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    三重RT-PCR快速檢測多種馬鈴薯病毒的研究

    2010-07-09 13:00:08陳陽婷
    湖南農(nóng)業(yè)科學(xué) 2010年11期
    關(guān)鍵詞:條帶馬鈴薯測序

    陳陽婷 ,寧 紅 ,張 敏

    (1.成都農(nóng)林科學(xué)院園藝研究所,四川 成都 610072;2.四川省植物檢疫站,四川 成都 610041;3.四川農(nóng)業(yè)大學(xué),四川 雅安 625014)

    快速診斷馬鈴薯病毒病是種薯品質(zhì)鑒定的重要內(nèi)容。在我國,主要的馬鈴薯病毒種類有馬鈴薯X病毒(Potato virus X,PVX),馬鈴薯Y病毒(Potato virus Y,PVY),馬鈴薯卷葉病毒(Potato leaf roll virus,PLRV),馬鈴薯 A 病毒(Potato virus A,PVA)及馬鈴薯S病毒(Potato virus S,PVS)。對生產(chǎn)影響最大的病毒是PVY和PLRV,其次是PVX和PVA,PVS影響較小[1]。通過3 a田間調(diào)查及分子檢測,發(fā)現(xiàn)在四川地區(qū),PVX、PVS、PVA及PLRV往往復(fù)合侵染,迫切需要經(jīng)濟方便的多重檢測方法。本研究設(shè)計了這4種病毒的引物,從退火溫度、反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)中dNTPs濃度、PCR反應(yīng)中Mg2+濃度、循環(huán)條件4方面優(yōu)化反應(yīng)條件。優(yōu)化后的三重RT-PCR反應(yīng)體系,可以同時檢測田間復(fù)合侵染的3種馬鈴薯病毒。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    從田間采集感染有馬鈴薯病毒的發(fā)病植株,以ELISA方法確定病毒種類,分別將PVX、PVS、PLRV和PVA混合接種于防蟲溫室內(nèi)種植的健康馬鈴薯植株上,以植物組織培養(yǎng)室內(nèi)經(jīng)過莖尖脫毒的馬鈴薯組培苗作為陰性對照。

    1.2 病毒RNA的提取

    采用北京TIANGEN生化科技有限公司的RNAprep Plant Kit試劑盒提取帶毒馬鈴薯植株的總RNA作為待測的病毒RNA。

    1.3 cDNA的合成

    根據(jù) PVX、PVS、PVA以及 PLRV的基因組RNA保守序列設(shè)計特異性引物對(表1)。反轉(zhuǎn)錄體系(20 μL):病毒總 RNA 2.5 μL,20 pmol/L 病毒下游引物各0.5 μL,5×MMLV buffer(MBI)4 μL,20 U/μL RNA 抑制劑 (Rnasin,MBI)0.5 μL,200 U/μL MMLV 反轉(zhuǎn)錄酶(MMLV RT,MBI)1 μL,dNTPs分別選用 0.5、1、1.5 mmol/L,DEPC 處理水補足 20 μL。反轉(zhuǎn)錄條件:42℃ 30 min,94℃ 5 min,4℃保存。擴增反應(yīng)在eppendorf PCR擴增儀中進行。

    表1 用于RT-PCR反應(yīng)的4種馬鈴薯病毒引物對

    1.4 PCR反應(yīng)

    RCR 體系(總體積 25 μL):取 4 μL合成的cDNA 作為反應(yīng)模板,10×PCR buffer(BioBRK)2.5 μL,5 u/μL Taq DNA 聚合酶 (BioBRK)0.5 μL,10 mmol/L dNTP 0.5 μL,MgCl2分 別 選 用 2.5、3、3.5 mmol/L,20 pmol/L 4種病毒上游引物和下游引物各1 μL,雙蒸水補足 25 μL。退火溫度從 57℃設(shè)到61℃;PCR反應(yīng)條件是94℃變性30 s,60℃退火30 s,72℃延伸 1 min,設(shè)置為 30 個循環(huán)、35 個循環(huán)、40個循環(huán)、45個循環(huán),最后72℃延伸10 min;PCR反應(yīng)在eppendorf PCR擴增儀中進行。PCR反應(yīng)結(jié)束后,取出擴增產(chǎn)物5 μL進行瓊脂糖凝膠電泳檢測。

