劉兆穎,伍 勇(綜述),孫志良(審校)
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院湖南省獸藥工程技術(shù)研究中心,長沙410128)
細(xì)胞色素P450酶(cytochrome P450,CYP)是一復(fù)雜的多酶體系,CYP多肽鏈的分子量因動物種屬不同而異。CYP酶系的特異性及底物重疊性,大部分是由于存在大量CYP同工酶,這些酶的氨基酸序列具有高度同源性,可歸于同源蛋白質(zhì)。食品動物CYP是指參與食品動物(豬、牛、羊、雞、魚等)機(jī)體內(nèi)各種外源物質(zhì),如獸藥、飼料添加劑、環(huán)境污染物等異物代謝轉(zhuǎn)化的P450酶系的總稱。研究食品動物細(xì)胞色素P450,有利于指導(dǎo)獸醫(yī)臨床合理用藥,避免中毒和藥物的相互作用;指導(dǎo)新獸藥設(shè)計與劑型改進(jìn);也有利于指導(dǎo)殘留分析和殘留監(jiān)控,保障食品安全和消費(fèi)者的健康。因此,食品動物中CYP的研究越來越受到國內(nèi)外的重視。目前,研究人和實驗動物CYP的報道較多,而研究食品動物中CYP相對很少,且大部分研究只證明了CYP在食品動物中的表達(dá)和活性,而與獸藥的聯(lián)系不緊密。在此將國內(nèi)外有關(guān)食品動物中細(xì)胞色素P450酶的影響因素,幾種細(xì)胞色素P450同工酶在食品動物中的表達(dá)和活性等方面的研究進(jìn)展予以綜述,為獸藥的CYP進(jìn)一步研究提供重要的基礎(chǔ)。
CYP1A除參與有機(jī)環(huán)境污染物的生物轉(zhuǎn)化外,一些獸藥也可經(jīng)該酶代謝,如阿苯噠唑、噻苯噠唑、甲苯噠唑、咖啡因和雌二醇,CYP1A能活化一些多環(huán)芳香烴和聚氯聯(lián)(二)苯等前致癌物。豬體內(nèi)CYP1A同工酶雖然證實它可被β-萘黃酮或多氯聯(lián)苯所誘導(dǎo),但目前尚未進(jìn)行測序研究[1,2]Western雜交發(fā)現(xiàn)豬、牛和羊的CYP1A與人的CYP1A2抗體無交叉反應(yīng),但與抗鼠CYP1A1/2 IgG有很強(qiáng)的交叉反應(yīng)[3]。豬的 CYP1A蛋白與抗兔CYP1A1/2有較弱的交叉反應(yīng)[4]。用 CYP1A的特征底物和Western雜交發(fā)現(xiàn):牛肝中的 CYP1A活性很高,與綿抗大鼠CYP1A1存在很高的交叉反應(yīng),并推測牛中可能存在兩種CYP1A同工酶[5]。CYP1A亞家族可被植物中的許多營養(yǎng)素所誘導(dǎo)[6],因此,牛中高表達(dá)的CYP1A可能與此有關(guān)。目前,從雞胚肝中純化和確定了四氧二苯二氧雜環(huán)己二烯誘導(dǎo)的兩個CYP,一個命名為CYP1A4,具有乙氧-9-羥基異吩噻唑-O-脫乙基酶和芳香烴羥化酶的活性;另一個命名為CYP1A5,具有四氧二苯二氧雜環(huán)己二烯誘導(dǎo)的花生四烯酸的環(huán)氧化和他莫昔芬的4-羥化,但沒有乙氧-9-羥基異吩噻唑-O-脫乙基酶和芳香烴羥化酶的活性[7-8]。并對雞的CYP1A進(jìn)行了克隆和表達(dá)[9]。魚的CYP1A基因可作為評價水生環(huán)境污染的生物標(biāo)志物,但是,魚的CYP1A在不同品種之間的序列相似性不高CYP1A抗體在不同魚物種間的交叉反應(yīng)很低。目前,從雌雄同體魚中克隆了CYP1A的cDNA序列,并在大腸埃希菌中重組表達(dá)成功[10]。
目前,從豬肝微粒體中分離、純化了CYP2A,并用免疫染色分析N-末端的20個氨基酸序列,發(fā)現(xiàn)有14個氨基酸與人的CYP2A6相同(70%)[11]。并且研究發(fā)現(xiàn)豬個體之間存在很大的CYP2A代謝差異引起這差異的原因并不是豬中存在CYP2A多態(tài)性而是由于轉(zhuǎn)錄調(diào)控[12],該基因在小豬中有1620 bp和1795 bp兩條 cDNAs(GenBank accession number AY380866),長的或野生型cDNA與豬CYP2A19序列同源(GenBank accession number AB052255),該基因編碼的蛋白有99%與CYP2A19一致,即494個氨基酸中有493個是一樣的;短的cDNA與普通豬CYP2A19序列相似,該基因編碼487個氨基酸,前面466個中有464個與普通豬CYP2A19一樣,409個與人的CYP2A6,其他的氨基酸都不同。普通豬和小豬的野生型CYP2A包含6個底物識別位點(diǎn),而短的CYP2A只有前5個底物識別位點(diǎn)。
