劉四化,王倩倩,肖 良,張黎明
(第二軍醫(yī)大學(xué) 海醫(yī)系防化醫(yī)學(xué)教研室,上海 200433)
蛋白質(zhì)結(jié)晶方法的研究進展
劉四化,王倩倩,肖 良,張黎明
(第二軍醫(yī)大學(xué) 海醫(yī)系防化醫(yī)學(xué)教研室,上海 200433)
蛋白質(zhì)結(jié)晶是蛋白質(zhì)分子從過飽和溶液中析出形成晶體的過程,結(jié)晶是蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)生物學(xué)研究的基礎(chǔ),也是主要的技術(shù)難點。本文總結(jié)了常用的蛋白質(zhì)結(jié)晶方法,介紹了近年來蛋白質(zhì)結(jié)晶相關(guān)的新技術(shù)和新策略。
蛋白質(zhì)結(jié)晶;蒸汽擴散;籽晶技術(shù);多孔材料;化學(xué)修飾
蛋白質(zhì)結(jié)晶即蛋白質(zhì)分子從過飽和的溶液中析出形成晶體。結(jié)晶的過程是蛋白質(zhì)分子相變的過程,分為晶核形成和晶體生長兩個階段。伴隨著晶核的形成,溶液中蛋白質(zhì)的濃度逐漸降低,推動體系向相對穩(wěn)定的區(qū)域轉(zhuǎn)變,該區(qū)域晶體長大而晶核數(shù)量不再增加[1]。晶核可以由均相成核或非均相成核兩種過程形成[2-3],同時晶體的生長過程首先是處于過飽和臨界點的溶液體系中溶質(zhì)分子聚集在一起,其次是這些溶質(zhì)分子從無序集群到有序結(jié)構(gòu)的重組過程。大部分蛋白分子的結(jié)晶過程都遵循這一規(guī)律[4]。
蛋白質(zhì)結(jié)晶是結(jié)構(gòu)生物學(xué)研究的主要難點。盡管高通量結(jié)構(gòu)基因組學(xué)的出現(xiàn)簡化了目標(biāo)蛋白質(zhì)的表達、純化、結(jié)晶以及數(shù)據(jù)的收集過程,但仍然只有少量蛋白質(zhì)能生成滿足衍射要求的單晶[5],這從側(cè)面反映了獲取蛋白質(zhì)優(yōu)質(zhì)單晶的困難程度。迄今為止,除已有大量經(jīng)驗積累外,還沒有發(fā)現(xiàn)蛋白質(zhì)的結(jié)晶條件與其結(jié)構(gòu)之間有明顯的相關(guān)性,也沒有任何一套實驗系統(tǒng)或理論能保證優(yōu)良蛋白質(zhì)晶體的產(chǎn)生和生長。本文總結(jié)了傳統(tǒng)的結(jié)晶方法,同時介紹了蛋白質(zhì)結(jié)晶相關(guān)的新技術(shù)和新策略,相信對蛋白質(zhì)藥物的應(yīng)用研究會有一定啟發(fā)。
蒸汽擴散結(jié)晶法是最常用的蛋白質(zhì)結(jié)晶方法,它形成的大分子晶體種類遠遠超過批量結(jié)晶和自由界面擴散結(jié)晶法[6]形成的大分子晶體種類。通常蒸汽擴散法分懸滴法和坐滴法兩種。懸滴法中待結(jié)晶液滴懸掛于蓋玻片的下方,而坐滴法中蛋白溶液位于樣品池溶液上方的底座上。一般懸滴法較常用,但坐滴法可借助顯微攝像技術(shù)自動監(jiān)測蛋白質(zhì)的結(jié)晶情況,更適于高通量蛋白質(zhì)的結(jié)晶實驗。
蒸汽擴散結(jié)晶法結(jié)晶在方便的同時也存在較多缺陷,比如因液滴體積的改變、離子濃度變化引起的pH值的改變等,溫度的輕微變化會導(dǎo)致形成的結(jié)晶溶解等。而批量結(jié)晶法可將液滴孵育在低密度(0.87 g/cm3)石蠟油中,一段時間內(nèi)處于相對穩(wěn)定的體系中,體積和pH等不會改變,形成的晶體也不會被溶解[7]。與蒸汽擴散結(jié)晶法相比,批量結(jié)晶法操作簡單,比較適合于高通量實驗[8],由于批量結(jié)晶法相變的數(shù)據(jù)比較少,篩選結(jié)晶條件的效率較低。而經(jīng)過改進,采用硅膠和石蠟的混合物比單一的石蠟有更高的篩選效率[9],因而在微量批量結(jié)晶實驗中有較多的應(yīng)用。
