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    甲型H1N1流感病毒感染不同免疫缺陷小鼠的比較

    2011-02-03 07:38:14徐艷峰馬春梅李楓棣鮑琳琳
    中國比較醫(yī)學(xué)雜志 2011年12期
    關(guān)鍵詞:品系流感病毒病毒感染

    劉 穎,鄧 巍,徐艷峰,朱 華,馬春梅,李楓棣,鮑琳琳,秦 川

    (中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)實驗動物研究所,衛(wèi)生部人類疾病比較醫(yī)學(xué)重點實驗室;中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)實驗動物研究所,國家中醫(yī)藥管理局人類疾病動物模型三級實驗室)

    流感病毒的全球流行往往導(dǎo)致嚴(yán)重的后果,1918年的西班牙流感最終致使5 000萬人死亡,而2009年爆發(fā)的甲型H1N1流感病毒的大流行迅速蔓延傳播至世界兩百多個國家和地區(qū),造成數(shù)萬人死亡。流感病毒感染宿主后,針對病原體的適應(yīng)性免疫在病毒的清除中起到關(guān)鍵作用,并據(jù)此設(shè)計出多種流感疫苗應(yīng)。近來隨著對非特異性的固有免疫的研究不斷深入,發(fā)現(xiàn)包括NK細(xì)胞、肺泡巨噬細(xì)胞和DC等在控制病毒復(fù)制和調(diào)節(jié)病毒特異的適應(yīng)性免疫中都起到重要的作用。缺少T細(xì)胞、B細(xì)胞和NK細(xì)胞的小鼠不能抵御病毒感染但能夠通過給予特異性抗體進(jìn)行治療,而T細(xì)胞和B細(xì)胞重排缺陷的小鼠感染后始終不能清除病毒,體重持續(xù)下降直到死亡。本研究中使用了四種不同的免疫缺陷型小鼠建立甲型H1N1流感病毒感染模型,比較了其在感染病毒后動物的存活率、體重減少情況和肺組織病變上與野生型小鼠的差異。

    1 材料和方法

    1.1 實驗動物

    雌性4~6周C57BL/6小鼠、BALB/c小鼠、SCID小鼠、NOD/LtJ小鼠、BALB/c-nu小鼠和NODSCID小鼠(各10只)(由北京華阜康提供SCXK2009-0004)。小鼠按品系分籠飼養(yǎng),實驗前3 d安置于ABSL-3實驗室獨立送風(fēng)隔離籠具中適應(yīng)環(huán)境。

    1.2 病毒感染

    H1N1病毒A/California/7/2009(CA7)株,以106TCID50。各品系小鼠經(jīng)乙醚麻醉后進(jìn)行滴鼻攻毒,每只小鼠50μL,攻毒后每天觀察,分別于第4天、第7天和第14天處死小鼠取材檢測小鼠感染后的肺組織病毒載量和病理改變。實驗在中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院實驗動物研究所ABSL-3實驗室中進(jìn)行。

    1.3 動物犧牲及標(biāo)本處理

    斷頸處死小鼠,打開胸腔,保留肺組織:取右上肺葉于組織裂解液中用于提取組織RNA;取右中肺葉于凍存管置-80℃冰箱中備份保存;其余肺葉于10%中性甲醛溶液中固定。

    1.4 肺組織總RNA提取及PCR檢測

    RNeasy Mini Kit試劑盒(Qiagen,74106)提取肺組織總RNA,反轉(zhuǎn)錄成cDNA。使用熒光染料Power SYBR Green PCR Master Mix(ABI,4367659)進(jìn)行real-time PCR檢測(ABI Stepone PCR儀)。擴增程序94℃3 min;94℃30 s,59℃30 s,72℃30 s,共35個循環(huán);95℃,15 s;60℃1 min;95℃15 s。每次試驗的標(biāo)準(zhǔn)品作106copies/m L、105copies/m L、104copies/m L、103copies/m L、102copies/m L濃度梯度稀釋,陰性對照(H2O)與樣品一起提取RNA后做realtime PCR。通過讀取儀器數(shù)據(jù)得到病毒載量。所用H1N1亞型特異性引物為 SW-H1 F786 5’-AATAACATTAGAAGCAACTGG-3’,SW-H1 R920 5’-AGGCTGGTGTTTATRGCACC-3’,目的片段大小為153 bp[1]。

