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    柔肝消飲對(duì)肝硬化大鼠血清Leptin含量以及肝臟Leptin mRNA表達(dá)的影響*

    2010-06-15 06:23:06楊牧祥張一昕于文濤徐華洲
    中國(guó)中醫(yī)急癥 2010年10期
    關(guān)鍵詞:柔肝低劑量肝細(xì)胞

    楊牧祥 張一昕 于文濤 徐華洲 高 瑋 韓 雪

    河北醫(yī)科大學(xué)中醫(yī)學(xué)院(石家莊050091)

    1 材料

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物清潔級(jí)SD大鼠60只,雌雄各半,體質(zhì)量

    180~200g,由華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物學(xué)部提供,動(dòng)物合格證號(hào):SCXK(鄂)2004-007。

    1.2 藥物柔肝消飲組成:由香附、青皮、炙黃芪、炒白術(shù)、白芍、三棱、莪術(shù)、地鱉蟲(chóng)、郁金、姜黃、丹參等藥物組成,水煎濃縮成所需濃度的藥液。復(fù)方鱉甲軟肝片:由內(nèi)蒙古福瑞中蒙藥科技股份有限公司生產(chǎn),批號(hào)國(guó)藥準(zhǔn)字Z19991011,實(shí)驗(yàn)時(shí)用蒸餾水配制成所需濃度的藥液。

    1.3 主要試劑Leptin試劑盒購(gòu)自北京普爾偉業(yè)生物科技有限公司;Trizol RNA試劑盒購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;PCR試劑盒購(gòu)自大連TaKaRa公司。Leptin的引物由北京塞百盛基因技術(shù)有限公司合成,以β-actin為內(nèi)參照。Leptin的上游引物為5'-CCTGTGGCTTTGGTCCTATCTG-3';下游引物為5'-CTGCTCAGAGCCACCACCTCTG-3',擴(kuò)增片段為420bp。β-actin上游引物為5'-CCA AGGCCA ACCGCGAGA AGATGA C-3',下游引物為5'-AGGGTACATGGTGGT GGCGCCAGAC-3',擴(kuò)增片斷長(zhǎng)度為577bp。

    1.4 主要儀器756MC型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)、PE9600型PCR擴(kuò)增儀、電泳儀及電泳槽、凝膠圖像分析系統(tǒng)、紫外透射儀、超低溫保存箱、高速冷凍離心機(jī)等。

    2 方法

    2.1 模型制備60只大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,隨機(jī)分為造模組48只和正常組12只。參照文獻(xiàn)[5-6],48只造模組大鼠首次予皮下注射40%CCl4花生油溶液(0.5mL/100g體質(zhì)量),以后每周2次皮下注射(0.3mL/100g體質(zhì)量),共9周。造模開(kāi)始前2周均以20%豬油、0.5%膽固醇、79.5%玉米面混合飼料(由河北醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心加工)喂養(yǎng),第3~9周以0.5%膽固醇和99.5%玉米面混合飼料(由河北醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心加工)喂養(yǎng)。整個(gè)造模期間以30%乙醇作為飲料讓大鼠自由飲用。正常組則以正常飼料和純凈水喂養(yǎng)。實(shí)驗(yàn)第9周末,確認(rèn)造模成功后予以分組治療。

    2.2 分組與治療造模成功后,正常組隨機(jī)抽取大鼠10只,將造模成功大鼠隨機(jī)抽取40只,并分為4組,每組10只,雌雄各半。即:正常組,灌服生理鹽水;模型組,灌服生理鹽水;柔肝消

    2.3 動(dòng)物取材治療4周末,于最后1次給藥后禁食12h,麻醉狀態(tài)下腹主動(dòng)脈取血,3500r/min離心5min,分離血清待檢。同時(shí)切開(kāi)腹部迅速剖取肝臟,一部分液氮冷凍,一部分用4%多聚甲醛固定。

    2.4 指標(biāo)檢測(cè)

    2.4.1 肝組織病理形態(tài)學(xué)觀察取用4%多聚甲醛固定的大鼠肝組織,常規(guī)石蠟包埋切片,HE染色,光學(xué)顯微鏡觀察。

    2.4.2 血清Leptin的檢測(cè)采用放免法,嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明操作。

