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    噻唑橙-殼聚糖-葉酸靶向熒光探針的制備及性能研究

    2010-07-30 03:02:22孟慶洋費(fèi)學(xué)寧王義啟
    關(guān)鍵詞:殼聚糖

    孟慶洋,費(fèi)學(xué)寧,王義啟

    (天津城市建設(shè)學(xué)院 材料科學(xué)與工程系,天津 300384)

    熒光染料是一種廣泛使用的熒光標(biāo)示劑(又稱為熒光探針),具有檢測(cè)速度快、重復(fù)性好、用樣量少、無輻射等優(yōu)點(diǎn).單體噻唑橙(TO)噁和 唑黃(YO)系列及其二聚體染料為典型的嵌入式探針,該種熒光探針染料對(duì)腫瘤細(xì)胞比對(duì)正常細(xì)胞更具親和力,由于其標(biāo)記速度快、接近生理 pH條件、對(duì)生物分子的功能活性影響小,因此已成為研究比較活躍的一類典型標(biāo)記菁染料[1].

    近二十多年來,隨著分子生物學(xué)的發(fā)展、免疫物質(zhì)的化學(xué)研究與發(fā)展,以及對(duì)新藥物資源的尋找與開發(fā),對(duì)多糖的研究受到越來越廣泛的重視[2-4].殼聚糖[5-6](Chitosan,簡稱 CTS)是一種來源豐富、具有良好生物相容性及生物可降解性的天然高分子材料.由于殼聚糖分子內(nèi)的羥基、氨基活潑性較強(qiáng),因而容易對(duì)其進(jìn)行化學(xué)改性;還可根據(jù)特定的對(duì)象選擇合適的生物分子進(jìn)行修飾,如修飾配體定位受體及修飾探針DNA、檢測(cè)目標(biāo) DNA 等,為生物醫(yī)學(xué)研究提供一種傳統(tǒng)熒光檢測(cè)的新方法[7].因殼聚糖的存在,在配體與染料之間起到了一種橋梁的作用,并可增加染料的細(xì)胞相容性,降低毒性.同時(shí),一個(gè)殼聚糖上接枝多個(gè)染料分子,在與組織結(jié)合和成像時(shí)所表現(xiàn)出的光學(xué)加合效應(yīng),對(duì)提高探針分子的靈敏度,降低使用量方面有積極意義.2005年,朝鮮Wonkwang大學(xué)的Kim等人[8]以半乳糖修飾的殼聚寡糖異硫氰熒光染料對(duì)肝細(xì)胞進(jìn)行靶向成像,光學(xué)成像主要位于肝細(xì)胞.

    葉酸作為靶向配體用于腫瘤靶向識(shí)別是近年備受關(guān)注的熱點(diǎn)之一.葉酸是一種人體必需的 B組維生素,它在體內(nèi)的主要轉(zhuǎn)運(yùn)途徑是通過葉酸受體,特別是在多種上皮腫瘤組織,葉酸受體的表達(dá)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于正常組織[9],這是腫瘤組織快速增殖所必需的.已有研究顯示,將殼聚糖與葉酸偶聯(lián),可作為 DNA 或RNA 的靶向載體[10-11].

    本文研究的目的是用殼聚糖修飾噻唑橙類衍生物,從而改善噻唑橙熒光染料的水溶性;同時(shí)通過偶聯(lián)葉酸,特異識(shí)別葉酸受體過度表達(dá)的腫瘤細(xì)胞,實(shí)現(xiàn)腫瘤細(xì)胞靶向識(shí)別的作用.其合成路線如圖1所示.

    圖1 TO-COOH-CTS-Folate反應(yīng)示意圖

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 主要原料和儀器

    所用試劑均為市售分析純,薄層色譜所用硅膠(GF254型)為青島海洋化工有限公司產(chǎn)品,熒光分光光度計(jì)為Cary Eclipase(美國瓦里安公司)生產(chǎn),紅外光譜儀 Nicolet380(美國熱電集團(tuán)),差熱分析儀為EXSTAR6000 TG/DTA差熱質(zhì)量分析儀(日本SEIKO公司).