    1.5 病理學(xué)檢查

    取小鼠肺組織,10%中性甲醛溶液固定,常規(guī)石蠟包埋,HE染色,光鏡下觀察其病理變化。

    1.6 統(tǒng)計學(xué)方法

    小鼠的體重變化用體重百分比表示,即以小鼠當(dāng)天體重減去0 d體重的差值作分子,以0 d體重做分母,記錄為平均體重變化±標(biāo)準(zhǔn)差,數(shù)值采用每組的平均數(shù)。各組小鼠肺組織病變面積使用單因素方差分析進(jìn)行兩兩比較。

    2 結(jié)果

    2.1 小鼠感染后存活情況和大體觀察

    各組小鼠感染H1N1病毒后逐漸出現(xiàn)進(jìn)食減少、消瘦、被毛逆立、弓背、反應(yīng)遲鈍等癥狀。感染H1N1病毒的6種小鼠在觀察的14 d內(nèi),僅有野生型的C57BL/6小鼠有50%存活,BALB/c小鼠和各免疫缺陷品系的小鼠死亡率均為100%。其中,NK細(xì)胞缺陷的NOD/LtJ小鼠感染早期即開始大量死亡,至感染后第8天已經(jīng)沒有存活小鼠;T細(xì)胞缺陷的BALB/c-nu小鼠在中晚期大量死亡,至感染后第11天全部死亡;而T細(xì)胞和B細(xì)胞缺陷的SCID和T、B、NK細(xì)胞聯(lián)合缺陷的NOD-SCID小鼠分別于感染后第3天和第4天開始出現(xiàn)死亡,至感染后第13天和第12天全部死亡(圖1)。剖檢過程中可見感染小鼠肺臟有明顯的充血和水腫,肺組織表面有局部實變,其他臟器未見明顯改變。

    圖1 不同品系小鼠感染H1N1流感病毒存活率Fig.1 Survival rate of differentmouse strains infected with influenza A(H1N1)virus

    2.2 小鼠體重變化

    C57BL/6小鼠體重下降緩慢,只(7~10)d降至最低,約為實驗前的80%~90%,而后存活小鼠體重逐漸回升;其余品系小鼠體重隨病情發(fā)展快速下降,直至死亡,其中SCID小鼠體重下降最快,10 d降至感染前體重的60%以下,BALB/c小鼠、NOD/ LtJ、BALB/c-nu和NOD-SCID小鼠體重下降較快,(7~10)d降至感染前體重的60%~70%(圖2)。

    圖2 不同品系小鼠感染H1N1流感病毒后體重變化情況Fig.2 Different laboratory mouse strains exhibit variablekinetics of weight loss after influenza A(H1N1)virus infection

    2.3 小鼠肺組織病毒載量檢測結(jié)果

    攻毒后4 d和7 d處死小鼠取肺組織RT-PCR檢測流感病毒的表達(dá)量(表1),各組小鼠均染毒。攻毒后4 d C57BL/6小鼠病毒載量較小,其余各品系小鼠病毒載量較大,將各組小鼠病毒拷貝數(shù)取對數(shù)后進(jìn)行方差分析,各品系小鼠間差異沒有顯著性。

    表1 H1N1感染小鼠肺組織病毒拷貝數(shù)Tab.1 Virus copy number ofm ice infected with H1N1 virus

    2.4 小鼠肺組織病理觀察結(jié)果

    感染H1N1流感病毒后,各品系小鼠肺組織均出現(xiàn)了一定程度的損傷,其中BALB/c-nu小鼠的損傷面積最小,SCID小鼠的損傷面積最大,但統(tǒng)計學(xué)上差異沒有顯著性(圖3);C57BL/6小鼠和NOD/ LtJ小鼠7 d的病變面積較4 d有所局限縮小,BALB/c小鼠、SCID小鼠、BALB/c-nu小鼠和NODSCID小鼠7 d的病變面積較4 d略有擴大,但均沒有統(tǒng)計學(xué)意義。

