周晶輝,胡超,劉曉柱,彭珍子,張學(xué)文
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué) 生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南 長(zhǎng)沙 410128)
α-半乳糖苷酶(α-galactosidase, EC3.2.1.22)能夠特異性水解α-半乳糖苷結(jié)構(gòu)的碳水化合物[1-2]。α-半乳糖苷酶作為酶制劑添加到豆類飼料中,可以降解半乳糖苷寡糖類抗?fàn)I養(yǎng)因子,有效減少腸道疾病的發(fā)生[3-5]。目前,普通α-半乳糖苷酶制劑難于滿足飼料用酶制劑對(duì)耐熱性和耐酸性的特殊要求,因此,研發(fā)飼用型α-半乳糖苷酶具有很好的市場(chǎng)前景。
筆者以湖南湘西地區(qū)富含豆粕的土壤為材料,篩選獲得1株產(chǎn)α-半乳糖苷酶的細(xì)菌,經(jīng)顯微觀察及基于16S rDNA的序列分析,初步判定細(xì)菌種屬,并結(jié)合液體發(fā)酵培養(yǎng)對(duì)其酶學(xué)特性進(jìn)行了初步研究。
采集湘西某豆腐店周圍富含豆粕下腳料的土壤樣品,封存于無(wú)菌塑料袋中,4 ℃保存,用于制備土壤懸液。初篩培養(yǎng)基[6]:酵母提取物5 g,胰化蛋白胨 10 g,氯化鈉 10 g,瓊脂粉 15 g,蒸餾水1 000 mL,調(diào)pH值為7.0,121℃滅菌20 min。復(fù)篩培養(yǎng)基:酵母提取物5 g,胰化蛋白胨 10 g,氯化鈉 5 g,棉籽糖 2.5 g, 調(diào)pH值為7.0, 121 ℃滅菌20 min。
1.2.1 菌株篩選
土壤樣品制成 10-4、10-5、10-6梯度的土壤菌懸液,分別涂布于初篩培養(yǎng)基(90 mm平板添加50 μL 2 mg/mL X-α-gal),37 ℃培養(yǎng)48 h,篩選呈藍(lán)色的菌落[7]。復(fù)篩結(jié)合液體發(fā)酵培養(yǎng),選擇酶活較高的菌株,劃線純化,顯微鏡檢查純度,得菌株純培養(yǎng)物。
1.2.2 純化菌株顯微形態(tài)及基于16S rDNA的分子鑒定
純化菌株革蘭氏染色,顯微形態(tài)觀察,采用CTAB/NaCl方法[8]提取細(xì)菌全基因組DNA,以細(xì)菌16S rDNA通用上游引物 5′-AGAGTTTGATCCTG GCTCAG-3′和下游引物5′-ACGGTTACCTTGTTAC GACTT-3′擴(kuò)增純化菌株16S rDNA基因片段,測(cè)序由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成。根據(jù)測(cè)序結(jié)果,用Blast程序與GenBank上已經(jīng)登錄的菌株16S rDNA序列進(jìn)行比對(duì),分析比對(duì)結(jié)果。
1.2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作及酶活的測(cè)定
以不同濃度的對(duì)硝基酚為底物,在OD405nm處進(jìn)行測(cè)定并繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線[9]。采用對(duì)硝基酚-α-D-吡喃半乳糖(P-PNG)法[10-12]對(duì)菌株分泌的α-半乳糖苷酶的酶活進(jìn)行測(cè)定。酶活單位定義為:在pH 4.0、37 ℃條件下,每分鐘分解底物生成1 μmol對(duì)硝基酚所需要的酶量為1個(gè)α-半乳糖苷酶酶活單位。
1.2.4 pH和溫度對(duì)α-半乳糖苷酶活性的影響
采用磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖體系配制pH分別為2.6、3.0、3.6、4.0、4.4、5.2、5.6、6.0、6.6、7.2、8.0的緩沖液,測(cè)定酶活力,以酶活力最高者定為100%,以相對(duì)酶活力對(duì)所對(duì)應(yīng)的pH值作圖;將酶液與最適宜pH值的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液分別在20、25、30、35、40、50、55、60、65、70、75、80 ℃水浴1 h,測(cè)定酶活力,得到酶液在不同反應(yīng)溫度下的酶活力,以酶活力最高者定為100%,以相對(duì)酶活力對(duì)溫度作圖。