在透析結(jié)晶法中,大分子蛋白質(zhì)和小分子結(jié)晶劑之間由半透膜分開,兩邊存在的濃度梯度使得小分子結(jié)晶劑通過半透膜與大分子蛋白質(zhì)混合,而大分子的蛋白質(zhì)不能通過半透膜,從而使膜內(nèi)溶液過飽和并產(chǎn)生蛋白質(zhì)晶體。該法的優(yōu)點在于尋找結(jié)晶的最佳條件過程中透析袋內(nèi)的蛋白質(zhì)可以重復(fù)使用。但是,透析結(jié)晶限制了諸如聚乙二醇(PEG)等結(jié)晶劑的使用,因為PEG吸出透析袋內(nèi)水分的速度遠大于其滲入膜的速度,從而導(dǎo)致袋內(nèi)蛋白質(zhì)產(chǎn)生沉淀。
用于蛋白質(zhì)結(jié)晶的常規(guī)方法還有很多,如升華結(jié)晶、協(xié)同沉淀法結(jié)晶、凝膠擴散結(jié)晶、水熱法及溶劑熱法結(jié)晶、膜結(jié)晶等。隨著交叉學(xué)科的迅猛發(fā)展,越來越多的物理方法被應(yīng)用于這一研究領(lǐng)域,王弘等[10]對于常規(guī)的蛋白質(zhì)大分子結(jié)晶方法以及結(jié)晶的影響因素作了較詳細的總結(jié)。
籽晶技術(shù)是指將劣質(zhì)的晶體植入與其結(jié)晶條件相似但不完全相同的新的體系中。籽晶技術(shù)最早應(yīng)用于結(jié)晶條件的優(yōu)化實驗,通過直接在亞穩(wěn)區(qū)加入已經(jīng)形核的籽晶(或晶核),可保證有限的晶核生長成大的單晶[11]。D'Arcy等[12]開發(fā)了一種簡單、全自動的微晶技術(shù),用導(dǎo)入籽晶的方法對牛胰島素等5種蛋白結(jié)晶條件進行了篩選,發(fā)現(xiàn)導(dǎo)入籽晶可以使蛋白質(zhì)結(jié)晶篩選的成功率提高2.5~65倍。進一步研究發(fā)現(xiàn)[13],有時候晶種的引入是通過改變結(jié)晶母液的化學(xué)位移引起晶體的生長,而不是晶種本身引發(fā)晶體的生長;某些條件下通過引晶能產(chǎn)生小而多的晶體。這些結(jié)果表明,某些情況下向母液中植入晶種能誘導(dǎo)晶體生長而其他條件下晶種可能不引發(fā)晶體生長。因此,通過改變化學(xué)位移而引起的晶體生長擴大了選中結(jié)晶條件的概率。
用配體穩(wěn)定蛋白質(zhì)不僅能使蛋白質(zhì)活性更加穩(wěn)定和更容易結(jié)晶,而且能提高獲得高質(zhì)量單晶的機會。例如,在200個已被結(jié)構(gòu)基因協(xié)會確定的蛋白質(zhì)中,100個結(jié)合配體才能結(jié)晶,約有20個結(jié)合配體后才能進行結(jié)構(gòu)測定[14]。相信在不久的將來,不管小型實驗還是結(jié)構(gòu)基因組學(xué)等大規(guī)模實驗中,用小分子化合物來穩(wěn)定功能蛋白將會越來越普遍。
氨基酸及氨基酸衍生物是其他一類影響蛋白質(zhì)分子熱穩(wěn)定性和折疊性的化合物[15]。Ito等[16]驗證了一些氨基酸(如賴氨酸)和氨基酸衍生物(如甘氨酸乙酯和甘氨酸酰胺)對馬血紅蛋白和牛胰核糖核酸酶A結(jié)晶的影響。向蛋白溶液中添加氨基酸及氨基酸衍生物可以擴大篩選結(jié)晶條件的范圍,這樣能獲得高質(zhì)量的單晶。如DNA解旋酶——DnaB,它在4℃的純化緩沖液中活性僅能保持幾分鐘,但經(jīng)過優(yōu)化后可以在60℃穩(wěn)定數(shù)小時[17]。
有人認為,蛋白質(zhì)晶體大多數(shù)是均質(zhì)生長的。事實上,由于受到微觀雜質(zhì)和不溶聚合體的影響,它們都是核異質(zhì)的[2]??梢钥隙?,精確控制晶核的數(shù)量和晶核生長的過飽和點有助于形成高質(zhì)量的晶體[18]。誘導(dǎo)非均相成核的方法有很多種,其中包括多孔硅膠在內(nèi)的多孔材料的使用。多孔材料表面含有大量的形狀和大小不同的微孔,給定的大分子能找到形狀和大小匹配的成核孔[19],這些孔腔是用來“欺騙”蛋白分子,從而促使晶核形成和晶體生長。目前使用較多的多孔材料是一種無定形多孔生物活性玻璃(CaO-P2O5-SiO2)[3,19],它以直徑約為 100 μm 的顆粒植入待結(jié)晶液滴中。多孔生物玻璃促進成核不需要附加條件,也不受分子質(zhì)量、pH值和沉淀劑的影響[19]。此外,纖維素、羥基磷灰石粉末以及帶孔的一些天然物質(zhì)也成功誘導(dǎo)成核[20]。
