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    一種檢測水質(zhì)毒性的細(xì)菌發(fā)光傳感器的研究

    2011-02-20 00:54:36李書鉞
    陜西科技大學(xué)學(xué)報 2011年5期
    關(guān)鍵詞:水質(zhì)檢測

    李書鉞

    (林同棪國際工程咨詢(中國)有限公司, 重慶 401121)

    0 引 言

    隨著現(xiàn)代經(jīng)濟(jì)的快速發(fā)展,隨之也引發(fā)了一些負(fù)面影響,其中環(huán)境問題尤為嚴(yán)重,因此對污染物的毒性鑒定顯得十分重要.就此問題,分析工作者研究采用各種生物方法來檢測水質(zhì)毒性,包括微生物、藻、底棲軟體動物、浮游生物、魚等,其中發(fā)光細(xì)菌因其獨特的生理發(fā)光特性以及與現(xiàn)代光電檢測手段完美結(jié)合的特點而得到了人們廣泛的關(guān)注.Hastings最先提出了發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光機(jī)制,發(fā)光細(xì)菌在20世紀(jì)30年代首先用于快速評價藥物的毒性作用.1978年美國Beckman儀器公司研制了生物發(fā)光光度計,即Microtox系統(tǒng).目前,許多國家如加拿大、法國、意大利、美國已將發(fā)光細(xì)菌方法作為標(biāo)準(zhǔn)的毒性測試方法.采用發(fā)光細(xì)菌作為毒性測試的指標(biāo)生物的生物毒性檢測儀,以其結(jié)果可靠、操作方法簡便和經(jīng)濟(jì)耗費低等優(yōu)點已經(jīng)成為水質(zhì)毒性檢測研究的主要方向[1-3],我國也于1995年將這一方法列為環(huán)境毒性檢測的標(biāo)準(zhǔn)方法( GB/T 15441-1995)[4].但是,由于受到發(fā)光細(xì)菌生長周期的限制,使得現(xiàn)場檢測與實際水質(zhì)毒性存在較大的人為誤差,再者由于很多儀器敏感元件需要與毒性物質(zhì)接觸,從而大大縮短了儀器使用壽命.本研究采用光纖傳導(dǎo),以明亮發(fā)光桿菌為指示生物,將發(fā)光細(xì)菌制成生物膜組件,這樣可以使檢測系統(tǒng)與分析系統(tǒng)相分開,不僅能夠延長儀器的使用壽命,還能夠?qū)崿F(xiàn)急性毒性的連續(xù)檢測,大大方便了發(fā)光細(xì)菌傳感器在現(xiàn)場的應(yīng)用,也為研制在線檢測傳感器奠定了基礎(chǔ).

    1 發(fā)光細(xì)菌傳感器的原理及結(jié)構(gòu)

    1.1 發(fā)光細(xì)菌傳感器的原理

    發(fā)光細(xì)菌通過其正常新陳代謝產(chǎn)生發(fā)光現(xiàn)象,在條件一定的情況下,發(fā)光較為穩(wěn)定,并且在有外在毒性物質(zhì)存在的情況下,發(fā)光變化較為顯著.其代謝反應(yīng)過程可以簡要概括為[5]:

    FMNH2+RCHO→FMN+RCOOH+H2O+hv

    該反應(yīng)是在發(fā)光細(xì)菌細(xì)胞內(nèi)由細(xì)菌熒光酶素催化,黃素單核苷酸(FMNH2)、長鏈脂肪酸(RCHO)、氧氣(O2)發(fā)生反應(yīng),產(chǎn)生波長約為480 nm的藍(lán)綠光.當(dāng)發(fā)光細(xì)菌與外來毒性物質(zhì)接觸一段時間后,其發(fā)光強(qiáng)度有明顯的變化.通常情況下,發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度與毒性物質(zhì)的毒性大小呈負(fù)相關(guān)的關(guān)系.Thomulka 認(rèn)為,外來受試物通過下面兩個途徑抑制細(xì)菌發(fā)光: (1) 外在毒物直接抑制發(fā)光反應(yīng)酶活性,從而影響代謝反應(yīng);(2) 外在毒物通過抑制細(xì)胞內(nèi)與發(fā)光反應(yīng)有關(guān)的其他代謝過程(如細(xì)胞呼吸等)間接影響發(fā)光代謝反應(yīng)[6].基于以上原理,利用發(fā)光細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度與毒性物質(zhì)的毒性大小呈負(fù)相關(guān)的關(guān)系,可以研制檢測水質(zhì)毒性的發(fā)光細(xì)菌傳感器.