    圖3 不同品系小鼠感染H1N1流感病毒后肺組織損傷面積比例Fig.3 Percentage of lung lesion area in different laboratory mouse strains after infection with influenza A(H1N1)virus

    除肺組織損傷的病變面積不同外,各品系小鼠肺組織的病變特點也不盡相同。從肺組織病理改變看,C57BL/6小鼠感染初期表現(xiàn)為較彌漫的間質(zhì)性肺炎,血管擴張充血,周圍水腫,有單核細(xì)胞、淋巴細(xì)胞和中性粒細(xì)胞浸潤,細(xì)支氣管上皮較完整,肺泡間隔增寬,肺泡受壓變形,腔內(nèi)有炎細(xì)胞;感染后期病變逐漸局限,細(xì)支氣管上皮細(xì)胞出現(xiàn)增生,滲出的炎細(xì)胞逐漸減少。與野生型C57BL/6小鼠相比,BALB/c小鼠和其余四種免疫缺陷型小鼠感染后病變隨病程進(jìn)展不斷加重,沒有恢復(fù)好轉(zhuǎn),這與存活情況和體重減少的結(jié)果相一致。除了出現(xiàn)間質(zhì)性肺炎和血管變化外,由于缺乏清除病毒的免疫機制,免疫缺陷小鼠細(xì)支氣管上皮細(xì)胞和肺泡上皮細(xì)胞出現(xiàn)了變性壞死和脫落,SCID小鼠和NOD/ LtJ小鼠感染后7 d和NOD-SCID小鼠感染后4 d和7 d表現(xiàn)尤為嚴(yán)重。與C57BL/6小鼠肺組織內(nèi)多種炎癥細(xì)胞的浸潤參與炎癥反應(yīng)對抗病毒感染不同,免疫缺陷小鼠的肺組織內(nèi)炎細(xì)胞數(shù)量很少,SCID小鼠以中性粒細(xì)胞和巨噬細(xì)胞為主,NOD/LtJ小鼠以中性粒細(xì)胞和單核細(xì)胞為主,BALB/c-nu小鼠以中性粒細(xì)胞為主,NOD-SCID小鼠僅有少量的單核細(xì)胞和巨噬細(xì)胞(圖4,見彩插1)。

    3 討論

    在流感病毒的初次感染中,固有免疫和適應(yīng)性免疫在病毒的清除和病變的局限中都起著重要的作用。我們使用甲型H1N1病毒A/California/7/ 2009(CA7)株感染野生型和4種免疫缺陷型小鼠,觀察各品系小鼠病毒感染和肺組織的病理改變。結(jié)果發(fā)現(xiàn)不同品系的小鼠感染流感病毒,由于宿主本身的免疫系統(tǒng)功能狀態(tài)不同,所以對病毒的反應(yīng)存在差異。