分子生物學(xué)方法中,通過取代特殊氨基酸殘基、修飾特定的側(cè)鏈或者合并翻譯后修飾等方式來賦予蛋白質(zhì)結(jié)晶特性。常用的提高蛋白質(zhì)結(jié)晶特性的化學(xué)修飾方法是賴氨酸殘基甲基化的還原[21],這種方法通過提高甲基化的賴氨酸側(cè)鏈的疏水性來降低蛋白質(zhì)的溶解度。研究表明,有40%的蛋白質(zhì)在甲基化還原后重新獲得結(jié)晶能力[22]。
替代半胱氨酸殘基或還原羧甲基半胱氨酸殘基也是常用的化學(xué)修飾法[23]。半胱氨酸殘基的替換在不影響蛋白功能的前提下,能使更多的蛋白質(zhì)適合結(jié)晶。與賴氨酸修飾相反,羧甲基半胱氨酸殘基的還原能增加蛋白質(zhì)的溶解度,從而防止蛋白的聚合和展開[24]。例如以丙氨酸替代大腸桿菌蛋白RecX(DNA同源重組的調(diào)節(jié)蛋白)中113位和118位半胱氨酸,能夠使RecX結(jié)晶[25]。另一個策略是在暴露于溶劑中的蛋白質(zhì)表面引入半胱氨酸殘基,通過二硫鍵形成人工二聚體,這種二聚體呈現(xiàn)對稱性,對稱的蛋白質(zhì)分子更容易結(jié)晶[26]。通過這種方法形成人工二聚體噬菌體T4溶菌酶,比傳統(tǒng)的氣相擴散方法能多獲得6個新的單晶。人工半胱氨酸二聚體法似乎比較適合于小型蛋白質(zhì)的結(jié)晶[26]。
此外,原位水解也用來修飾蛋白質(zhì),它的應(yīng)用能成倍增加蛋白質(zhì)結(jié)晶和結(jié)構(gòu)測定的成功率[27]。據(jù)報道,270種以上可溶性蛋白質(zhì)經(jīng)過原位水解,獲得符合結(jié)構(gòu)測定要求晶體的概率增加了約12%[28]。
大量的生物物理技術(shù)和方法被用來評價蛋白質(zhì)溶液的穩(wěn)定性。常用的兩種技術(shù)是發(fā)射熒光光譜和光散射技術(shù),它們幫助確定能輔助篩選蛋白質(zhì)結(jié)晶的穩(wěn)定條件[29]。前者通過測量熒光的變化來監(jiān)測蛋白質(zhì)的展開或因配體結(jié)合引起的構(gòu)象變化,而動態(tài)光散射可用來測定一個樣本是否適合結(jié)晶[30]。此外,動態(tài)光散射技術(shù)利用光學(xué)顯微鏡可以監(jiān)測由于溫度、pH值、離子強度或添加物引起的蛋白質(zhì)聚集[31]并轉(zhuǎn)變?yōu)榫Ш说倪^程,幫助實驗者鎖定溶液從成核條件到晶體生長條件轉(zhuǎn)變的時間點,在高通量模式的應(yīng)用中,動態(tài)光散射技術(shù)已經(jīng)趨向于小型化和自動化[32]。此外,以熒光為基礎(chǔ)的熱轉(zhuǎn)移測定技術(shù)[33]則在篩選蛋白質(zhì)的結(jié)晶條件如pH值、添加劑以及緩沖液等方面具有明顯的優(yōu)越性。這些新技術(shù)幫助研究者尋找蛋白質(zhì)的結(jié)晶規(guī)律,摸索結(jié)晶條件,并最終得到高質(zhì)量單晶。
盡管近幾年結(jié)構(gòu)生物學(xué)的研究飛速發(fā)展,但蛋白質(zhì)結(jié)晶很大程度上依然是經(jīng)驗科學(xué)。在蛋白質(zhì)可結(jié)晶性的研究中,多數(shù)的研究只是針對幾種常用的蛋白質(zhì)進行,所以當(dāng)用這些技術(shù)篩選其它蛋白質(zhì)結(jié)晶條件時,缺乏普遍的適用性。因此,應(yīng)進一步深入認識蛋白質(zhì)的結(jié)晶規(guī)律,結(jié)合先進的科學(xué)技術(shù),采用更多的結(jié)晶策略和方法使目標(biāo)蛋白更容易結(jié)晶。
蛋白質(zhì)的三維結(jié)構(gòu)在針對靶標(biāo)蛋白質(zhì)的小分子藥物研究中起到了非常重要的作用。蛋白質(zhì)結(jié)晶可以快速解決蛋白質(zhì)-配體或先導(dǎo)化合物復(fù)合物的晶體結(jié)構(gòu),幫助人們理解小分子如何與蛋白質(zhì)結(jié)合,并利用其相關(guān)結(jié)構(gòu)信息設(shè)計新的藥物分子[34]。蛋白質(zhì)結(jié)晶技術(shù)的發(fā)展加速了蛋白質(zhì)藥物的應(yīng)用研究,利用現(xiàn)代生物技術(shù)對生物體分離純化所得的氨基酸類,肽類和蛋白類物質(zhì)進行結(jié)晶后的結(jié)構(gòu)分析,積極的促進了蛋白質(zhì)藥物的開發(fā)研究。
