宗園媛,朱 華,王海林,徐艷峰,馬春梅,代小偉,黃 瀾,李曉穎,董 偉,張連峰,秦 川
(衛(wèi)生部人類疾病比較醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,國家中醫(yī)藥管理局人類疾病動物模型三級實(shí)驗(yàn)室,中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動物研究所,北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院比較醫(yī)學(xué)中心,北京 10021)
阿爾茨海默?。ˋ lzheimer's disease,AD)是老年人最常見的中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病。主要三大病理變化是神經(jīng)細(xì)胞外老年斑沉積、神經(jīng)元內(nèi)神經(jīng)纖維纏結(jié)和神經(jīng)元缺失等[1]。microRNA的出現(xiàn)為AD的發(fā)病機(jī)制研究提供了新的思路。microRNA (微小RNA,簡稱m iRNA)是生物體內(nèi)源長度約為20~23個(gè)核苷酸的非編碼小RNA,通過與靶mRNA的互補(bǔ)配對而在轉(zhuǎn)錄后水平上對基因的表達(dá)進(jìn)行負(fù)調(diào)控,導(dǎo)致mRNA的降解或翻譯抑制[2-4]。許多miRNAs在神經(jīng)系統(tǒng)中特異表達(dá)或大量表達(dá),其參與了神經(jīng)分化,突觸可塑性及記憶形成[5]。目前國際上已有多篇文獻(xiàn)證實(shí)miRNA與包括阿爾茨海默病在內(nèi)的多種人類神經(jīng)系統(tǒng)疾病密切相關(guān)[6-8]。本實(shí)驗(yàn)為了探討miRNA在阿爾茨海默病發(fā)生發(fā)展過程中的作用,我們采用了miRNA芯片檢測3月齡、6月齡APP/PS雙轉(zhuǎn)基因阿爾茨海默病小鼠模型大腦中miRNA表達(dá)情況,并通過實(shí)時(shí)定量 PCR證實(shí)m iR-29c在3、6、9月齡小鼠中表達(dá)明顯升高,通過體外細(xì)胞水平研究證實(shí) miR-29c可以減少 APP蛋白的表達(dá),豐富了m iRNA與阿爾茨海默病之間的相關(guān)性研究,為阿爾茨海默病發(fā)病與治療研究提供了新的思路。
1.1 實(shí)驗(yàn)動物
APPswe/PSΔE9雙轉(zhuǎn)基因 C57BL/6J小鼠由本所遺傳中心提供,啟動子為mPrP promoter。APPswe是“瑞典家族”突變,突變發(fā)生在 APP編碼序列 N端的670,671位點(diǎn)的賴氨酸與甲硫氨酸分別被天冬酰氨與亮氨酸取代。PS1ΔE9是在家族性AD中發(fā)現(xiàn)的PS1基因第9外顯子缺失。實(shí)驗(yàn)中涉及動物的操作程序已經(jīng)得到中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動物研究所實(shí)驗(yàn)動物使用與管理委員會的批準(zhǔn)(GC-07-2053)。
1.2 APPswe/PSΔE9轉(zhuǎn)基因小鼠大腦 microRNA芯片檢測
我們之前的研究中[9]已經(jīng)闡述了利用3、6月齡APPswe/PSΔE9轉(zhuǎn)基因小鼠送LC Sciences公司進(jìn)行microRNA芯片的檢測,miRNA探針序列信息來自于Sanger miRbase Release 9.2版本數(shù)據(jù)庫,每種探針至少重復(fù)3次。雜交使用Cy3、Cy5熒光標(biāo)記。芯片及探針合成經(jīng)過質(zhì)量控制。3月芯片探針總數(shù)為737,6月芯片探針總數(shù)為1094。數(shù)據(jù)處理和分析首先是扣除背景,計(jì)算重復(fù)點(diǎn)平均值和標(biāo)準(zhǔn)偏差,然后通過 LOWESS(locally-weighted regression)過濾進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化。對于雙色標(biāo)記實(shí)驗(yàn),將計(jì)算兩種檢測信號的比值(log2)和t-test的P值,以P<0.01定義顯著差異性表達(dá)。選用組織內(nèi)源的 5S rRNA作為m iRNA芯片的內(nèi)源陽性對照。陰性對照包括針對LC Sciences人工合成序列的單堿基錯(cuò)配探針外,還設(shè)計(jì)了兩組探針:一組是空白對照,另一組是與實(shí)驗(yàn)樣品無同源性的核酸序列探針。
1.3 realtimePCR檢測驗(yàn)證 APPSWE/PS1ΔE9雙轉(zhuǎn)基因AD小鼠模型大腦皮層及海馬中microRNA的表達(dá)水平變化
