄生菌,能引起多種家畜的流產(chǎn)、不育,引起人的以發(fā)熱和不育為特征的布魯氏菌病,給畜牧業(yè)發(fā)展和人的健康造成極大的危害。最早于1887年,Bruce從死于“馬爾他熱”的英國士兵脾臟中分離出來[1],目前世界各國布魯氏菌病普查及貿(mào)易檢疫最常用的方法是檢測抗菌體表面脂多糖(LPS)抗體的血清學(xué)方法,由于LPS與其他種屬革蘭氏陰性細(xì)菌之間結(jié)構(gòu)上存在一定的相似性,常導(dǎo)致檢測試驗結(jié)果假陽性出現(xiàn)。很多學(xué)者研究表明,布魯氏菌菌體蛋白抗原誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生的免疫學(xué)反應(yīng)則具有很高的特異性。
布魯氏菌主要外膜蛋白(OMPs)被證明具有抗原性和免疫保護(hù)作用,根據(jù)分子量可將外膜蛋白分為三組,其中第一組外膜蛋白分子量在36-38kDa之間,主要包括OMP10和OMP19;第二組為膜孔蛋白分子量在31-34kDa之間,編碼第二組外膜蛋白的基因有兩個OMP2a和OMP2b;第三組外膜蛋白分子量在25-27 kDa之間[2],編碼第三組主要外膜蛋白的兩個基因分別命名為OMP25和OMP31。其中,OMP25基因在布魯氏菌的所有菌種中是高度保守的,同源性達(dá)98%以上,由核酸變化所引起的氨基酸變化不超過5個,OMP25的缺失可以使布魯氏菌毒力減弱,并能夠?qū)λ拗髌鸬矫庖弑Wo(hù)作用[3]。因此,本研究對OMP25基因進(jìn)行克隆和表達(dá)及抗原特異性檢測,為研制中和保護(hù)抗體與診斷試劑奠定基礎(chǔ)。
布魯氏菌參考菌株A544購自中國獸藥監(jiān)察所;菌株3313為內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)微生物實驗室分離株;質(zhì)粒pGEX-6p-1及大腸桿菌BL21為東北農(nóng)業(yè)大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)微生物實驗室保存;牛布魯氏菌陽性血清和標(biāo)準(zhǔn)陰性血清由本實驗室保存;辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記兔抗牛IgG購自sigma公司。
1.2.1 目的片段的擴(kuò)增及克隆測序
根據(jù)GenBank中OMP25基因核苷酸序列及表達(dá)載體的特異性,利用生物軟件Primer5.0設(shè)計了1對特異性引物:上游引物P1:5'-GCGAATTCATG CGCACTCTTAAGTC-3';下游引物 P2:5'-GCCTCGA GAGAACTTGTAGCCGATG-3'。并分別在上下游引物的5'端加入EcoR I和Xho I酶切位點。PCR反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5min;94℃變性 30 s,55℃復(fù)性50 s,72℃延伸1min,進(jìn)行35個循環(huán);最后72℃延伸10min。同時設(shè)去離子水對照。PCR反應(yīng)結(jié)束后用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測并觀察結(jié)果(圖1)。
對PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳后切膠回收,按北京百泰克生物技術(shù)有限公司的多功能DNA純化回收試劑盒說明進(jìn)行回收操作,回收產(chǎn)物與pMD19-T載體連接,轉(zhuǎn)入宿主菌JM109,挑取陽性重組菌進(jìn)行培養(yǎng),堿變性法提取質(zhì)粒,進(jìn)行PCR和EcoRI與XhoI雙酶切鑒定。委托大連寶生物公司測序,并與GenBank中報道的OMP25基因序列進(jìn)行同源性比較。
1.2.2 表達(dá)載體構(gòu)建