1.2.5 細(xì)菌酶基因表達(dá)調(diào)控分析
收集不同濃度棉籽糖誘導(dǎo)下的發(fā)酵液上清 1 mL,各取200 μL分別置于酶標(biāo)板的加樣孔中,加入20 μL 2 mg/mL 的X-α-gal溶液,同時(shí)以液體發(fā)酵培養(yǎng)基作為空白對(duì)照,37 ℃溫浴12 h后, 置于4℃冰箱充分顯色,觀察不同濃度棉籽糖誘導(dǎo)下顯色情況。
1.2.6 葡萄糖和棉籽糖濃度對(duì)菌株產(chǎn)α-半乳糖苷酶的影響
挑取單菌落接種于不同濃度的葡萄糖和棉籽糖的液體培養(yǎng)基中,葡萄糖及棉籽糖的濃度分別設(shè)置為10、20、30、40,50 μmol/mL,37 ℃振蕩培養(yǎng)48 h,在最適pH值和溫度的條件下,分析葡萄糖和棉籽糖濃度對(duì)菌株產(chǎn)α-半乳糖苷酶的活性影響。
通過(guò)添加 X-α-gal顯色底物的篩選培養(yǎng)基培養(yǎng),結(jié)合液體發(fā)酵培養(yǎng)基篩選,得到了1株產(chǎn)α-半乳糖苷酶細(xì)菌,肉眼觀察細(xì)菌菌落邊緣規(guī)則,微隆起,表面濕潤(rùn),用革蘭氏染色,分離菌株在顯微鏡下觀察,結(jié)果,分離菌株呈現(xiàn)紫色,為革蘭氏陽(yáng)性細(xì)菌,細(xì)胞為球形。
圖1 分離菌株16S rDNA PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 16S rDNA PCR product of screened strain
在分離細(xì)菌基因組DNA后,以16S rDNA的通用引物進(jìn)行該基因的PCR擴(kuò)增,重復(fù)的擴(kuò)增都得到了大小確定的分子(圖1),擴(kuò)增分子克隆到T-載體并測(cè)序,序列用BLAST程序與GenBank中已經(jīng)登錄的16S rDNA進(jìn)行核苷酸序列同源性比較,發(fā)現(xiàn)其與乳球菌16S rDNA同源性達(dá)98%,可以判定分離細(xì)菌為乳球菌屬細(xì)菌。
以不同濃度的對(duì)硝基酚在405 nm處吸光度平均值為x軸,以對(duì)硝基酚的濃度為y軸繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),用Excel辦公軟件作圖,得公式y(tǒng)=53.314x+ 0.212 8,其中R2=0.996 8。
圖2 對(duì)硝基酚OD405的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 Standard curve of p-nitrophenol
取搖瓶發(fā)酵上清液 1 mL加入pH 4.0磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液2 mL中,37 ℃預(yù)熱5 min后與1 mL10 mmol/L的PNPG底物反應(yīng)10 min,用6 mL 0.2 mol/L NaCO3終止反應(yīng),分光光度計(jì)測(cè)定405 nm處吸光度值,同時(shí)設(shè)置對(duì)照管,測(cè)得吸光度值為1.160,計(jì)算得發(fā)酵上清液酶活為6.21 U/mL。
圖3分析表明, pH約5.5時(shí),所分離菌株分泌的α-半乳糖苷酶表現(xiàn)相對(duì)較高的酶活力;圖4表明在較低的溫度(20~40 ℃)范圍內(nèi),相對(duì)酶活力隨著溫度的升高而增加,隨著溫度的升高,酶活力逐漸下降,其最適宜溫度為45 ℃左右。
圖3 不同pH條件下細(xì)菌α-半乳糖苷酶活性Fig.3 α-galactosidase activity of bacterium under different pH condition