從豬的小腸cDNA文庫中轉(zhuǎn)錄了CYP2C42基因,該基因是由327個氨基酸編碼的開放讀碼框架,并不是全長的克隆。Zaphiropoulos等[4]用反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)方法從排卵前的濾泡中得到了5條cDNA克隆,以cDNA為模板擴(kuò)增,得到5個DNA雙鏈,分別命名為CYP2C32、CYP2C33、CYP2C34、CYP2C35、CYP2C36。從豬肝微粒體中分離、純化了CYP2C,并用免疫染色分析N-末端的20個氨基酸序列,發(fā)現(xiàn)有10個氨基酸與人的CYP2C9相同(50%)[11]。Baader等[13]克隆了雞的第一個CYP2C亞家族cDNA,命名為CYP2C45,在發(fā)現(xiàn)該基因前,認(rèn)為雞中CYP2H1是CYP2C的類似物,苯巴比妥能誘導(dǎo)CYP2C45 mRNA增加,誘導(dǎo)的機(jī)制與CYP2H1基因的一個264 bp苯巴比妥反應(yīng)增強(qiáng)單位相似[14],即在2.6 kb片段中有一個CYP2H1苯巴比妥反應(yīng)增強(qiáng)單位的核因子1位點(diǎn)和同向重復(fù)核受體結(jié)合位點(diǎn)。
牛的CYP2D蛋白已克隆,與人的CYP2D6相比,核苷酸序列只有不到7%的差別。目前,從豬的小腸cDNA文庫中已轉(zhuǎn)錄了CYP2D25基因[15],在豬的肝微粒體中也分離了CYP2D25,該蛋白77%以上的序列與人的CYP2D6相同,并催化一些共同的底物,如普萘洛爾、丁呋洛爾、右美沙芬和托特羅定[2]。而人的CYP2D6不能催化維生素D的25-羥化[16]。Sakuma等[15]總結(jié)了不同種屬的 CYP2D同工酶與人的CYP2D6核苷酸和氨基酸序列的一致性(表1)。
CYP2E1主要參與一些低分子質(zhì)量異物的代謝活化。小豬的CYP2E1已經(jīng)分離純化、cDNA克隆和測序,豬和小豬的CYP2E1由496個氨基酸組成,比人的少兩個殘基。豬和小豬的CYP2E1結(jié)構(gòu)上只有細(xì)微的差別,即第346位的氨基酸不同,豬的是纈氨酸,小豬的是天冬氨酸,而人的是谷氨酸,這樣,小豬的CYP2E1跟人的更相似[17]。CYP2E1的結(jié)構(gòu)是CYP中最保守的酶之一,在不同種屬之間,將近80%的氨基酸序列是一致的[16],因此,許多動物都有相似的催化特征。豬與人的CYP2E1結(jié)構(gòu)上的主要區(qū)別是底物識別[18],豬在該區(qū)域的兩個氨基酸是His92和Asn95,而人的都是天冬氨酸。
表1 其他動物CYP2D同工酶與人CYP2D6核苷酸和氨基酸序列的比較
CYP3A是異物代謝中最重要的CYP,參與的底物相當(dāng)廣泛。Western雜交發(fā)現(xiàn)豬、牛和羊的CYP3A蛋白與抗人的CYP3A4 IgG有較強(qiáng)的交叉反應(yīng),但與抗鼠CYP3A1 IgG的交叉反應(yīng)較弱。在V79中國倉鼠細(xì)胞中表達(dá)了牛的全長CYP3A cDNA序列,該蛋白能使睪酮包括6β在內(nèi)的許多位置的羥化,也能被CYP3A抑制劑酮康唑所抑制[19]。van't Klooster等[20]用抗鼠CYP3A1的單克隆抗體檢測到牛后線粒體液一條免疫反應(yīng)蛋白。并有研究者從綿羊中純化了CYP3A蛋白,該蛋白能被醋竹桃霉素誘導(dǎo),催化紅霉素、氯丙嗪、氯苯那敏和溴己新的 N-脫甲基化[21]。目前,從豬的小腸 cDNA文庫中已轉(zhuǎn)錄了CYP3A29基因,從豬肝微粒體中分離、純化了CYP3A29,并用免疫染色分析N-末端的20個氨基酸序列,發(fā)現(xiàn)有12個氨基酸與人的 CYP3A4相同(60%)。不同種屬的CYP3A同工酶與人的CYP3A4核苷酸和氨基酸序列的比較見表2。