用AxyprepTM DNA Gel Extraction Kit純化經(jīng)限制性內(nèi)切酶 EcoRI、XhoI雙酶切后的 pMD19-T OMP25和pGEX-6p-1,膠回收產(chǎn)物在T4 DNA連接酶作用下,16℃連接過夜,轉(zhuǎn)化至JM109,涂LB平板(Amp抗性),37℃培養(yǎng)過夜,挑取單克隆菌落37℃過夜搖菌培養(yǎng),堿變性法提取質(zhì)粒,進(jìn)行PCR和EcoRI與XhoI雙酶切鑒定。陽性質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至JM109,涂LB平板(Amp抗性),37℃培養(yǎng)過夜,挑取單克隆菌落37℃過夜搖菌,堿裂解法提取質(zhì)粒,再次進(jìn)行PCR和EcoRI與XhoI雙酶切鑒定。將鑒定為陽性的克隆株送至南京金斯特生物工程有限公司測序,進(jìn)一步鑒別出正向插入pGEX-6p-1基因和讀碼框正確的重組子,并將其命名pGEX-OMP25將陽性質(zhì)粒轉(zhuǎn)化BL21感受態(tài)細(xì)胞,在含50 μ g/mL Amp的LB培養(yǎng)基上培養(yǎng)。
1.2.3 pGEX-OMP25重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)及鑒定
將鑒定為陽性重組菌液30μL接種于3mL含有50 μ g/mL Amp的LB培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)過夜。取過夜培養(yǎng)物按1%的量接種在的LB培養(yǎng)基中至OD600值約為 0.6~1.0 h,加入 IPTG誘導(dǎo),并用SDS-PAGE檢測表達(dá)產(chǎn)物,同時用未誘導(dǎo)的菌液和空載體作為陰性對照(圖3)。
將上述的誘導(dǎo)表達(dá)產(chǎn)物以12000 r/min離心收集菌體提取包涵體,置冰浴中超聲波處理10min后11000 r/min轉(zhuǎn)4℃離心10min,分別收集上清和沉淀。將上清和沉淀懸浮液分別進(jìn)行SDS-PAGE和Western-blotting分析,檢測表達(dá)產(chǎn)物的相對分子質(zhì)量和反應(yīng)原性(圖4)。
1.2.4 表達(dá)產(chǎn)物的純化及免疫學(xué)特性檢測
用SDS-PAGE和Western-blotting方法檢測表達(dá)產(chǎn)物包涵體量和免疫反應(yīng)活性。然后切膠用電洗脫方法進(jìn)行蛋白純化。對純化產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE分析(圖 5)。
將純化的蛋白與弗氏完全佐劑乳化后免疫家兔,制備抗血清,用ELISA方法檢測抗體效價。將布魯氏菌S2疫苗株及其它對照菌株同時滅活,超聲波破碎菌體包被96孔酶標(biāo)板,同時用TBS包被酶標(biāo)板作對照,4℃過夜;棄去液體,洗3次拍干;10g/LBSA封閉,37℃孵育2h;棄去液體,洗3次拍干;加入適當(dāng)稀釋的陰性、陽性血清及實驗動物血清,于37℃孵育2h;棄去液體,洗3次拍干;加入稀釋至工作濃度(1:5000稀釋)的山羊抗兔酶標(biāo)抗體100μL,37℃孵育1h;棄去液體,洗3次拍干;加入顯色液,37℃孵育10~15min;加入終止液;測OD492值。以陽性血清孔的OD492值接近1.0,P/N>2.0時說明所制血清與S2抗原有一定的特異性。
用設(shè)計的引物擴(kuò)增得到目的條帶,經(jīng)1.0%的瓊脂糖凝膠電泳分析,擴(kuò)增出了大約642 bp的條帶(圖1),與預(yù)期結(jié)果一致。
pGEX-OMP25重組質(zhì)粒經(jīng)EcoRI與XhoI雙酶切鑒定,結(jié)果(圖2)表明,pMD19-T-OMP25蛋白基因已插入載體中,與預(yù)期的結(jié)果相符,獲得了含有OMP25基因的重組表達(dá)片段的陽性克隆。測序發(fā)現(xiàn)pMD19-OMP25蛋白基因正向插入pGEX-6p-1載體。將重組質(zhì)粒命名為pGEX-OMP25。
對表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE分析表明,pGEXOMP25表達(dá)出了49 kD的條帶(圖3),與預(yù)期結(jié)果一致,說明重組蛋白已成功表達(dá)。誘導(dǎo)表達(dá)4 h的表達(dá)量與5、6、7 h的表達(dá)量差不多,所以取4 h為誘導(dǎo)時間。
Western-blotting分析結(jié)果表明,表達(dá)的目的蛋白能與流產(chǎn)布魯氏菌陽性血清發(fā)生特異性結(jié)合反應(yīng),49 kD處出現(xiàn)特異免疫反應(yīng)條帶(圖4)。
