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    聚乙烯亞胺介導基因轉(zhuǎn)染的影響因素研究

    2010-11-06 06:04:40鵬,張
    中國藥業(yè) 2010年13期
    關(guān)鍵詞:效率血清

    周 鵬,張 瑜

    (1.廣東省深圳龍珠醫(yī)院,廣東 深圳 518055;2.新疆維吾爾自治區(qū)人民醫(yī)院高血壓科,新疆 烏魯木齊 830001)

    基因轉(zhuǎn)染是指利用基因載體攜帶目的基因運送到細胞內(nèi)的方法。目前在基因治療中,由于病毒載體存在著諸多缺陷[1],非病毒載體如陽離子脂質(zhì)體和陽離子共聚物越來越受到重視[2-3]。其中聚乙烯亞胺(polyethylenimine,PEI)是目前研究較多的聚陽離子型基因載體[4],富含氨基,可與DNA鏈上負電性的磷酸根通過靜電作用締合成復合物。在此過程中,DNA會被高度壓縮成50~200 nm大小的納米球[5],大大增強了對細胞膜的穿透作用,因此具有較高的轉(zhuǎn)染效率[6]。但PEI作為非病毒基因載體,其轉(zhuǎn)染效率的影響因素較多,重復性不好。筆者考察了影響其轉(zhuǎn)染效率的因素,從而篩選出較優(yōu)的轉(zhuǎn)染條件,為進一步的研究打下基礎(chǔ)。

    1 實驗材料

    PEI(相對分子質(zhì)量為25 000,支鏈型,無水,Aldrich-Sigma公司)。人宮頸癌細胞系Hela細胞(ATCCNo.CCL-2.1),在100 mL/L胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基中培養(yǎng),血清56℃滅活30 min。真核表達質(zhì)粒編碼增強型綠色熒光蛋白(theenhanced green fluorescent protein,pEGFP-C1,華西醫(yī)科大學惠贈),由CMV啟動子驅(qū)動,在DH5α菌株中大量擴增。由QIAGEN公司的質(zhì)粒大抽提試劑及純化柱制備質(zhì)粒,酶切鑒定。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 PEI/DNA復合物的制備及其形態(tài)觀察

    氮磷比(N/P)為聚合物中的氨基基團與DNA中的磷酸基團的物質(zhì)的量之比。根據(jù)N/P,將聚合物的磷酸鹽緩沖液與質(zhì)粒DNA的磷酸鹽緩沖液混合,渦旋,室溫靜置30 min,獲得聚合物-DNA復合物。取適量滴加在銅網(wǎng)上,用醋酸鈾進行負染,干燥后置透射電鏡下觀察復合物膠束的形態(tài)。由圖1可見,各PEI-DNA復合物納米粒呈規(guī)則的球形,粒子大小分布較均一,表明二者已形成復合物納米粒。

    2.2 質(zhì)粒量對轉(zhuǎn)染效率的影響

    圖1 PEI-DNA納米復合物的透射電鏡圖譜(N/P=20)

    將Hela細胞接種到12孔板上,每孔1.5×105個細胞,培養(yǎng)24h,細胞匯合度不低于70%,將PEI與DNA分別在磷酸鹽緩沖液中配成一定濃度的溶液。設(shè)質(zhì)粒劑量分別為每孔 0.5,1,2,3,4 μg,然后將兩者按N/P=10混合,渦旋,室溫靜置20 min。轉(zhuǎn)染前吸去細胞培養(yǎng)液,加入不含血清的RPMI 1640培養(yǎng)液1 mL,再每孔加入100~200μL的PEI-DNA復合物,細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,吸去轉(zhuǎn)染復合物,加入新鮮的含100 mL/L胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)40~48 h,然后用磷酸鹽緩沖液沖洗,再用0.25 g/L胰酶-乙二胺四乙酸消化液將細胞消化下來,用磷酸鹽緩沖液重懸細胞,轉(zhuǎn)染率通過在流式細胞儀上測定每10 000個細胞中發(fā)熒光的細胞百分數(shù)獲得。結(jié)果如圖2所示,在12孔板中,當每孔質(zhì)粒量少于2μg時,轉(zhuǎn)染率較低;當質(zhì)粒量達到每孔2μg后,繼續(xù)增加質(zhì)粒量,轉(zhuǎn)染率反而下降。因此12孔板質(zhì)粒的用量以每孔2μg較適宜。

    圖2 不同質(zhì)粒量對轉(zhuǎn)染率的影響

    2.3 復合物形成時間對轉(zhuǎn)染效率的影響

    將Hela細胞接種到12孔板上,每孔1.5×105個細胞,培養(yǎng)24h,細胞匯合度不低于70%,將PEI與DNA分別在磷酸鹽緩沖液中配成一定濃度的溶液,按轉(zhuǎn)染質(zhì)粒量為每孔2μg,N/P=10混合,渦旋,室溫靜置 10,20,30,40,50 min。轉(zhuǎn)染前吸去細胞培養(yǎng)液,加入不含血清的RPMI 1640培養(yǎng)液1 mL,再每孔加入100~200μL的PEI-DNA復合物,細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,吸去轉(zhuǎn)染復合物,加入新鮮的含100 mL/L胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)40~48 h,收集細胞,轉(zhuǎn)染率通過在流式細胞儀上測定每10 000個細胞中發(fā)熒光的細胞百分數(shù)獲得。復合物形成時間是PEI上的正電荷與DNA上負電荷相互作用形成球狀納米粒的時間,時間過短不能充分形成球狀納米粒,時間過長納米粒容易沉淀影響轉(zhuǎn)染效率。由圖3可見,復合物形成時間以30 min為宜。