CYP4A包含許多同工酶,主要催化各種脂肪酸的ω和ω-1氧化,包括月桂酸、花生四烯酸和前列腺素[22]。比較豬、牛、山羊和綿羊肝微粒體的12-月桂酸羥化酶的活性,發(fā)現(xiàn)羊肝中的12-月桂酸羥化酶的活性很高。豬的CYP4A21在底物特異性和結(jié)構(gòu)特征上與其他的CYP4A不同,它是CYP4A中唯一催化脫氧鵝膽酸的 6α-羥化,參與膽汁酸的合成CYP4A21有 95% 的基因序列與 CYP4A24和CYP4A25相同,大小約13 kb,有12個外顯子,并且研究表明豬的CYP4A21和CYP4A24的基因都是從一個遺傳基因復(fù)制而來,其5'末端高度一致,主要不同的是6~8外顯子之間的核苷酸序列[23]。
表2 其他動物CYP3A同工酶與人CYP3A4核苷酸和氨基酸序列的比較
目前對食品動物細(xì)胞色素P450酶的研究還只停留在代謝酶序列種屬差異比較、活性及含量測定等常規(guī)研究上,而對CYP參與獸藥代謝,CYP作用的分子機(jī)制、表達(dá)調(diào)控及結(jié)構(gòu)與功能的關(guān)系及翻譯后修飾等領(lǐng)域的研究有待進(jìn)一步深入。隨著生物學(xué)、分子生物學(xué)、醫(yī)藥學(xué)、畜牧業(yè)及分子藥理學(xué)、藥效學(xué)、毒理學(xué)等相關(guān)學(xué)科的發(fā)展和新儀器新技術(shù)的出現(xiàn),先進(jìn)實驗技術(shù)和檢測技術(shù)也在不斷地增加,藥物代謝酶及相關(guān)學(xué)科領(lǐng)域必將有廣闊的發(fā)展前景。目前,細(xì)胞色素P450等代謝酶的分子生物學(xué)研究已深入到基因表達(dá)的調(diào)控,使對酶的結(jié)構(gòu)進(jìn)行剪裁從而改變其活性進(jìn)而改變藥物的代謝過程,并應(yīng)用于藥物代謝研究領(lǐng)域成為可能。同時由于蛋白質(zhì)組學(xué)及其他新技術(shù)的發(fā)展,CYP基因的調(diào)控機(jī)制及CYP結(jié)構(gòu)和功能關(guān)系,脂溶性CYP晶體結(jié)構(gòu)模擬將成為今后獸藥代謝酶的研究熱點(diǎn)。
[1] Lu C,Li AP.Species comparison in cytochrome P450 induction: effects of dexamethasone,omeprazole,and rifampine on P450 isoforms 1A and 3A in primary cultured hepatocytes form man,Sprague-Dawley rat,minipig,and Beagle dog[J].Chem-Biol Interact,2001,134(3):271-281.
[2] Myers MJ,F(xiàn)arrell DE,Howard KD,et al.Identification of multiple constitutive and inducible hepatic cytochrome P450 enzymes in market weight swine[J].Drug Metab Dispos,2001,29(6): 908-915.
[3] Eltom SE,Schwark WS.CYP1A and CYP2B1,two hydrocarbon-in
ducible cytochromes P450,are constitutively expressed in neonate and adult goat liver,lung and kidney[J].Pharmacol Toxicol, 1999,85(2):65-73.
[4] Zaphiropoulos PG,Skantz A,Eliasson M,et al.Cytochrome P450 gene expression in porcine ovaries:identification of novel forms for gene conversion,and evolutionary relationships[J].Biochem Biophys Res Comm,1995,212(2):433-441.
[5] Sivapathasundaram S,Magnisali P,Goldham NG,et al.A study of the expression of the xenobiotic-metabolising cytochrome P450 proteins and of testosterone metabolism in bovine liver[J].Biochem Pharmacol,2001,62(5):635-645.