選用3、6、9月齡APPswe/PSΔE9轉(zhuǎn)基因小鼠各6只,利用 Ambion RNA提取試劑盒提取小鼠組織富含miRNA的總RNA,利用德國QIAGEN公司real time PCR試劑盒檢測m iR-29c的表達(dá)情況。引物序列:正義:TAGCACCATTTGAAATCGGTT,反義:GAATCGAGCATCAGTTACG。PCR產(chǎn)物80 bp。以U6snRNA為內(nèi)參。用delta-delta C(t)的方法和 ttest對數(shù)據(jù)進(jìn)行分析和統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,以P<0.05定義顯著差異性表達(dá)。
1.4 miR-29c表達(dá)載體構(gòu)建及高表達(dá) miR-29c細(xì)胞系的建立
在sanger miR數(shù)據(jù)庫 http://m icrorna.sanger.ac.uk/中檢索 miR-29c堿基序列,合成 64 bp的oligo互補(bǔ)雙鏈。利用 invitrogen公司的 pcDNATM6.2-GW/EmGFP-miR線形載體構(gòu)建 m iR-29c表達(dá)載體,篩選陽性克隆送測序。選用正確表達(dá) miR-29c的克隆提取質(zhì)粒。利用脂質(zhì)體法轉(zhuǎn)染SH-SY5Y細(xì)胞,利用 Blasticidine進(jìn)行陽性克隆的篩選,檢測m iR-29c的表達(dá)情況,構(gòu)建高表達(dá) m iR-29c的穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞系。
1.5 miR-29c靶基因的預(yù)測
本實(shí)驗(yàn)綜合分析了TargetScan、miRBase、miRanda、PicTar四個(gè)數(shù)據(jù)庫。只有miRBase預(yù)測了m iR-29c可與APP的結(jié)合,結(jié)合位點(diǎn)位于APPmRNA3’UTR 1068~1089 bp。
1.6 hAPPcDNA質(zhì)粒與miR-29C質(zhì)粒共同瞬時(shí)轉(zhuǎn)染
NCBI上公布的人APP基因的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物共有3種,命名為APPmRNA1-3,經(jīng)BLAST比對發(fā)現(xiàn)3種轉(zhuǎn)錄體mRNA的3’UTR序列完全一致。APPcDNA載體(購自美國Qrigene公司,包含全長3’UTR,總長1.1 kb,NM_201413.1)與 miR-29c表達(dá)載體共轉(zhuǎn)染到24孔板中的 HEK-293T細(xì)胞中,重復(fù)2個(gè)孔。48 h后,提取細(xì)胞總蛋白,Western blot檢測APP蛋白的表達(dá)情況,以同時(shí)轉(zhuǎn)染miR陰性對照質(zhì)粒及APPcDNA載體為對照。
1.7 Westernblot
分別自鼠腦及細(xì)胞中提取總蛋白。脫頸椎法犧牲小鼠,取小鼠海馬及其上皮質(zhì)腦組織(約 80 mg)取出迅速置研磨器中,放入勻漿器內(nèi),加入1 mL RIPA裂解液及10μL PMSF,充分研磨。細(xì)胞總蛋白提取時(shí)每6孔板加入300 uL RIPA裂解液,3 uL PMSF用槍頭吹打后,吸入1.5 m LEP管中。分別冰上靜置30 m in,使蛋白徹底的裂解,4℃,14000 g離心30 m in。利用 BCATMProtein Assay Kit對提取的蛋白進(jìn)行濃度的測定??偟鞍咨蠘恿?0 ug,10% SDS-PAGE上分離,300 mA電轉(zhuǎn)移1.5 h到NC膜上,室溫下5%脫脂奶粉/TBS封閉1 h。APP單克隆抗體(6E10,Sigma)1∶200稀釋,4℃過夜孵育。第二天TBST洗膜3次,每次10 min。1∶25,TBST稀釋的辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗鼠IgG二抗及辣根過氧化物酶標(biāo)記的β-actin(用于控制蛋白上樣量,作為內(nèi)參照)。室溫下振蕩孵育1 h。TBS-T漂洗3次,每次10 m in。利用化學(xué)發(fā)光劑(Santa Cruz),暗室使膠片曝光。
1.8 雙熒光素酶報(bào)告檢測
PCR擴(kuò)增APP的全長3’UTR(總長約1.1 kb,包含與m iR-29c的預(yù)測結(jié)合位點(diǎn)并帶XhoI和NotI兩個(gè)酶切位點(diǎn)),將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物克隆到pMD18-T載體,命名為 T-APP3’UTR。根據(jù) m iRBase預(yù)測,miR-29c與APP的結(jié)合位點(diǎn)位于APPmRNA 3’UTR 1068~1089 bp,據(jù)此我們構(gòu)建了利用點(diǎn)突變方法構(gòu)建APP3’UTR突變載體,命名為T-APP3’UTRmut。psiCHECKTM-2載體(Promega)含有兩種熒光素酶:螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素酶。將所構(gòu)建的TAPP3’UTR,T-APP3’UTRmut載體進(jìn)行XhoI和NotI雙酶切,將野生型及含有突變位點(diǎn)的APP3’UTR克隆psiCHECKTM-2載體的海腎熒光素酶開放讀碼框架的下游,構(gòu)建含APP3’UTR及突變的APP3’UTR的熒光素酶報(bào)告載體,分別命名為 pAPP3’UTR,pAPP3’UTRmut。將所構(gòu)建的熒光素酶報(bào)告載體與m iR-29c表達(dá)載體或者陰性對照載體共轉(zhuǎn)染 HEK-293T細(xì)胞,轉(zhuǎn)染后48 h,利用雙熒光素酶報(bào)告檢測試劑(Promega)及熒光素酶活性檢測儀檢測螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素酶的活性,并將海腎熒光素酶的活性用螢火蟲熒光素酶的活性進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,比較熒光強(qiáng)度的變化。