圖4 不同溫度條件下細(xì)菌α-半乳糖苷酶活性Fig.4 α-galactosidase activity of bacterium under different temperature condition
通過(guò)以棉籽糖作底物和X-α-gal顯色的酶活性觀察,進(jìn)行酶表達(dá)誘導(dǎo)的分析。上清液顯色反應(yīng)結(jié)果表明,分離菌株分泌的α-半乳糖苷酶為胞外酶,能夠使X-α-gal分解產(chǎn)生藍(lán)色沉淀,從顯色反應(yīng)的程度來(lái)看,低濃度的D-棉籽糖對(duì)酶的分泌有誘導(dǎo)作用,當(dāng)棉籽糖的濃度為30 μmol/mL時(shí),誘導(dǎo)效果最佳,顯色反應(yīng)較為明顯。
根據(jù)顯色反應(yīng)建立起酶活力的分析方法后,以不同濃度棉籽糖和葡萄糖分別對(duì)搖瓶發(fā)酵菌進(jìn)行處理,分析圖5可知,分離菌株產(chǎn)α-半乳糖苷酶受到棉籽糖的誘導(dǎo)和葡萄糖的抑制作用,當(dāng)棉籽糖的濃度約為30 μmol/mL時(shí),誘導(dǎo)效果最佳,酶活性達(dá)到最高,隨著棉籽糖濃度的增加,其對(duì)α-半乳糖苷酶的誘導(dǎo)合成作用已不明顯;在較低葡萄糖濃度(0~20 μmol/mL)下,分離菌株合成α-半乳糖苷酶,隨著葡萄糖的濃度增加而呈現(xiàn)上升趨勢(shì),隨著葡萄糖濃度不斷升高,菌株合成α-半乳糖苷酶受到葡萄糖的抑制,酶活力逐漸下降。
圖5 不同棉籽糖和葡萄糖濃度下細(xì)菌產(chǎn)酶的活性Fig.5 α-galactosidase activity of bacterium under different concentrations of raffinose and glucose
微生物合成的α-半乳糖苷酶為誘導(dǎo)型酶,高濃度的葡萄糖對(duì)其合成具有抑制作用[10],且不同種類的微生物合成α-半乳糖苷酶需要不同的誘導(dǎo)物。本研究結(jié)果表明,分離菌株合成α-半乳糖苷酶受棉籽糖的誘導(dǎo),可能是α-半乳糖苷酶的合成受到相關(guān)操縱子的調(diào)控,各個(gè)基因獨(dú)立發(fā)揮作用,棉籽糖作為酶的作用底物時(shí)起誘導(dǎo)作用進(jìn)而提高菌體生長(zhǎng)量及酶的合成量;合成受到葡萄糖的抑制,可能是分離菌株存在葡萄糖效應(yīng)引起的,當(dāng)培養(yǎng)基中有葡萄糖存在時(shí),菌株會(huì)優(yōu)先利用葡萄糖,葡萄糖的某種分解代謝物能降低生物體內(nèi) cAMP的水平,影響RNA聚合酶與啟動(dòng)子結(jié)合,以至轉(zhuǎn)錄作用不能進(jìn)行,抑制了產(chǎn)酶基因的表達(dá),酶的合成處于本底表達(dá)水平。但葡萄糖在0~20 μmol/mL時(shí)對(duì)酶的產(chǎn)生具有正向作用,可能是低濃度葡萄糖有利于細(xì)菌的生長(zhǎng),因而整體促進(jìn)了酶的產(chǎn)生。
對(duì)霉菌(青霉)、植物(咖啡豆)[13-14]等α-半乳糖苷酶的研究已取得重要進(jìn)展,諸多α-半乳糖苷酶基因已經(jīng)被克隆[15-16]。由于細(xì)菌來(lái)源的α-半乳糖苷酶為單肽酶,活性發(fā)揮不需要糖基化,結(jié)構(gòu)也更為簡(jiǎn)單,更利于操作,因此,借助于基因工程技術(shù)手段獲得酶活高、耐熱、耐酸性強(qiáng)的α-半乳糖苷酶成為研究熱點(diǎn)。本研究已分離和鑒定出產(chǎn)α-半乳糖苷酶細(xì)菌,將以這一菌株為出發(fā)菌株,進(jìn)行酶基因克隆和改造。
[1] Gregg Wallis L F,Richard Easton L,Karen Jolly,et a1.Galactofuranoic-oligoman nose N-linked glycans of α- galactosidase A fromAspergillus niger[J].Eur J Biochem,2001,268: 4134-4143.