    2.4.3 RT-PCR法測(cè)定大鼠肝LeptinmRNA表達(dá) (1)采用Trizol提取總RNA,然后測(cè)定RNA樣品含量及純度:A260/A280=1.8~2.0間方可使用。(2)RT反應(yīng):取總 RNA 2μg,加入RT 反應(yīng)體系(含 AMV Buffer,dNTPs,Oligo dT Primer,AMV,Rnase Inhibitor等)管中,并用DEPC處理水補(bǔ)足到50μL反應(yīng)液體積,震蕩混勻后短暫離心,加少許礦物油于PCR儀50℃ 30min,99℃ 5min,5℃ 5min。-20℃保存?zhèn)溆谩?3)PCR反應(yīng):50μL反應(yīng)體系含Taq DNA聚合酶、dNTPs、上樣染料、穩(wěn)定劑、優(yōu)化劑、反應(yīng)緩沖液、逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)產(chǎn)物、上下游引物等。震蕩混勻后短暫離心,加少許礦物油于PCR儀擴(kuò)增。反應(yīng)條件:變性94℃,30s,退火 61℃,30s,延伸 72℃,30s,30 個(gè)循環(huán),最后延伸 10min。(4)半定量分析:取每個(gè)標(biāo)本的擴(kuò)增產(chǎn)物6μL于1%的含GV核酸染料的瓊脂糖凝膠電泳,以DNA Marker(DL2000)作為標(biāo)準(zhǔn)分子量標(biāo)記,電泳后于紫外透射儀觀察,并用數(shù)碼相機(jī)照相,輸入微機(jī)應(yīng)用法國(guó)VL公司BIO-PROFIF凝膠圖像分析系統(tǒng)對(duì)目的電泳條帶進(jìn)行分析,以相應(yīng)的內(nèi)參電泳條帶作為參照,結(jié)果以兩者之積分吸光度的比值表示。

    2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理數(shù)據(jù)以(±s)表示,運(yùn)用SPSS 11.5統(tǒng)計(jì)軟件,采用方差分析、Student-Newman-Keul檢驗(yàn)。

    3 結(jié)果

    3.1 肝組織病理形態(tài)學(xué)改變正常組大鼠肝組織結(jié)構(gòu)完整、清晰,肝小葉結(jié)構(gòu)正常,肝細(xì)胞排列規(guī)則成索狀,在中央靜脈周圍呈放射狀分布。肝血竇結(jié)構(gòu)清晰,無(wú)異常改變。肝細(xì)胞呈多邊形,胞漿均勻,細(xì)胞核形態(tài)正常。模型組大鼠肝小葉正常結(jié)構(gòu)消失,間質(zhì)內(nèi)彌漫性淋巴細(xì)胞浸潤(rùn)。肝細(xì)胞體積明顯增大,局部肝細(xì)胞出現(xiàn)嚴(yán)重的脂肪變性,可見(jiàn)到再生的肝細(xì)胞(雙核)。肝間質(zhì)廣泛纖維組織增生,將正常肝小葉分割成大小不等的肝細(xì)胞團(tuán)(即假小葉形成)。高劑量組大鼠肝小葉結(jié)構(gòu)輕度受損,少數(shù)肝細(xì)胞氣泡樣變性,偶見(jiàn)壞死細(xì)胞,較少炎性細(xì)胞浸潤(rùn),少量纖維組織增生,但未見(jiàn)形成間隔。低劑量組肝小葉結(jié)構(gòu)被破壞,部分肝細(xì)胞氣泡樣變性并伴有細(xì)胞壞死,較多淋巴、單核細(xì)胞浸潤(rùn),纖維組織增生,但較少形成間隔。陽(yáng)性藥對(duì)照組與低劑量組基本相似。

    見(jiàn)表1。與正常組相比,模型組大鼠血清Leptin的含量異常升高 (P<0.01),給藥后,各治療組均能顯著降低血清Leptin的含量(P<0.01),且柔肝消飲高劑量組Leptin的含量低于低劑量組和對(duì)照組(P<0.01),而柔肝消飲低劑量組與陽(yáng)性藥對(duì)照組之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    見(jiàn)表1、圖1、圖2。RT-PCR后,瓊脂糖凝膠電泳,在420bp、577bp處分別顯示出Leptin和β-actin電泳帶,與預(yù)期結(jié)果一致。模型組大鼠Leptin mRNA的表達(dá)顯著高于正常組 (P<0.01)。給藥后,各治療組Leptin mRNA的表達(dá)顯著低于模型組(P <0.01),柔肝消飲高劑量組Leptin mRNA的表達(dá)低于柔肝消飲低劑量組和陽(yáng)性藥對(duì)照組(P<0.05),而柔肝消飲低劑量組與陽(yáng)性藥對(duì)照組之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    表1 各組大鼠血清Leptin含量和肝組織Leptin mRNA的表達(dá)情況(±s)

    表1 各組大鼠血清Leptin含量和肝組織Leptin mRNA的表達(dá)情況(±s)

    與模型組比較,*P<0.01;與陽(yáng)性藥對(duì)照組比較,△P<0.05,△△P<0.01;與柔肝消飲高劑量組比較,▲P<0.05,▲▲P <0.01

    組別正常組模型組柔肝消n飲高劑量組柔肝消飲低劑量組陽(yáng)性藥對(duì)照組10 10 10 10 10 Leptin(ng/mL)0.54±0.09*2.08±0.29 0.99±0.14*△△1.38±0.25*▲▲1.52±0.19*Leptin/β-actin mRNA 0.285±0.023*1.212±0.109 0.649±0.594*△0.818±0.123*▲0.857±0.114*