2.1 microRNA芯片及realtimePCR驗(yàn)證結(jié)果
根據(jù)miRNA芯片結(jié)果篩選出一種在3、6月齡APPSWE/PS1ΔE9雙轉(zhuǎn)基因小鼠大腦及海馬中表達(dá)均有差異的 miRNA,即 miR-29c。利用 real time PCR檢測其在3、6、9月齡APPSWE/PS1ΔE9大腦組織中表達(dá)增高(圖1)。
2.2 Westernblot檢測在SH-SY5Y細(xì)胞系中APP表達(dá)情況
我們成功構(gòu)建了高表達(dá) m iR-29c的穩(wěn)定轉(zhuǎn)染SH-SY5Y細(xì)胞系。利用 real time PCR檢測穩(wěn)轉(zhuǎn)m iR-29c細(xì)胞系中m iR-29c表達(dá)增加1.8倍。
Western blot結(jié)果顯示高表達(dá) miR-29c的穩(wěn)轉(zhuǎn)SH-SY5YX細(xì)胞系,APP蛋白表達(dá)較轉(zhuǎn)染陰性對照載體的穩(wěn)轉(zhuǎn)SH-SY5YX細(xì)胞系減少22%(圖2)。
2.3 Westernblot檢測在 HEK-293T細(xì)胞系中APP表達(dá)情況
圖1 3、6、9月齡APPSWE/PS1ΔE9大腦組織中miR-29c表達(dá)情況的 real time PCR結(jié)果Fig.1 Relative quantity ofmiR-29c in 3,6,9-month-old APPSWE/PS1ΔE9 mice by real time PCR result注:“*”P<0.05Note:“*”P<0.05
圖2 高表達(dá)m iR-29c的SH-SY5Y細(xì)胞系中APP蛋白表達(dá)水平分析Fig.2 APP protein expression in overexpression ofmiR-29c SH-SY5Y cell line
APPcDNA載體與miR-29c表達(dá)載體共轉(zhuǎn)染到24孔板中的HEK-293T細(xì)胞中,48 h后發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)孔與對照孔轉(zhuǎn)染效率均約為70~80%。提取細(xì)胞總蛋白,總蛋白上樣量20 ug,以β-actin為上樣量內(nèi)參照。Western blot結(jié)果顯示m iR-29c組細(xì)胞內(nèi) APP蛋白表達(dá)明顯減少,平均減少50%。試驗(yàn)重復(fù)2次,結(jié)果一致。
圖3 miR-29c與APPcDNA共轉(zhuǎn)染HEK-293T細(xì)胞實(shí)驗(yàn)結(jié)果Fig.3 APP protein expression in m iR-29c expression vector and APP cDNA vector transient transfection HEK-293T cell line
2.4 雙熒光素酶報(bào)告檢測實(shí)驗(yàn)結(jié)果
熒光素酶報(bào)告載體與miR-29c表達(dá)載體或陰性對照載體共轉(zhuǎn)染至HEK-293T細(xì)胞中,轉(zhuǎn)染后48 h,收集細(xì)胞。所有的實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。熒光素酶活性檢測儀分別檢測螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素酶的活性,并且用螢火蟲熒光素酶的活性對海腎熒光素酶的活性進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化。與陰性對照相比,pAPP 3’UTR,pAPP 3’UTR mut與miR-29c共轉(zhuǎn)染,標(biāo)準(zhǔn)化后海腎熒光素酶的活性均沒有明顯變化。