    1.2 TO-COOH-CTS的制備

    分別將 100 mg(0.19 mmol)TO-COOH、78 mg(0.38 mmol)N,N-二環(huán)己基碳二亞胺(DCC)、44 mg(0.38 mmol) N-羥基琥珀酰亞胺(NHS)和57 mg(0.57 mmol)的三乙胺加入 20 mL無水 DMSO中,室溫?cái)嚢柚脸示囿w系,然后加入30 mL甲醇,攪拌均勻,冷卻至-5 ℃;向其中加入10 mL含有1 g CTS(相對(duì)分子質(zhì)量<3 000)的 1%醋酸水溶液.在氮?dú)獗Wo(hù)下,60 ℃加熱攪拌反應(yīng).反應(yīng)停止后,加入乙醚萃取,下層溶液用 100 mL丙酮沉淀,過濾,甲醇洗滌沉淀物,干燥,得到 500 mg的紅色固體.其他條件的實(shí)驗(yàn)操作如上所述.

    1.3 TO-COOH-CTS制備工藝的優(yōu)化

    1.3.1 TO和TO-CTS的紫外吸收及CTS修飾后TO相對(duì)量的確定

    為確定CTS修飾后的TO的濃度與吸光度的定量關(guān)系,首先要確定TO與TO-CTS的相關(guān)性.采用紫外掃描光譜確定其相互關(guān)系,結(jié)果如圖2所示.

    由圖2可知:TO與TO-CTS具有相同的紫外吸收特征,波形一致,說明CTS對(duì) TO的紫外吸收沒有產(chǎn)生影響,因此可通過 TO的紫外吸收強(qiáng)度與濃度的線性關(guān)系來確定CTS修飾后的染料中所含TO的相對(duì)量.

    圖2 熒光染料紫外吸收光譜

    1.3.2 TO-COOH標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    稱取 TO-COOH 5 mg,置于 100 mL容量瓶中,用二甲基亞砜(DMSO)溶解并稀釋到刻度;分別取10.0,6.0,5.0,4.0,3.0,2.0 mL 置于 10 mL 容量瓶中,用 DMSO稀釋到刻度,以 DMSO溶液為空白,用紫外分光光度計(jì)在 507 nm 處測(cè)定吸光度.以 TOCOOH濃度對(duì)吸光度做標(biāo)準(zhǔn)曲線.

    1.3.3 偶聯(lián)比的計(jì)算

    取制得的TO-COOH-CTS 5 mg溶于水中,用水定溶至10 mL,然后在507 nm處測(cè)定紫外吸光度,計(jì)算每毫克CTS上偶聯(lián)的TO-COOH毫克數(shù).偶聯(lián)比(GR)的計(jì)算公式為

    式中:m為通過標(biāo)準(zhǔn)曲線折算出的 5 mg復(fù)合物中含有的TO-COOH的質(zhì)量.

    1.4 TO-COOH-CTS-Folate的合成

    將葉酸 1.5 g(1.7 mmol)、DCC 1.4 g(3.4 mmol)、NHS 780 mg(3.4 mmol)和1 mL的三乙胺溶于70 mL無水DMSO中,避光過夜攪拌,直至葉酸溶解,過濾除去副產(chǎn)物;向其中加入40 mL含有360 mgTO-COOHCTS的水溶液,氮?dú)獗Wo(hù),50 ℃加熱攪拌 24 h;停止反應(yīng),過濾,濾餅用pH=7.4的緩沖溶液洗滌,丙酮洗滌,干燥,得到400 mg紅色固體.

    2 結(jié)果與討論

    2.1 TO-COOH-CTS的結(jié)構(gòu)表征

    通過紅外光譜(IR)和差熱分析(DTA),對(duì)制得的TO-COOH-CTS和 TO-COOH-CTS-Folate的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征.

    2.1.1 TO-COOH-CTS的紅外光譜

    采用紅外光譜對(duì)TO-COOH-CTS的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,結(jié)果如圖3所示.