    從動物死亡情況看,野生型的C57BL/6小鼠的存活率最高,為50%;BALB/c小鼠和各免疫缺陷品系的小鼠死亡率均為100%。其中,NK細(xì)胞缺陷的NOD/LtJ小鼠感染早期即開始大量死亡;T細(xì)胞缺陷的BALB/c-nu小鼠在中晚期大量死亡。從動物體重減低的情況看,C57BL/6小鼠感染后體重下降后又回升;BALB/c小鼠和各免疫缺陷品系小鼠感染病毒后體重隨病情發(fā)展快速下降,直至死亡。這說明在病毒感染早期,NK細(xì)胞起到重要的清除病毒的作用,NK細(xì)胞缺陷的小鼠感染流感病毒后很快出現(xiàn)死亡;而在感染晚期主要由特異性的T細(xì)胞清除病毒,T細(xì)胞缺陷小鼠在感染中晚期大量死亡。NK細(xì)胞被認(rèn)為不僅在對抗病毒感染的固有免疫過程中發(fā)揮作用,同時在調(diào)節(jié)病毒特異的適應(yīng)性免疫中也起到重要作用。然而之前的研究也發(fā)現(xiàn),雖然NK細(xì)胞在病毒感染早期的固有免疫中有重要的作用,但流感病毒發(fā)展出逃避固有免疫的能力[2,3],病毒能夠降低NK細(xì)胞的活性[4]。而且除了NK細(xì)胞,固有免疫還有DC、巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等多種細(xì)胞和組分參與作用,所以BALB/c小鼠與NOD/ LtJ小鼠,SCID小鼠與NOD-SCID小鼠間在死亡率上并沒有明顯的差異。這些結(jié)果說明在甲型H1N1流感感染的過程中NK細(xì)胞的缺陷影響到感染早期動物的存活,但對整個發(fā)病的預(yù)后并沒有起到?jīng)Q定性的影響。T、B細(xì)胞聯(lián)合缺陷的SCID小鼠較T細(xì)胞單獨缺陷的小鼠更早出現(xiàn)死亡,體重下降也更為明顯,說明B細(xì)胞在流感病毒的感染中起到至關(guān)重要的作用。之前也有研究表明流感的初次感染中,單獨B細(xì)胞缺陷的小鼠和同時缺乏B細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的小鼠均不能抵抗病毒的感染,前者盡管也有大量的CD8+T細(xì)胞浸潤但仍然不能抵抗病毒的感染。但單獨CD4+T細(xì)胞缺陷的小鼠卻僅僅引起病毒清除的延遲,但仍能存活下來[5],所以在T細(xì)胞對抗流感病毒的過程中,CD8+T細(xì)胞的作用可能占主導(dǎo)作用。

    從肺組織病理改變看,C57BL/6小鼠感染由彌漫的間質(zhì)性肺炎逐漸局限;BALB/c小鼠和其余四種免疫缺陷型小鼠感染后病變隨病程進(jìn)展不斷加重,沒有恢復(fù)好轉(zhuǎn),這與存活情況和體重減少的結(jié)果相一致。除了出現(xiàn)間質(zhì)性肺炎和血管變化外,由于缺乏清除病毒的免疫機制,免疫缺陷小鼠細(xì)支氣管上皮細(xì)胞和肺泡上皮細(xì)胞出現(xiàn)了變性壞死和脫落。但由于各品系小鼠的免疫系統(tǒng)表型的差異,肺組織中浸潤的炎細(xì)胞種類也有差異,但除了相應(yīng)的淋巴細(xì)胞數(shù)量減少外,其他組分的炎癥細(xì)胞由于缺乏相應(yīng)的刺激和誘導(dǎo)因子,對流感病毒感染的反應(yīng)也有所降低,參與炎癥反應(yīng)的數(shù)量減少。由此可知流感病毒感染中,NK細(xì)胞、T細(xì)胞和B細(xì)胞除了直接的病毒殺傷作用和抗體中和作用外,對其他炎癥細(xì)胞的活化和誘導(dǎo)也起著重要的作用。但BALB/c小鼠雖然免疫系統(tǒng)沒有顯著缺陷,但肺組織內(nèi)的炎癥細(xì)胞數(shù)量明顯少于C57BL/6小鼠肺組織內(nèi)炎癥細(xì)胞數(shù)量,造成這一現(xiàn)象的具體機制還有待于進(jìn)一步研究。

    [1]鮑琳琳,孫惠惠,占玲俊,等.A/California/7/2009與A/ California/4/2009病毒感染力比較[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2010,20(1):6-9.

    [2]Heltzer,ML,Coffin SE,Maurer K,et al.Immune dysregulation in severe influenza[J].J Leukoc Biol.2009.85:1036-1043.

    [3]Gobbo D,Villani N,Marini S,et al.Suppressor cells induced by influenza virus inhibit interleukin-2 production in mice[J].Immunology 1990.69:454-459.

    [4]Mao HW,Tu WW,Liu YP,et al.Inhibition of human natural killer cell activity by influenza virions and hemagglutinin[J].J Virol,2010,(5):4148-4157.

    [5]Wu HY,Haist V,BaumgartnerW,et al.Sustained viral load and late death in Rag2-/-mice after influenza A virus infection[J].Virol J,2010,7:172,doi:10.1186/1743-422X-7-172.

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