APP是淀粉樣前體蛋白,廣泛存在于全身組織細(xì)胞中,在腦中表達(dá)較高。APP屬于I型跨膜蛋白家族成員。APP屬于進(jìn)化過程中保守的蛋白家族,主要有APP695,APP751,APP770三種形式存在[10]。目前在家族性AD病人中已鑒別出多個(gè)APP基因的突變位點(diǎn),這些突變使得APP代謝途徑發(fā)生異常,雖然只有近1%的EOFAD與APP突變有關(guān)。但APP蛋白代謝產(chǎn)物Aβ是阿爾茨海默病中最重要病理學(xué)特征-老年斑的重要組成物質(zhì),將人突變 APP基因轉(zhuǎn)入小鼠后,出現(xiàn)與人類阿爾茨海默病人相似的征狀和體征,如老年斑、學(xué)習(xí)記憶能力異常下降,說明突變的APP基因使小鼠腦中的APP蛋白表達(dá)異常增高,可導(dǎo)致APP蛋白代謝產(chǎn)物Aβ大量的積累,以上原因使APP基因在阿爾茨海默病中占有非常重要的地位和意義[11]。最初發(fā)現(xiàn) APP是在 AD中,目前APP的生理功能還未完全明了,認(rèn)為APP與神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育分化,神經(jīng)突觸的可塑性有關(guān)。研究表明 APP經(jīng) γ-分泌酶復(fù)合體水解產(chǎn)生的AICDs,參與細(xì)胞內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄,細(xì)胞動力學(xué)及細(xì)胞凋亡[12]。
已有研究發(fā)現(xiàn)多種m iRNAs可在阿爾茨海默病中對APP起調(diào)控作用。例如,2009年 Hébert等人發(fā)現(xiàn)阿爾茨海默病人大腦中 miR-106b降低促進(jìn)APP表達(dá)增多,并證實(shí)miR-106b可在細(xì)胞內(nèi)直接結(jié)合APP mRNA 3’UTR,但沒有確定結(jié)合位點(diǎn)[13]。2010年 Wei Liu等人在早老小鼠 SAMP8中發(fā)現(xiàn)m iR-16可下調(diào)APP表達(dá)[14]。2011年 Justin等人證實(shí)在細(xì)胞水平 m iR-101可內(nèi)調(diào)節(jié) APP的表達(dá)[15]。對于m iR-29c卻沒有人設(shè)想過能夠調(diào)控APP蛋白的表達(dá)。我們使用了 miRNA靶基因預(yù)測數(shù)據(jù)m iRBase、m iRanda、PicTar和 TargetScan四種數(shù)據(jù)庫綜合,但除m iRBase外,所有常用的m iRNA預(yù)測數(shù)據(jù)庫沒有預(yù)測出m iR-29c可以負(fù)向調(diào)控APP。我們采用了miRNA芯片檢測3、6月齡APP/PS雙轉(zhuǎn)基因阿爾茨海默病小鼠模型大腦中miRNA表達(dá)情況,并通過實(shí)時(shí)定量PCR證實(shí)miR-29c在3月、6月、9月齡小鼠中表達(dá)明顯升高。結(jié)合m iRBase的預(yù)測,我們在穩(wěn)定表達(dá)m iR-29c的SH-SY5Y細(xì)胞系中通過Western blot檢測發(fā)現(xiàn)APP蛋白的表達(dá)減少。共轉(zhuǎn)染m iR-29c表達(dá)載體及 APP表達(dá)載體到 HEK-293T細(xì)胞,Western blot檢測APP蛋白明顯減少,在HEK-293T細(xì)胞中通過雙熒光素酶檢測系統(tǒng)檢測,沒有發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染miR-29c細(xì)胞的熒光素酶表達(dá)明顯減少。通過對實(shí)驗(yàn)結(jié)果初步分析我們認(rèn)為可能m iR-29c對 APP mRNA的調(diào)控位點(diǎn)可能不在 APP3’UTR。根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道,m iRNA對靶基因的調(diào)控位點(diǎn)也可能位于開放閱讀框(open reading frames,ORF)及植物5’UTR內(nèi)[16-17]。m iR-29c對 APPmRNA具體的調(diào)控位點(diǎn)仍需要進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)探索。
在 APPSWE/PS1ΔE9雙轉(zhuǎn)基因小鼠體內(nèi)miR29c表達(dá)增高,我們分析認(rèn)為可能是一種自身保護(hù)機(jī)制。APPSWE/PS1ΔE9雙轉(zhuǎn)基因小鼠是一種能夠產(chǎn)生大量 APP蛋白及老年斑的轉(zhuǎn)基因小鼠[18],而m iR-29c的表達(dá)升高可能是為了對抗 APP蛋白升高,是小鼠體內(nèi)的一種保護(hù)性反饋抑制,以減少體內(nèi)APP代謝途徑中Aβ蛋白最終生成。這可能與之前發(fā)現(xiàn)的阿爾茨海默病人中 miR-106b等微小RNA的作用等不同,阿爾茨海默病人中 m iR-106b減少促進(jìn)了阿爾茨海默病人大腦中產(chǎn)生APP。
本課題通過在體外水平證實(shí)了miR-29c對靶基因APP表達(dá)的存在負(fù)向調(diào)控作用,為阿爾茨海默病的治療提供了新的思路。
[1]Lars Bertram,Rudolph E Tanzi.Thirty years of Alzheimer's disease genetics:the implications of systematic meta-analyses[J].Nat Rev Neurosci,2008,9(10),768-778.