    圖3 CTS、TO-CTS、TO的紅外光譜

    由圖3可知:在 3 448 cm-1左右為殼聚寡糖中O—H基的伸縮振動(dòng)峰和N—H基的伸縮振動(dòng)峰重疊而成的多重吸收峰;在 1 643 cm-1左右為殼聚糖上氨基的特征吸收峰;在 1 519,1 470,1 547 cm-1左右為TO內(nèi)的芳環(huán)骨架振動(dòng)峰;在CTS和TO-COOH物理混合物(CTS+TO-COOH)的紅外譜圖中也有以上特征峰;但 TO-COOH-CTS的紅外光譜曲線中吸收峰1 504,1 464,1 550 cm-1為芳環(huán)骨架振動(dòng);在 754 cm-1處出現(xiàn)新的吸收峰,是六元環(huán)內(nèi)氫鍵的骨架振動(dòng)峰.

    2.1.2 TO-COOH-CTS的差熱分析譜圖

    采用差熱分析對(duì)TO-COOH-CTS的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,結(jié)果如圖4所示.

    圖4 CTS、TO-CTS、TO的差熱分析曲線

    由圖4可知:①CTS的熱分解可分為二個(gè)階段,第一步分解在 30~80 ℃,主要是脫去所帶的部分水分;第二步是在200~400 ℃,在220 ℃左右出現(xiàn)一個(gè)小的吸熱峰,當(dāng)溫度升至 280 ℃左右時(shí)出現(xiàn)大量放熱,峰形變寬而高.②在TO-COOH的DTA曲線中,在 30~80 ℃范圍內(nèi)時(shí),TO-COOH 脫水的吸熱峰很小,在160 ℃左右和185 ℃又出現(xiàn)兩個(gè)小的特征吸熱峰.③接枝后的產(chǎn)物的DTA曲線明顯不同于CTS和TO-COOH 的,其在 276 ℃左右時(shí)出現(xiàn)較強(qiáng)的放熱峰,CTS放熱峰在 283 ℃;而且在 185 ℃時(shí) TOCOOH的特征吸熱峰消失;同時(shí),TO-COOH-CTS在229 ℃時(shí)出現(xiàn)了新的吸熱峰.

    結(jié)合圖3和圖4可知,CTS和TO-COOH不是簡單的物理混合,殼聚糖已與羧基噻唑橙反應(yīng)形成了復(fù)合物.

    2.2 反應(yīng)條件對(duì)偶聯(lián)比的影響

    根據(jù) TO-COOH-CTS的制備條件,選擇反應(yīng)溫度、反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)底物用量等對(duì)偶聯(lián)比有影響的因素分別進(jìn)行研究.

    2.2.1 反應(yīng)時(shí)間對(duì)偶聯(lián)比的影響

    保持原料投量和反應(yīng)溫度不變,改變反應(yīng)時(shí)間,測(cè)定偶聯(lián)比隨反應(yīng)時(shí)間變化的曲線,結(jié)果如圖5所示.

    圖5 偶聯(lián)比隨時(shí)間的變化曲線

    由圖5可知:開始時(shí),反應(yīng)物濃度較大,反應(yīng)進(jìn)行的較快,所以偶聯(lián)比隨反應(yīng)時(shí)間的延長先增加,當(dāng)反應(yīng)達(dá)到 5 h時(shí),偶聯(lián)比達(dá)到最大;繼續(xù)延長反應(yīng)時(shí)間,隨著接枝鏈TO-COOH-CTS的不斷增長,體系黏度變大,單體難以擴(kuò)散到接枝活性中心,致使偶聯(lián)比開始減小;當(dāng)反應(yīng)時(shí)間達(dá) 12 h后,反應(yīng)速率減緩,偶聯(lián)比趨于平穩(wěn).

    2.2.2 反應(yīng)溫度對(duì)偶聯(lián)比的影響

    保持原料投量和反應(yīng)時(shí)間不變,改變反應(yīng)溫度,測(cè)定偶聯(lián)比隨反應(yīng)溫度的變化曲線,結(jié)果如圖6所示.