按照電洗脫的操作說明書,對切膠回收的目的蛋白進(jìn)行洗脫,產(chǎn)物經(jīng)SDS-PAGE電泳分析表明獲得了高純度的目的蛋白(圖5)。
將鼠沙門氏菌,波氏桿菌,沙雷氏菌,巴氏桿菌,李氏桿菌做同樣的超聲波處理,做ELISA包被,4℃包被過夜。結(jié)果所制血清與S2的P/N比達(dá)到2以上,有一定的特異性(表1)。
表1 特異性實驗結(jié)果
布魯氏菌的抗原組成復(fù)雜,其外膜蛋白在1980的早期被發(fā)現(xiàn)是具有免疫原性和保護(hù)性的抗原[4],OMP25基因在布魯氏菌種,生物變型和菌株中高度保守[5]。國外的研究工作已經(jīng)發(fā)現(xiàn)并篩選了部分具有較好免疫原性的蛋白質(zhì)作為布魯氏菌診斷和亞單位疫苗的候選蛋白。其中由于布魯氏菌的外膜蛋白(OMPs)是暴露于S菌的表面上,不僅能與IgG 抗體發(fā)生反應(yīng),而且可以引起保護(hù)性免疫反應(yīng),一直被作為研究的重點[5]。
本實驗克隆并表達(dá)了布魯氏菌外膜蛋白OMP25,構(gòu)建了含有布魯氏菌外膜蛋白OMP25的原核表達(dá)載體PGEX-OMP25,并經(jīng)過雙酶切、PCR鑒定,均證明目的基因確實插入了表達(dá)載體。利用DNAStar等生物軟件分析測序結(jié)果,結(jié)果顯示插入片斷與布魯氏菌OMP25基因序列完全一致。說明布魯氏菌OMP25基因的原核表達(dá)載體構(gòu)建成功,利用IPTG(其終濃度達(dá)到0.5mmol/L,37℃誘導(dǎo)4 h)誘導(dǎo),在其宿主菌大腸桿菌BL21中以融合蛋白的形式表達(dá)。PGEX-6P-1的GST標(biāo)簽與外源蛋白的融合表達(dá),有助于提高表達(dá)蛋白的穩(wěn)定性。同時目標(biāo)蛋白的分子量相對較小,在抗原抗體反應(yīng)中效果不太好;以融合蛋白的形式表達(dá),增加了目標(biāo)蛋白的分子量,這為今后研究表達(dá)蛋白的免疫學(xué)特性的研究提供了方便。用表達(dá)的蛋白電洗脫純化與弗氏完全佐劑乳化后免疫家兔制備抗血清,通過 ELISA和Western-blot方法特異性檢測發(fā)現(xiàn),所制的抗血清可以與布魯氏菌S2疫苗株的菌體抗原發(fā)生特異性反應(yīng),而與臨床中易于布魯氏菌發(fā)生交叉反應(yīng)的革蘭氏菌的P/N比相對有明顯的區(qū)別。因此,此研究為病原學(xué)的檢測提供了一個新途徑,同時為進(jìn)一步檢測布魯氏菌病奠定了基礎(chǔ)。
[1]Bruce D.Note on the discovery of a microorganism in Malta fever[J].Practitioner,1887 ,39 :161-170.
[2]Cloeckaert A,Vizcaí no N,Paquet J Y,et al.Major outer membrane proteins of Brucella spp.:past,present and future[J].Vet Microbiol,2002,90(10):229-247.
[3]Jubier Muarin V,Boigegrain R A,Cloeckaert A,et al.Major outer membrane proetin 0MP25 of Brucella suis is involved in inhibition of tumor necrosis factor alpha Production during infection of human macrophages[J].Infct Immun,2001,69(8):4823-4830.
[4]EdmondsM D, CloeckaertA, HagiusS D,etal.Pathogenicity and protective activity in pregnant goats of a Brucella melitensis Delta OMP25 deletion mutant[J].Res Vet Sci,2002,72(3):235-239.
[5]Cloeckaert A,Verger J M,Grayon M,et al.Molecular and immunological characterization of the major outer membrane proteins of Brucella[J].FEMS Microbiol Let,1996,145(1):1-8.