    圖1

    圖2

    4 討論

    Leptin是由肥胖基因編碼的一種多肽類激素,除全身的脂肪組織外,肝臟、胃黏膜、胎盤(pán)、胎兒心臟、骨骼肌、骨及軟骨組織等均可以分泌Leptin[7]。Letin受體分布廣泛,是一種多靶器官、多功能的激素,具有廣泛的生物學(xué)效應(yīng),它參與糖、脂肪及能量代謝的調(diào)節(jié),促使機(jī)體攝食減少,增加能量釋放,抑制脂肪細(xì)胞的合成,抑制胰島素的分泌[8]。自 Potter等[9]發(fā)現(xiàn)活化的肝星狀細(xì)胞(HSCs)中Leptin mRNA和蛋白質(zhì)合成增加之后,Leptin與肝臟疾病的關(guān)系逐漸引起重視。大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)證明,瘦素可通過(guò)調(diào)節(jié)HSC對(duì)細(xì)胞因子及膠原的表達(dá)促進(jìn)肝纖維化進(jìn)程[10]。Bolukbas等[11]發(fā)現(xiàn)進(jìn)展期肝病患者的血清Leptin水平明顯升高。近年來(lái)研究顯示:慢性肝病時(shí)激活的HSCs產(chǎn)生Leptin,Leptin又進(jìn)一步促進(jìn)HSCs的增殖與活化,導(dǎo)致Letin水平明顯升高。Leptin通過(guò)與庫(kù)普弗細(xì)胞、SECs上的瘦素受體結(jié)合,提高庫(kù)普弗細(xì)胞、肝竇內(nèi)皮細(xì)胞中細(xì)胞因子TGF-β1的表達(dá),導(dǎo)致膠原的大量產(chǎn)生及肝硬化的形成[4]。

    肝硬化根據(jù)臨床表現(xiàn)可歸屬于中醫(yī)學(xué)“脅痛”、“積聚”、“臌脹”等范疇。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為本病多由酒食不節(jié),損傷脾胃,脾失健運(yùn),壅阻氣機(jī),肝失條達(dá),氣血郁滯,或情志抑郁,肝失疏泄,氣郁日久,血流不暢,瘀血停積,脅絡(luò)痹阻所致。其病位在肝脾兩臟,主要病機(jī)為肝郁脾虛、氣滯血瘀。故當(dāng)以疏肝健脾,行氣活血,逐瘀消為主要治法。課題組經(jīng)多年臨床觀察,精心篩選相關(guān)藥物組成“柔肝消飲”。方中香附、青皮疏肝理氣,炙黃芪、炒白術(shù)健脾益氣,四藥相合,共達(dá)抑肝扶脾之效;炙黃芪、炒白術(shù)益氣健脾;三棱、莪術(shù)、地鱉蟲(chóng)、丹參、郁金、姜黃破血行氣,逐瘀消;白芍養(yǎng)血柔肝,既可助香附、青皮疏肝解郁之力,又可防止破血太過(guò)之弊;諸藥合用,共奏疏肝健脾,行氣活血,逐瘀消之功效。

    本實(shí)驗(yàn)研究表明,模型組大鼠血清Leptin含量異常升高,肝臟Leptin mRNA表達(dá)明顯增強(qiáng)(P<0.01),顯示肝硬化的發(fā)生與發(fā)展與Leptin的分泌與釋放有密切關(guān)系。經(jīng)過(guò)治療,各治療組大鼠血清Leptin含量明顯降低,肝臟Leptin表達(dá)減弱,說(shuō)明柔肝消飲通過(guò)抑制HSCs分泌Leptin,以達(dá)到抗肝硬化的作用,這可能是其治療肝硬化的分子機(jī)制之一。

    [1]楊牧祥,張一昕,王少賢,等.柔肝消飲對(duì)肝硬化大鼠肝功能的影響[J]. 中醫(yī)藥通報(bào),2007,6(3):58-59.

    [2]楊牧祥,張一昕,王少賢,等.柔肝消飲對(duì)肝硬化大鼠肝組織病理形態(tài)學(xué)和肝細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)的影響 [J].中西醫(yī)結(jié)合肝病雜志,2008,18(1):38-42.

    [3]鄭吉敏,姜慧卿,李芳,等.肝硬化患者血清瘦素水平變化及相關(guān)因素分析[J]. 山東醫(yī)藥,2008,48(40):10-11.

    [4]張宏力,趙東強(qiáng),王和.瘦素與肝硬化 [J].臨床薈萃,2009,29(8):729-730.

    [5]李儀奎,王欽茂,周金黃.中藥藥理實(shí)驗(yàn)方法學(xué)[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1991:463-464.

    [6]陳奇.中藥藥理研究方法學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,1991:458.

    [7]Levin N, Nelson C, Gurney A, et al.Decreased food intake does not completely account for adiposity reduction after ob protein infusion[J].Proc Natl Acad Sci,1996,93(4):1726-1730.

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    [9]Lin J, Barb CR, Matteri RL, et al.Long form leptin receptor mRNA expression in the brain, pituitary, and other tissues in the pig[J].Domest Anim Endocrinol,2000,19(1):53-61.

    [10]白平平,樸云峰.瘦素與肝星狀細(xì)胞[J].臨床肝膽病雜志,2006,22(6):461-462.

    [11]Bolukbas FF,Bolukbas C,Horoz M,et al.Child-Pugh classification dependent alterations in serum leptin levels among cirrhotic patients:a case controlled study [J].BMC Gastroenterol,2004,4(1):23.

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