    圖6 偶聯(lián)比隨反應(yīng)溫度的變化曲線

    由圖6可知:此反應(yīng)在室溫條件下就可以進(jìn)行,偶聯(lián)比隨溫度升高先增大,當(dāng)反應(yīng)溫度達(dá)到 95 ℃左右時(shí),偶聯(lián)比達(dá)到最大,隨后趨于減小.這是因?yàn)闇囟壬邥r(shí),單體運(yùn)動(dòng)能力增強(qiáng),使 TO-COOH單體易于擴(kuò)散至 CTS附近,有利于接枝;而溫度過高時(shí),反應(yīng)體系不穩(wěn)定,不利于反應(yīng)進(jìn)行.

    2.2.3 CTS與TO-COOH的比例對(duì)偶聯(lián)比的影響

    保持反應(yīng)時(shí)間和反應(yīng)溫度不變,改變投料比例,測(cè)定偶聯(lián)比隨CTS與TO-COOH的比例變化曲線,結(jié)果如圖7所示.

    圖7 偶聯(lián)比隨CTS與TO-COOH比例的變化曲線

    由圖7可知:偶聯(lián)比隨著CTS與TO-COOH比例的減少而增加,當(dāng) CTS與 TO-COOH的摩爾比值小于 10∶1以后,接枝率的增加趨于平緩(CTS的分子質(zhì)量按每個(gè)結(jié)構(gòu)單元的 161 g/mol計(jì)算).因?yàn)殡S著 TO-COOH比例的增加,TO-COOH的濃度相應(yīng)增加,其擴(kuò)散速度加快,偶聯(lián)比增加;而隨著反應(yīng)進(jìn)行程度的不斷加深,體系黏度會(huì)增大,TO-COOH向接枝鏈的擴(kuò)散受阻,從而使接枝鏈增加緩慢;當(dāng) TOCOOH的量增至一定值后,偶聯(lián)比趨于一穩(wěn)定值.綜合考慮,以CTS與TO-COOH的摩爾比值等于10∶1為最佳.

    2.3 TO-COOH-CTS的熒光分析

    采用熒光光譜法對(duì)所制備的染料衍生物進(jìn)行光譜測(cè)定,結(jié)果如圖8所示.

    圖8 TO-COOH和TO-COOH-CTS的熒光光譜

    由圖8可知:相同 TO濃度的 TO-COOH-CTS與 TO-COOH相比,熒光最大發(fā)射波長無明顯變化,而熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng),熒光量子效率也有明顯的提高.這是因?yàn)門O-COOH-CTS中CTS部分的空間阻礙作用在一定程度上限制了 TO分子的旋轉(zhuǎn)角度,改變了 TO分子的空間構(gòu)象,進(jìn)而使 TO-COOH-CTS的熒光強(qiáng)度發(fā)生變化.關(guān)于TO-COOH與CTS及細(xì)胞的多重相互作用關(guān)系正在研究中.

    2.4 TO-COOH-CTS-Folate的紅外光譜

    采用紅外光譜法對(duì)TO-COOH-CTS-Folate的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,結(jié)果如圖9所示.

    圖9 TO-COOH-CTS、Folate、TO-COOH-CTS-Folate的紅外光譜

    由圖9可知:在 TO-COOH-CTS的紅外光譜曲線中,1 504,1 464,1 550 cm-1處為芳環(huán)骨架振動(dòng),1 643 cm-1為 CTS上—NH2的彎曲振動(dòng)吸收峰;葉酸的紅外譜圖中,3 415 cm-1左右為—OH和—NH2的伸縮振動(dòng)峰,1 693 cm-1為羧基中 C=O 的特征峰;在TO-COOH-CTS和葉酸的物理混合物(Folate+TOCOOH-CTS)的紅外譜圖中也有以上特征峰,但在葉酸偶聯(lián)TO-COOH-CTS的紅外譜圖中,在1 655 cm-1處新出現(xiàn)了一個(gè)酰胺鍵中 C=O的特征峰;在3 420 cm-1左右的特征峰與葉酸相比有偏移現(xiàn)象,而且 TO-COOH-CTS-Folate中,葉酸羧基中 C=O的特征峰也消失.以上區(qū)別說明了葉酸已與 TOCOOH-CTS反應(yīng)形成了復(fù)合物.