[6] Ioannides C.Effect of diet and nutrition on the expression of cytochromes P450[J].Xenobiotica,1999,29(2):109-154.
[7] Kanetoshi A,Ward AM,May BK,et al.Immunochemical identity of the 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin and β-naphthoflavone-induced cytochrome P-450 arachidonic acid epoxygenases in chick embryo liver:distinction for the ω-hydroxylase and the phenobarbital-induced epoxygenase[J].Mol Pharmacol,1992,42 (6):1020-1026.
[8] Kupfer D,Mani C,Lee CA,et al.Induction of tamoxifen 4-hydroxylation by 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin(TCDD),β-naphthoflavone(βNF),and-phenobarbital(PB)in avian liver:identification of P450TCDDAA as catalyst of 4-hydroxylation induced by TCDD and βNF[J].Cancer Res,1994,54(12):3140-3144.
[9] Gilday D,Cannpn M,Yutzey K,et al.Molecular cloning and expression of two novel avian cytochrome P450 1A enzymes induced by 2,3,7,8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin[J].J Biol Chem,1996 271(51):33054-33059.
[10] Kim IC,Kim YJ,Yoon YD,et al.Cloning of cytorome P4501A (CYP1A)genes from the hermaphroditc fish Rivulus marmoratus and the Japanese medaka Oryzias latipes[J].Mar Environ Res 2004,58(2/5):125-129.
[11] Soucek P,Zuber R,Anzenbacherova E,et al.Minipig cytochrome P450 3A,2A and 2C enzymes have similar properties to human analogs[J].BMC Pharmacol,2001,12(1):11.
[12] Skaanild MT,F(xiàn)riis C.Porcine CYP2A polymorphisms and activity[J].Basic Clin Pharmacol Toxicol,2005,97(2):115-121.
[13] Baader M,Gnerre C,Stegeman JJ,et al.Transcriptional activation of cytochrome P450 CYP2C45 by drugs is mediated by chicken xenobiotic receptor(CXR)interacting with a phenobarbital response enhancer unit[J].J Biol Chem,2002,277(18):15647-15653.
[14] Handschin C,Meyer UA.A conserved nuclear receptor consensus sequence(DR-4)mediates transcriptional activation of the chicken CYP2H1 gene by phenbarbital in a hepatoma cell line[J].J Biol Chem,2000,275(18):13362-13369.
[15] Sakuma T,Shimojima T,Miwa K,et al.Cloning CYP2D21 and CYP3A22 cDNAs from liver of miniature pigs[J].Drug Metab Dispos,2004,32(4):376-378.
[16] Guengerich FP.Comparisions of catalytic selectivity of cytochrome P450 subfamily enzymes from different species[J].Chem-Biol Interact,1997,106(3):161-182.
[17] Baranova J,Anzenbacherova E,Anzenbacher P,et al.Minipig cytochrome P450 2E1:comparison with human enzyme[J].Drug Metab Dispos,2005,33(6):862-865.
[18] Gotoch O.Substrate recognition sites in cytochrome P450 family 2 (CYP2)proteins inferred from comparative analyses of amino acid and coding nucleotide sequences[J].J Biol Chem,1992,267(1) 83-90.
[19] Natsuhori M,van Raak M,Ligtenberg M,et al.Isolation of a bovine full length cytochrome P450(CYP3A)cDNA sequence and its functional expression in V79 cells[J].Environ Toxicol Pharmacol 1997,3(2):17-24.
[20] Van't Klooster GA,Blaauboer BJ,Noordhooek J,et al.Cytochrome P450 induction and metabolism of alkoxyresorufins,ethylmorphine and testosterone in cultured hepatocytes from goats,sheep and cattle[J].Biochem Pharmacol,1993,46(10):1781-1790.
[21] Pineau P,Galtier P,Bonfils C,et al.Purification of a sheep liver cytochrome P450 from the P450ⅢA gene subfamily.Its contribution to the N-dealkylation of veterinary drugs[J].Biochem Pharmacol,1990,39(5):901-909.
[22] Okita RT,Okita JR.Cytochrome P450 4A fatty acid omega hydroxylases[J].Curr Drug Metab,2001,2(3):265-281.
[23] Lundell K.Cloning and expression of two novel pig liver and kidney fattey acid hydroxylases[cytochrome P450(CYP)4A24 and CYP4A25][J].Biochem J,2002,363(Pt 2):297-303.