[1]Garcia-Ruiz JM.Nucleation of protein crystals[J].J Struct Biol,2003,142(1):22-31.
[2]Nanev CN.On the slow kinetics of protein crystallization[J].Cryst Growth Design,2007,7(8):1533-1540.
[3]Saridakis E,Chayen N E.Towards a'universal'nucleant for protein crystallization[J].Trends Biotechnol,2009,27(2):99-106.
[4]Erdemir D,Lee A Y,Myerson A S.Nucleation of crystals from solution:classical and two-step models[J].Accounts Chem Res,2009,42(5):621-629.
[5]Fogg M J,Wilkinson A J.Higher-throughput approaches to crystallization and crystal structure determination[J].Biochemi Soc Trans,2008,36(4):771-775.
[6]Chayen NE,Saridakis E.Protein crystallization:from purified protein to diffraction-quality crystal[J].Nat Methods,2008,5(2):147-153.
[7]Chayen N E.Comparative studies of protein crystallization by vapor-diffusion and microbatch techniques[J].Acta Crystallogr D,1998,54(1):8-15.
[8]Chayen N E.Protein crystallization strategies for structural genomics[J].Crystallogr Rev,2009,15(2):135-139.
[9]D'Arcy A,Elmore C,Stihle M,et al.A novel approach to crystallizing proteins under oil[J].J Cryst Growth,1996,168(1):175-180.
[10]王 弘,于淑娟,高大雛.蛋白質(zhì)大分子的結(jié)晶[J].生命的化學(xué),2001,21(5):429-431.
[11]鹿芹芹,尹大川,劉永明,等.提高蛋白質(zhì)晶體質(zhì)量的研究進展[J].材料導(dǎo)報,2010,24(1):104-110.
[12] D'Arcy A,Villard F,Marsh M.An automated microseed matrixscreening method for protein crystallization[J].Acta Crystallogr D,2007,63(4):550-554.
[13] St John F J,F(xiàn)eng B,Pozharski E.The role of bias in crystallization conditions in automated microseeding[J].Acta Crystallogr D,2008,64(12):1222-1227.
[14] Vedadi M,Niesen F H,Allali-Hassani A,et al.Chemical screening methods to identify ligands that promote protein stability,protein crystallization,and structure determination[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(43):15835-15840.