    1.5 三重RT-PCR的組合

    三重 RT-PCR檢測 PVX、PVS、PVA和 PLRV共有 4種組合方式,分別是:(1)PVX、PVS和 PVA;(2)PVX、PVS 和 PLRV;(3)PVX、PVA 和 PLRV;(4)PVS、PVA和PLRV。每一種組合的反應(yīng)體系都從dNTPs濃度對反體轉(zhuǎn)錄的影響、退火溫度對PCR的影響、Mg2+濃度對PCR的影響和反應(yīng)程序?qū)CR的影響4個方面進行優(yōu)化。

    1.6 RT-PCR產(chǎn)物的克隆和測序

    RT-PCR產(chǎn)物切膠回收后,按標(biāo)準方法克隆到PGM-T中,PCR法篩選陽性菌落,提取質(zhì)粒DNA,酶切驗證后分別測序(上海英俊生物技術(shù)有限公司)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 反轉(zhuǎn)錄(RT)

    反轉(zhuǎn)錄體系中dNTPs濃度為0.5、1、1.5 mmol/L時,對三重RT-PCR同時檢測PVX、PVA和PLRV的影響如圖1-A所示,當(dāng)dNTPs小于1 mmol/L,PVA擴增靶帶很弱;當(dāng)dNTPs濃度為1~1.5 mmol/L時能擴增出PVX、PVA、PLRV這3種病毒的靶標(biāo)條帶;當(dāng)dNTPs濃度為1.5 mmol/L時,擴增效果最好。三重RT-PCR同時檢測PVS、PVA和PLRV的影響如圖1-B所示,dNTPs濃度為0.5~1.5 mmol/L都能擴增出3種病毒條帶。

    圖1 dNTPs濃度的優(yōu)化

    本試驗采用的是兩步法二重RT-PCR,首先反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,然后取一部分cDNA進行PCR擴增。如果反轉(zhuǎn)錄沒有合成cDNA或合成的較少,將直接影響到PCR擴增的效果,所以反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)相對較為重要[1]??芍?,dNTPs濃度是影響反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)重要的因素。

    2.2 聚合酶鏈式反應(yīng)(PCR)

    2.2.1 退火溫度對PCR的影響 如圖2-A所示,退火溫度從58℃到62℃都能同時擴增出PVX、PVS、PLRV 3種病毒;從圖2-B可知,當(dāng)退火溫度達到61℃時,三重RT-PCR僅能擴增出PVS和PVA兩種病毒。當(dāng)退火溫度為60℃時,病毒的三條靶標(biāo)條帶清晰且亮度高,擴增效果最好。所以,退火溫度對PCR也有一定的影響。

    圖2 退火溫度的優(yōu)化

    2.2.2 Mg2+濃度對PCR的影響 PCR體系中Mg2+濃度為2.5、3.0、3.5 mmol/L時,對三重RT-PCR同時檢測PVA、PVY和PLRV的影響如圖3-A所示,當(dāng)Mg2+濃度為2.5 mmol/L時,無法擴增出PVA,只能擴增出PVS和PLRV的靶標(biāo)條帶;當(dāng)Mg2+濃度增為3 mmol/L,能同時擴增出PVS、PVA、PLRV 3種病毒的靶標(biāo)條帶;再繼續(xù)增大Mg2+濃度,對3種病毒的擴增效果不好。如圖3-B所示,Mg2+濃度為2.5、3.0、3.5 mmol/L 時,都能同時擴增出 PVX、PVS、PVA的靶標(biāo)條帶,當(dāng)Mg2+濃度增為3 mmol/L,擴增效果最好。因此,Mg2+濃度對PCR擴增的影響較大。