    1.2 發(fā)光細(xì)菌傳感器系統(tǒng)結(jié)構(gòu)概述

    本設(shè)計將發(fā)光細(xì)菌固定成便于攜帶、安裝與保存的生物膜組件,使其與經(jīng)過預(yù)處理的外來毒物在反應(yīng)室內(nèi)反應(yīng)15 min,產(chǎn)生光信號變化;微弱的發(fā)光細(xì)菌光信號通過多模光纖傳輸至高靈敏度的光電轉(zhuǎn)換器,本研究采用光電倍增管R105(北京濱松電子)實現(xiàn)光信號與電信號的轉(zhuǎn)換;然后通過高精度放大器件OP124制成放大電路將微弱電信號放大到0~5 V,OP124運算放大器屬于高精度、低溫漂、電流噪聲低類型的放大器,是電流電壓轉(zhuǎn)換核心器件;本設(shè)計采用了巴特沃斯低通濾波器,截止頻率為30 kHz,以消除外界信號的干擾.最后通過數(shù)據(jù)采集卡對信號進(jìn)行采集、處理以及進(jìn)行受試物的毒性評估[7].如圖1所示.

    圖1 發(fā)光細(xì)菌傳感器系統(tǒng)組成

    本設(shè)計以明亮發(fā)光桿菌為指示生物,其發(fā)射光為藍(lán)綠色熒光,光譜范圍420~670 nm ,波峰位置λmax在475~485 nm 左右.首先,將明亮發(fā)光桿菌固定成直徑為2 cm的生物膜組件,將其放入暗盒中,生物膜組件與光纖之間的距離為2 mm,在閉光的情況下通過檢測系統(tǒng)測定發(fā)光強(qiáng)度的變化值.采用劑量-效應(yīng)實驗方法對毒性進(jìn)行評估,發(fā)光細(xì)菌組件與受試物反應(yīng)15 min后,發(fā)光量減弱到50%時的受試物濃度(50%),即為EC50值.實際檢測通過相對發(fā)光量來反映污染物的急性毒性:

    RLU=Vp/Vu×100%

    式中:RLU為相對發(fā)光度;Vp加受試物細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度;Vu對照發(fā)光強(qiáng)度.

    2 實驗方法

    2.1 儀器

    R105光電倍增管(北京濱松電子有限公司)、WLQ蠕動泵、暗盒式流通池、光纖、WC109-05恒溫器、RS9901生物發(fā)光儀(上海容圣生物電子公司)、VC9807勝利數(shù)字萬用表.

    2.2 菌種及培養(yǎng)基

    明亮發(fā)光桿菌(Photobacteriumphosphorreum)購自南京土壤所.

    ASW培養(yǎng)基(W/V):胰蛋白胨(0.5%),酵母浸出汁(0.5%),氯化鈉(3%),磷酸氫二鈉(0.5%),磷酸二氫鉀(0.1%),甘油(0.3%),瓊脂粉(1.5%),pH 7.0.

    2.3 受試物

    Pb(NO3)2、CdCl2·3H2O、K2Cr2O7、Hg(NO3)2、CuSO4·5H2O,所用試劑均為分析純.

    2.4 生物膜組件的構(gòu)建

    首先將細(xì)菌進(jìn)行斜面培養(yǎng),從斜面接菌種于ASW培養(yǎng)液中, 20 ℃恒溫, 200 r/min搖床培養(yǎng)15 h, 使菌數(shù)達(dá)到108~109個/mL.首先采用尼龍材質(zhì)網(wǎng)制成直徑為2 cm的生物膜組件骨架,然后采用海藻酸鈉包埋法制備生物膜組件[8],將30 g/L的海藻酸鈉溶液與等體積的108個/ mL的菌液緩慢混合在一起,混合均勻后,用注射器吸取0.8 mL的混合物均勻注入到尼龍網(wǎng)上面,固定成直徑為2 cm的均勻圓片[9];將圓片浸在0.3 mg/L的CaCl2溶液中約20 min,使其充分固定.此生物膜組件限一次使用,保存在4 ℃條件下,使用時采用新鮮培養(yǎng)基復(fù)蘇,復(fù)蘇時間為20 min.