    圖3 復合物形成時間對轉(zhuǎn)染率的影響

    2.4 復合物與細胞作用時間對轉(zhuǎn)染率的影響

    將Hela細胞接種到12孔板上,每孔1.5×105個細胞,培養(yǎng)24 h,細胞匯合度不低于70%,將PEI與DNA分別在磷酸鹽緩沖液中配成一定濃度的溶液,按轉(zhuǎn)染質(zhì)粒量為每孔2μg,N/P=10混合,室溫靜置30 min,轉(zhuǎn)染前吸去細胞培養(yǎng)液,加入不含血清的RPMI 1640培養(yǎng)液1 mL,再每孔加入100~200μL的PEI-DNA復合物,細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3,4,5,6 h后,吸去轉(zhuǎn)染復合物,加入新鮮的含100 mL/L胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)40~48 h,收集細胞,轉(zhuǎn)染率通過在流式細胞儀上測定每10 000個細胞中發(fā)熒光的細胞百分數(shù)獲得。轉(zhuǎn)染復合物需與細胞作用一定時間,使其與細胞充分接觸,進入細胞內(nèi),但復合物作用時間較長時,細胞死亡較多,對轉(zhuǎn)染不利。由圖4可見,轉(zhuǎn)染復合物與細胞作用4 h時轉(zhuǎn)染效率較高。

    圖4 復合物在細胞上的作用時間對轉(zhuǎn)染率的影響

    2.5 N/P對轉(zhuǎn)染效率的影響

    將Hela細胞接種到12孔板上,每孔1.5×105個細胞,培養(yǎng)24 h,細胞匯合度不低于70%,將PEI與DNA分別在磷酸鹽緩沖液中配成一定濃度的溶液,按轉(zhuǎn)染質(zhì)粒量為每孔2μg,N/P=10,15,20,25,30 混合,室溫靜置 30 min,轉(zhuǎn)染前吸去細胞培養(yǎng)液,加入不含血清的RPMI 1640培養(yǎng)液1 mL,再每孔加入100~200μL的PEI-DNA復合物,細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,吸去轉(zhuǎn)染復合物,加入新鮮的含100 mL/L胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)40~48 h,收集細胞,轉(zhuǎn)染率通過在流式細胞儀上測定每10 000個細胞中發(fā)熒光的細胞百分數(shù)獲得。PEI介導的基因轉(zhuǎn)染率與N/P比值的關(guān)系極大。筆者考察了N/P為 10,15,20,25,30 時對 PEI轉(zhuǎn)染Hela的影響。如圖5所示,N/P=20時被轉(zhuǎn)染細胞增強型綠色熒光蛋白(EGFP)陽性效率最高。

    圖5 不同N/P對轉(zhuǎn)染率的影響

    3 討論

    PEI是目前研究較為廣泛的聚陽離子基因載體,其每3個基團含有1個氨基,有豐富的陽離子電荷,可縮合DNA呈顆粒狀。PEI-DNA復合物通過靜電作用吸附到細胞表面[7],被動內(nèi)吞,進入細胞內(nèi)。制備PEI-DNA復合物方法簡單,轉(zhuǎn)染效率不亞于各種商業(yè)化的體外轉(zhuǎn)染劑[8]。PEI可作為一種結(jié)合DNA的骨架,偶聯(lián)上導向配體、核定位信號肽等,合成更復雜的DNA非病毒載體釋放系統(tǒng),用于體內(nèi)基因治療。但影響PEI轉(zhuǎn)染效率的因素較多,如質(zhì)粒量、復合物形成時間、轉(zhuǎn)染復合物與細胞作用時間、N/P等。其中N/P對轉(zhuǎn)染的影響最大,N/P增加時,陽性細胞比例增加,細胞毒性也增加,根本原因在于PEI的用量增加。本試驗發(fā)現(xiàn),當N/P較低時,PEI-DNA復合物的轉(zhuǎn)染效率隨N/P增加而增加,當N/P增加到一定值后,細胞毒性增加明顯,死亡細胞急劇增加,轉(zhuǎn)染效率反而下降。

    由本研究結(jié)果可知,PEI介導的基因轉(zhuǎn)染Hela細胞較優(yōu)的轉(zhuǎn)染條件為質(zhì)粒量2μg,復合物形成時間30 min,復合物在細胞上作用4 h,N/P=20。此轉(zhuǎn)染條件可為進一步的體內(nèi)研究打下基礎(chǔ)。

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