    圖3 MgCl2濃度的優(yōu)化

    2.3 反應(yīng)程序

    如圖4-A所示,PCR的循環(huán)數(shù)從30到45均能同時擴增出PVX、PVS和PVA,但是當(dāng)循環(huán)數(shù)目小于30時,PVA的目的條帶不明顯;當(dāng)循環(huán)數(shù)目大于40時,PVA的目的條帶非常微弱;效果較好的是35個循環(huán)。從圖4-B,可知PCR的循環(huán)數(shù)從30到45均能同時擴增出PVX、PVA和PLRV,擴增效果差異不大??偟膩碚f,反應(yīng)程序?qū)φ麄€反應(yīng)影響不大。

    圖4 循環(huán)次數(shù)的優(yōu)化

    2.4 RT-PCR產(chǎn)物的克隆及測序

    切膠回收 PVX、PVS、PVA和 PLRV的 RTPCR產(chǎn)物,克隆到PGM-T載體中,通過PCR驗證得到的白色菌落分別含有以上幾種病毒的cDNA,提取質(zhì)粒測序。測序結(jié)果與NCBI BLAST報道的病毒基因序列對比,PLRV的RT-PCR擴增產(chǎn)物的序列與NCBI BLAST報道的相應(yīng)病毒的序列同源性達到100%;PVA的RT-PCR擴增產(chǎn)物的序列與NCBI BLAST報道的PVA病毒的序列同源性達到99%;PVS的RT-PCR擴增產(chǎn)物的序列與NCBI BLAST報道的PVS病毒的序列同源性達到98%;PVX的RT-PCR擴增產(chǎn)物的序列與NCBI BLAST報道的PVX病毒的序列同源性達到96%。

    3 討論

    傳統(tǒng)的指示植物法檢測病毒費時費力且靈敏度低,目前應(yīng)用最廣的是以病毒抗血清為基礎(chǔ)的酶聯(lián)免疫法(ELISA)檢測病毒。ELISA法比傳統(tǒng)的檢測方法靈敏度提高了許多,但存在著假陽性或假陰性現(xiàn)象,也無法區(qū)分因外殼蛋白基因有一定同源性的病毒類型[2],并且不足以檢測含量極少的韌皮部病毒及休眠種薯中的病毒。近年來發(fā)展的反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)方法因其具有靈敏、快速、特異性強等優(yōu)點,在植物病毒的檢測上顯示出強大的優(yōu)勢[3]。在國內(nèi)外已有單一RT-PCR檢測PVY、PLRV、PSTVd等的應(yīng)用。

    在RT-PCR中使用一對以上的引物就稱之為多重RT-PCR,它能夠同時擴增目的DNA中的幾個片段,以節(jié)省模板、時間和減少費用。設(shè)置多重PCR反應(yīng)體系必須確保反應(yīng)中所有的引物有相近的熔解溫度,擴增產(chǎn)物應(yīng)該大小相近但又能夠通過電泳分開。本研究設(shè)計的這4種病毒的引物,基本滿足以上條件;并且從退火溫度、dNTPs濃度、Mg2+濃度、循環(huán)條件4方面優(yōu)化反應(yīng)條件,將其應(yīng)用于同時擴增3種病毒已成功實現(xiàn)。與單重RT-PCR相比,三重RT-PCR更適合于檢測田間復(fù)合侵染的多種病毒,可以大大簡化病毒檢測的工作量,又能進一步降低成本,更有利于馬鈴薯種苗病毒實際檢測,對于生產(chǎn)實踐有著非常重要的意義。研究結(jié)果表明,采用該反應(yīng)程序可以穩(wěn)定性地檢出田間自然感染的幾種主要馬鈴薯病毒。并可以此研究結(jié)果為基礎(chǔ),對反應(yīng)體系做進一步的優(yōu)化,建立四重RTPCR同時檢測多種馬鈴薯病毒的技術(shù)。

    [1]袁 青,殷幼平,王中康.二重RT-PCR快速檢測馬鈴薯病毒的方法[J].植物檢疫,2005,19(3):135-138.

    [2]Jelkmann W,Keimkonrad R.An immuno-capture polymerase chain reaction and plate-trapped ELISA for the detection of apple stem spitting virus[J].Phytopathology,1997,145:499-504.

    [3]李浩戈,吳元華,趙秀香.馬鈴薯Y病毒的RT-PCR檢測[J].沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,1990;30(3):244-246.

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