    2.5 TO-COOH-CTS-Folate的差熱分析

    采用差熱分析對(duì)TO-COOH-CTS-Folate的結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,結(jié)果如圖10所示.

    由圖10可知:在葉酸的DTA曲線中,在130 ℃左右的小峰是脫水的吸熱峰,160 ℃左右為結(jié)晶水的吸熱峰,193 ℃左右出現(xiàn)一特征吸熱峰,當(dāng)溫度升至423 ℃時(shí)峰形變寬,為葉酸的特征吸熱峰,溫度升到442 ℃左右時(shí)出現(xiàn)放熱,峰形變高而尖;在TO-CTS的曲線中,220 ℃時(shí)出現(xiàn)一特征吸熱峰,在276 ℃左右時(shí)出現(xiàn)較強(qiáng)的放熱峰,峰形高而寬;而接枝后的產(chǎn)物的曲線明顯不同于葉酸和TO-COOH-CTS,其在295℃左右出現(xiàn)放熱峰,且峰形變平緩,TO-CTS放熱峰在277 ℃,峰形高而寬,而且在193 ℃處葉酸的特征吸熱峰消失,在385 ℃左右出現(xiàn)寬而低的吸熱峰,葉酸的放熱峰在423 ℃左右.同時(shí),TO-COOH-CTSFolate在465 ℃左右時(shí)出現(xiàn)了新的吸熱峰.以上區(qū)別說明了葉酸和TO-COOH-CTS不是簡單的物理混合,而是葉酸已與TO-COOH-CTS反應(yīng)形成了復(fù)合物.

    2.6 細(xì)胞標(biāo)記的研究

    用 TO-COOH、TO-COOH-CTS和 TO-COOHCTS-Folate對(duì)TJ905細(xì)胞標(biāo)記24 h后的照片如圖11所示.

    由圖11可知:TO在細(xì)胞核中表現(xiàn)出較好的熒光性能,但細(xì)胞質(zhì)中沒有熒光;TO-CTS在細(xì)胞膜和細(xì)胞核中均表現(xiàn)出了較好的熒光性能,TO-CTS在細(xì)胞染色過程中沒有對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生毒性,同時(shí)修飾后的染料可透過細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部,表現(xiàn)出比 TO更強(qiáng)的熒光現(xiàn)象;TO-COOH-CTS-Folate與 TO的標(biāo)記情況相似,同樣在細(xì)胞核中表現(xiàn)出較好的熒光性能,而細(xì)胞質(zhì)中沒有熒光.

    3 結(jié) 論

    TO-COOH作為噻唑橙的一種衍生物,具有獨(dú)特的熒光特性,將殼聚糖引入,對(duì) TO進(jìn)行修飾設(shè)計(jì),合成了TO-COOH-CTS,其結(jié)構(gòu)經(jīng)過IR、DTA確認(rèn).熒光光譜研究表明,TO-COOH-CTS與 TO-COOH相比具有明顯的熒光增強(qiáng)效應(yīng).將葉酸接枝到 TO-COOH-CTS 上,得到了 TO-COOH-CTS-Folate,細(xì)胞熒光標(biāo)記實(shí)驗(yàn)表明,TO及其衍生物可以穿過細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部,表現(xiàn)出強(qiáng)的熒光現(xiàn)象,并在細(xì)胞生理?xiàng)l件下穩(wěn)定存在.關(guān)于TO與CTS及細(xì)胞的多重作用關(guān)系,以及葉酸對(duì)腫瘤細(xì)胞的靶向作用的研究尚在進(jìn)行中.

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