    圖2 反應(yīng)室示意圖

    2.5 發(fā)光細(xì)菌傳感器的組裝

    構(gòu)建生物傳感器反應(yīng)室,如圖2所示.將制備好的生物膜組件插入傳感器預(yù)留孔中構(gòu)成反應(yīng)室,生物膜組件與蠕動泵、光纖、暗盒、計算機(jī)控制系統(tǒng)構(gòu)成發(fā)光細(xì)菌傳感器.此系統(tǒng)設(shè)計首先采用固定化技術(shù)將明亮發(fā)光桿菌固定成生物膜圓片,并將生物膜圓片插入傳感器反應(yīng)室預(yù)留孔中,通過光纖傳輸變化的微弱光信號,光纖距生物膜間距為3 mm.采用高靈敏度光電轉(zhuǎn)化器件光電倍增管和高精度運算放大器將電流信號轉(zhuǎn)化為電壓信號并放大.設(shè)計濾波電路,截止頻率為30 kHz,以減少外界信號對微弱信號的干擾.最后,通過計算機(jī)控制系統(tǒng)將電信號轉(zhuǎn)化為模擬信號并運算輸出.傳感器結(jié)構(gòu)示意圖如圖3所示,用蠕動泵吸取受試物,生物組件與受試物接觸15 min后光電檢測器件即開始檢測.

    圖3 發(fā)光細(xì)菌傳感器示意圖

    3 結(jié)果與討論

    3.1 檢測條件的選擇

    3.1.1 pH與溫度

    在20 ℃條件下,反應(yīng)池分別通入pH為5.0、6.0、7.0、8.0、9.0的未加受試物的底液,測得的發(fā)光變化值見表1.

    由表1可見,受試物的pH值對毒性測定影響較大,過酸或過堿都會影響細(xì)菌的發(fā)光,這主要是由于過酸或過堿影響了發(fā)光細(xì)菌的代謝過程,使發(fā)光細(xì)菌不能正常代謝,導(dǎo)致發(fā)光量下降甚至發(fā)光猝滅.pH值在7.0左右時發(fā)光細(xì)菌發(fā)光量較為穩(wěn)定,故設(shè)定測量最適pH值為7.0.

    在pH值為7.0的條件下,分別通入溫度為10 ℃、15 ℃、20 ℃、25 ℃、30 ℃的3% NaCl溶液,測得的發(fā)光變化值見表2.

    表1 不同pH底液時細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度

    表2 不同溫度底液時細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度

    表3 不同反應(yīng)時間細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度

    由表2可見,受試物的溫度對毒性測定影響較大,溫度過高或過低都會影響細(xì)菌的發(fā)光,這主要是由于溫度過高或過低都會影響發(fā)光細(xì)菌反應(yīng)酶的活性,使發(fā)光細(xì)菌不能正常代謝,導(dǎo)致發(fā)光量下降甚至發(fā)光猝滅.溫度值在20 ℃時發(fā)光細(xì)菌發(fā)光量較為穩(wěn)定,故設(shè)定測量最適溫度值為20 ℃.

    3.1.2 檢測時間的確定

    在上述確定條件下,以0.15 mg/L Hg(Ⅱ)為受試物,測定發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度隨時間的變化,結(jié)果見表3.

    如表3所示,發(fā)光細(xì)菌發(fā)光量變化經(jīng)歷了先下降后平穩(wěn)的過程,在15 min時降為初始值的一半,相對偏差為2%.在5 min后下降變得緩慢,為了兼顧檢測速度與靈敏度,并與標(biāo)準(zhǔn)檢測方法做比較[10],我們將檢測時間定為15 min,相對偏差為2%.

    3.1.3 底液流速的確定

    在上述確定條件下,以0.15 mg/L Hg(Ⅱ)為受試物,測定發(fā)光細(xì)菌發(fā)光強(qiáng)度隨時間的變化,結(jié)果見表4.