[15] Hamada H,Arakawa T,Shiraki K.Effect of additives on protein aggregation[J].Curr Pharm Biotechnol,2009,10(4):400-407.
[16] Ito L,Kobayashi T,Shiraki K,et al.Effect of amino acids and amino acid derivatives on crystallization of hemoglobin and ribonuclease A[J].J Synchrotron Radiat,2008,15(3):316-318.
[17] Ozaki S,Katayama T.DnaA structure,function,and dynamics in the initiation at the chromosomal origin[J].Plasmid,2009,62(2):71-82.
[18] Takehara M,Ino K,Takakusagi Y,et al.Use of layer silicate for protein crystallization:effects of micromica and chlorite powders in hanging drops[J].Anal Biochem,2008,373(2):322-329.
[19] Chayen N E,Saridakis E,Sear R P.Experiment and theory for heterogeneous nucleation of protein crystals in a porous medium[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(3):597-601.
[20] Thakur A S,Robin G,Guncar G,et al.Improved success of sparse matrix protein crystallization screening with heterogeneous nucleating agents[J].PLoSOne,2007,2(10):1091.
[21] Rayment I.Reductive alkylation of lysine residues to alter crystallization properties of proteins[J].Methods Enzymol,1997,276:171-179.
[22] Walter T S,Meier C,Assenberg R,et al.Lysine methylation as a routine rescue strategy for protein crystallization[J].Structure,2006,14(11):1617-1622.
[23] Mia Wei,Lia Lanfen,Su Xiaodong.5,50-Dithio-bis(2-nitrobenzoic acid)modification of cysteine improves the crystal quality of human chloride intracellular channel protein 2[J].Biochem Biophys Res Commun,2008,368(4):919-922.
[24] Eiler S,Gangloff M,Duclaud S,et al.Overexpression,purification,and crystal structure of native ER alpha LBD[J].Protein Expr Purif,2001,22(2):165-173.
[25] Ragone S,Maman J D,F(xiàn)urnham N,et al.Structural basis for inhibition of homologous recombination by the RecX protein[J].EMBO J,2008,27(16):2259-2269.
[26] Banatao D R,Cascio D,Crowley C S,et al.An approach to crystallizing proteins by synthetic symmetrization[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(44):16230-16235.
[27] Dong Aiping,Xu Xiaohui,Edwards A M,et al.In situ proteolysis for protein crystallization and structure determination[J].Nat Methods,2007,4(12):1019-1021.
[28] Wernimont A,Edwards A.In situ proteolysis to generate crystals for structure determination:an update[J].PLoS One,2009,4(4):5094.
[29] Senisterra G A,F(xiàn)inerty P J.High throughput methods of assessing protein stability and aggregation[J].Mol Biosystems,2009,5(3):217-223.
[30] Bergfors T M.Protein crystallization:techniques,strategies,and tips[J].Cryst Growth Design,2003,3(1):109.
[31] Saridakis E,Dierks K,Moreno A,et al.Separating nucleation and growth in protein crystallization using dynamic light scattering[J].Acta Crystallogr D,2002,58(10):1597-1600.
[32] Dierks K,Meyer A,Einspahr H,et al.Dynamic light scattering in protein crystallization droplets:adaptations for analysis and optimization of crystallization processes[J].Cryst Growth Design,2008,8(5):1628-1634.
[33] Pantoliano M W,Petrella E C,Kwasnoski J D,et al.High-density miniaturized thermal shift assays as a general strategy for drug discovery[J].J Biomol Screening,2001,6(6):429-440.
[34]趙衛(wèi)光,李正名,王寶雷,等.高通量蛋白質(zhì)結(jié)晶及其在藥物設(shè)計中的應(yīng)用[J].化學(xué)進展,2004,16(1):105-109.
Progress in techniques on protein crystallization
LIU Si-hua,WANG Qian-qian,XIAO Liang,ZHANG Li-ming
(Department of Chemical Defense Medicine,F(xiàn)aculty of Naval Medicine,Second Military Medical University,Shanghai 200433,China)
TQ464.7
A
1005-1678(2011)05-0405-03
2010-07-16
上海市自然科學(xué)基金(10ZR1437900)
劉四化,男,碩士研究生,主要從事海洋生物毒素蛋白分離純化研究;張黎明,通信作者,教授,博士生導(dǎo)師,E-mail:lmzhang1969@yahoo.com.cn。