[2] Naumoff D G.Phylogenetic analysis of α-galactosidases of the GH27 family [J].Molecular Biology,2004,38: 388-399.
[3] Donkoron,Henrjkssona,Vasiuevict,et a1.Probiotic strains as starter cultures improve angiotensin-converting enzyme inhibitory activity in soy yoghurt [J].Journal of Food Science,2005,70: 375-381.
[4] Kamaly K M.Bifidobacteria fermentation of soybean milk [J].Food Research International,1997,30: 675-682.
[5] Schiffmann R,Kopp J B,Austin H A,et a1.Enzyme replacement therapy in fabry disease: A randomized controlled trial [J].JAMA,200l,285:2743-2749.
[6] 劉彩琴,何國(guó)慶,陳啟和.一株產(chǎn)α-半乳糖苷酶菌的分離與選育[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2006,32(11):32-35.
[7] GossrauR LoidaZ.Histochemical dectetion of α- galactosidase with 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-α-D-galctoside [J].Acta Histochem,1989,85: 213.
[8] 劉曉俠,林建平,岑沛霖.微生物基因組DNA提取方法的比較與改進(jìn)[J].嘉興學(xué)院學(xué)報(bào),2007,19(3): 48-50.
[9] 許堯新,姚曉紅,許少春,等.兩種測(cè)定程序?qū)︼曈忙?半乳糖苷酶活性檢測(cè)的結(jié)果比較[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2004,16(6): 349-353.
[10] Lokuge M A,Mathew C D.Kinetic studies of extracellular alpha-galactosidase fromCitrobacter freundii[J].J of the Nation Science Foundation Sri Lanka,2001,29: 3-4.
[11] Sripuan T,Aoki K.Purification and characterization of thermostable alpha-galactosidase fromGanoderma lucidum[J].Bioscience Biotecnology and Biochemistry,2003,67 (7): 1485-1491.
[12] Liu Caiquin,Ruan Hui,Shen Huafeng,et al.Optimization of the fermentation medium for α- galactosidase production fromAspergillus foetidusZU-G1 using response surface methodology [J].Journal of Food Science,2007,72(4): 120-125.
[13] Fridjonsson O,Mattes R.Prodution of recombinant αgalactosidases inThermus thermophilus[J].Applied and Environmental Microbiology,2001,67(9): 4192-4198.
[14] Boucher I,Vadeboncoeur C,Moineau S.Characterization of genes involved in the metabolism of α-galactosidases byLactococcus raffinolactis[J].Applied and Environmental Microbiology,2003,69(7): 4049-4056.
[15] De Vries R P,Van Den Broeck H C,Dekkers E,et a1.Differential expression of three α-galactosidases genes and single β-galactosidase gene fromAspergillus niger[J].Applied and Enviromental Microbiology,1999,65(6): 2453-2460.
[16] Ademark P,de vries R P,Hagglund P,et al.Cloning and characterization ofAspergillus nigergenes encoding an α-galactosidases and β-mannosidase involved in galactomannan degradation [J].European Journal of Biochemistry,2001,268: 2982-2990.
英文編輯:易來(lái)賓