    表4 不同底液流速細(xì)菌的發(fā)光強(qiáng)度

    由表4可見,底液流速過高或過低都不利于發(fā)光細(xì)菌毒性檢測,底液流速過低,發(fā)光細(xì)菌所感受到的毒性物量不足;流速過高,毒性物質(zhì)對發(fā)光細(xì)菌的毒性過大,較難真實反應(yīng)細(xì)菌發(fā)光量受毒性抑制的情況,故設(shè)定底液流速為3 mL/min.

    3.2 重金屬污染物毒性測定

    在上述確定實驗條件下對Hg2+、 Cd2+、 Cr6+、Pb2+、 Cu2+的急性毒性進(jìn)行了研究,將受試物用3%的NaCl溶液配成5個濃度梯度,如表5所示,攪拌均勻.以3% NaCl溶液做空白對照,每個濃度梯度設(shè)3個平行.取培養(yǎng)15 h后的菌液制成發(fā)光細(xì)菌生物膜組件,并用蠕動泵將受試物通入進(jìn)水通道,用生物毒性測試儀測定發(fā)光強(qiáng)度.用直線內(nèi)插法求出相對發(fā)光量為50%時所對應(yīng)的毒性物質(zhì)濃度,即為該毒物對發(fā)光細(xì)菌半數(shù)發(fā)光抑制濃度(EC50)[11].每個濃度梯度設(shè)3個平行實驗,標(biāo)準(zhǔn)偏差低于10%.

    表5 受試物測試濃度

    表6 受試物線形方程及相關(guān)系數(shù)

    利用SPSS13.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理.

    以離子濃度計算Pb2+、Cr6+、Cd2+、Hg2+、Cu2+對發(fā)光細(xì)菌的EC50,結(jié)果分別為16.55 mg/L、4.6 mg/L、10.53 mg/L、0.15 mg/L、19.06 mg/L,對發(fā)光菌的急性毒性從大至小依次為Hg2+> Cd2+> Cr6+> Pb2+> Cu2+.實驗結(jié)果采用線形回歸分析方法[12],結(jié)果如表6所示.

    如表6所示,重金屬對發(fā)光細(xì)菌毒性的大小順序為Hg2+> Cr6+> Cd2+> Pb2+>Cu2+,毒性的大小順序與采用國標(biāo)推薦的方法測得的結(jié)果有很好的一致性.經(jīng)分析,有可能是發(fā)光細(xì)菌的熒光酶受到金屬離子的負(fù)作用后抑制了發(fā)光細(xì)菌的正常代謝作用,導(dǎo)致發(fā)光量下降[13].

    表7 傳感器系統(tǒng)穩(wěn)定性的測定

    3.3 傳感器系統(tǒng)穩(wěn)定性的測定

    選擇檢測條件pH值為7.0、溫度為20 ℃、測定時間為15 min、底液流速為3 mL/min.以Hg2+、 Cd2+為受試物,受試濃度分別為0.15 mg/L、10.53 mg/L,測定其相對發(fā)光量.設(shè)5個平行試驗,分別編號1,2,3,4,5組.

    如表7所示,Hg2+、 Cd2+在pH值為7.0、溫度為20 ℃、測定時間為15 min、底液流速為3 mL/min條件下,以濃度分別為0.15 mg/L、10.53 mg/L測定其發(fā)光量在0.5左右,標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為4.41%、6.11%,具有較好穩(wěn)定性,說明以上測量數(shù)據(jù)具有較高的可信度.

    4 結(jié) 論

    (1)該儀器符合國家質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局、國家環(huán)境保護(hù)總局頒布的《GB/T1544121995 水質(zhì)急性毒性的測定:發(fā)光細(xì)菌法》的測試方法,適合多種有毒化合物廢水生物毒性的測定,可廣泛應(yīng)用于水質(zhì)急性毒性的研究.

    (2)該儀器采用了便于攜帶、安裝和保存的生物膜組件,大大提高了現(xiàn)場檢測的效率,為研究在線水質(zhì)急性毒性檢測系統(tǒng)奠定了基礎(chǔ).

    (3)該儀器設(shè)計檢測與分析系統(tǒng)分開,延長了儀器的使用壽命,文中較為具體的分析了其使用條件,能夠準(zhǔn)確的檢測水質(zhì)毒性.

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