[2]Gregory RI,Chendrimada TP,Cooch N,et al.Human RISC coup les microRNA biogenesis and posttranscriptional gene silencing[J].Cell,2005,123,631-640.
[3]DP Bartel. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions[J].Cell,2009,136,215-233.
[4]Lewis BP,Burge CB,Bartel DP.Conserved seed pairing,often flanked by adenosines,indicates that thousands of human genes are microRNA targets[J].Cell,2005,120:15-20.
[5]Cao X,Yeo G,Muotri AR,et al.Noncoding RNAs in the mammalian central nervous system[J].Annu Rev Neurosci,2006,29,77-103.
[6]Lukiw WJ.MicroRNA speciation in fetal,adult and Alzheimer's disease hippocampus[J].Neuroreport,2007,18,297-300.
[7]JNunez-Iglesias,Liu CC,Morgan TE,et al.Joint genome-wide profiling ofmiRNA and mRNA expression in Alzheimer's disease cortex reveals altered miRNA regulation[J].PLoS One,2010,5,e8898.
[8]Wang WX,Huang Q,Hu Y,et al.Patterns of microRNA expression in normal and early Alzheimer's disease human temporal cortex:white matter versus gray matter[J].Acta Neuropathol,2011,121,193-205.
[9]王海林,劉嘉琳,宗園媛,等.Mir-106b對阿爾茨海默病晝夜節(jié)律調(diào)控的初步研究[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2010,20(4):8 -12.
[10]Thinakaran G,Koo EH.Amyloid precursor protein trafficking,processing,and function[J].JBiol Chem,2008,283,29615 -29619.
[11]Tanzi RE,Bertram L.Twenty years of the Alzheimer's disease amyloid hypothesis:a genetic perspective[J].Cell,2005,120 (4):545-55.
[12]Thorsten Muller,Helmut E Meyer,Rupert Egensperger,et al.The amyloid precursor protein intracellular domain(AICD)as modulator of gene expression, apoptosis, and cytoskeletal dynamics-Relevance for A lzheimer's disease[J].Progress in Neurobiology,2008,85,393-406.
[13]Hébert SS,HorréK,Nicola?L,et al.MicroRNA regulation of A lzheimer's Amyloid precursor protein expression[J].Neurobiol Dis,2009,33(3),422-8.
[14]Liu W,Liu C,Zhu J,et al.MicroRNA-16 targets amyloid precursor protein to potentially modulate A lzheimer's-associated pathogenesis in SAMP8 mice[J].Neurobiology of Aging,2010,doi:10.1016/j.neurobiolaging.
[15]Justin M Long,Debomoy K Lahiri.MicroRNA-101 downregulates Alzheimer's amyloid-precursor in human cell cultures and is differentially expressed[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,2011,404,889-895.
[16]Lytle JR,Yario TA,Steitz JA.TargetmRNAs are repressed as efficiently bymicroRNA-binding sites in the 5’UTR as in the 3’UTR[J].Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,2007,104,9667 -9672.
[17]Grimson A,F(xiàn)arh KK,Johnston WK,et al.MicroRNA targeting specificity in mammals:Determinants beyond seed pairing[J].Mol.Cell,2007,27,91-105.
[18]宗園媛,王曉映,王海林,等.APP/PS雙轉(zhuǎn)基因阿爾茨海默病小鼠模型的老年斑及行為學(xué)動態(tài)分析[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2008,18(9):8-12.