運動與骨代謝動物實驗研究進展

馬　濤　李世昌　鄭慶云

摘要：動物實驗是運動生物科學的重要研究方法和途徑，其伴隨著運動生物科學的不斷發(fā)展而發(fā)展。動物實驗可以較好地控制影響因素，既可以對實驗動物整體水平的綜合反應進行研究，也可以對實驗動物局部組織和器官進行離體研究，從而克服了人體實驗多方面的局限性。隨著新型測量技術的出現和生命科學研究方法的深入，運動與骨代謝研究的動物模型的復制方法、觀察指標和研究領域在不斷發(fā)展，將在骨質疏松的防治及骨健康相關問題的解決中發(fā)揮積極作用。

關鍵詞：骨代謝；動物實驗；動物模型；運動方式；綜述

中圖分類號：G804文獻標識碼：A文章編號：1006-7116(2009)06-0107-06

Developments in researches on animal experiments of

exercise-related bone metabolism

MA Tao1，LI Shi-chang2，ZHENG Qing-yun2

（1.Department of Physical Education and Defence Studies，Zhejiang University of Technology，Hangzhou 310014，China；2.School of Physical Education and Health，East China Normal University，Shanghai 200241，China）

Abstract: Animal experiment is an important research method and way in sports bioscience, developing with the constant development of sports bioscience. Animal experiment can well control affecting factors, be used to study either the comprehensive reactions of the entire body of the experimented animals, or local tissues and organs of the experimented animals in vitro, thus overcome various limitations of human experiments. With the appearance of new measurement technologies and the development of life science research methods, the duplicating methods, observation indexes and research areas in relation to animal models for researches on exercise-related bone metabolism are constantly developing; researches on exercise-related bone metabolism will play an active role in preventing osteoporosis and solving bone health related problems.

Key words: bone metabolism；animal experiment；animal model；exercise mode；overview

目前骨質疏松癥已成為世界范圍的、越來越引起人們重視的健康問題，而且已被世界衛(wèi)生組織列為中老年3大疾病之一。骨質疏松癥不僅使人類生活質量明顯降低，同時給社會經濟造成巨大的負擔，因此世界各國都在大力支持骨質疏松的防治研究[1]。研究顯示，適宜的運動可以有效地增加峰值骨量、減緩隨年齡增長而發(fā)生的骨質疏松。運動與骨骼系統和骨代謝的研究，過去由于受實驗方法和檢測手段的限制，只是在骨量、骨代謝生化標志物及其他無創(chuàng)性指標方面研究較多。20世紀后期，隨著動物實驗的開展以及骨分子生物學、生物化學、組織形態(tài)學、骨密度測量學和生物力學方法的應用，運動與骨代謝的研究進入了一個全新的領域。

1運動與骨代謝研究中的動物模型

正確選擇和建立理想的骨代謝實驗動物模型，是開展運動與骨代謝研究工作的基礎。骨代謝動物模型的制備在方法上應盡量模擬臨床致病因素，以期在發(fā)病機理、運動干預等方面獲得科學的數據。

1.1卵巢切除(OVX)和睪丸切除(ORX)模型

OVX模型于1969年由Saville建立，目前已被公認為研究絕經后婦女骨質疏松癥的“gold standard”模型。盡管去卵巢成年大鼠模型有許多優(yōu)點，但考慮到其主要反映婦女絕經后骨質疏松早期階段的骨丟失與骨代謝特點，并且骨質疏松癥是一個與年齡有關的疾病，所以不能完全替代老年大鼠模型。ORX模型是研究男性骨代謝的常用動物模型。OVX模型在運動骨代謝相關研究中得到廣泛應用，利用ORX模型研究運動干預效果的報道較少，是一項具有研究前景的課題。

1.2廢用性模型

廢用性骨丟失模型，是指人工方法使動物部分肢體處于不負重狀態(tài)而建立的活體模型。由于動物肢體的骨量和骨代謝與載重、肌肉活動、神經血管對肌肉和骨的營養(yǎng)等因素密切相關，對臨床上研究有重要的意義。機械固定法骨質疏松模型可用于模擬研究長期臥床、骨折固定及截去一側部分下肢拄拐行走病人的骨代謝變化；懸吊法常用于模擬航天航空人員失重研究，即將動物尾部懸吊，雙后肢懸空，讓動物靠兩前肢負重并在一定范圍內活動的方法。以上兩種造型方法既可研究固定肢失重時骨丟失變化，又可研究承重肢超重時骨代謝變化，去除固定因素后還能觀察其恢復過程，對運動損傷的康復有一定的參考價值。另外，手術切除動物一側坐骨神經或一側膝鍵甚至跟鍵也能成功復制廢用性骨質疏松模型[2]。

1.3藥物性模型

最常用的藥物有糖皮質激素、維甲酸、肝素、酒精等。糖皮質激素可造成成骨細胞減弱、破骨細胞增強，對研究人類糖皮質激素引起的繼發(fā)性及男性OP(骨質疏松)有重要意義，尤其在體育鍛煉與骨質疏松關系的研究中能獲得滿意效果。維甲酸對骨代謝有明顯影響，其制作模型所需時間短，在發(fā)病癥狀、組織形態(tài)學表現以及對雌激素的骨反應上與人類有較大的相似性，是大鼠急性骨質疏松的有效造模方法。酗酒、過量應用甲狀旁腺激素及抗凝藥物如肝素等，均可誘發(fā)骨質減少改變，但能否達到OP標準，有待進一步探索。

1.4營養(yǎng)性模型

通過限制飲食中的鈣、維生素D，增加磷的攝入，可使骨密度下降，血鈣、磷濃度上升，尿鈣增加，來復制骨吸收增加模型。由于其飼料配方復雜，且影響因素較多，難以普及推廣，往往作為一種輔助方法，目前結合運動干預的研究較少。

1.5增齡模型

雄鼠增齡模型1993年由Vanders Chueren提出，現在已得到了初步應用[3]。Ke等[4]將快速生長期的SD雄鼠予以ORX處理，其中假手術組反映了增齡對雄性大鼠骨骼的影響，結果發(fā)現12～23月齡出現明顯的與年齡相關的骨量減少。這種因增齡引發(fā)的骨代謝失衡動物模型，也許更適合于進一步研究雄激素和雌激素對男性骨骼的調節(jié)功能以及開發(fā)新的防治男性骨質疏松藥物和運動干預方法。

1.6轉基因模型

近年來，小鼠用于骨基因調控方面的研究引起人們的關注。華盛頓大學的Lewis等發(fā)現基因工程小鼠(IL-4基因)的骨架發(fā)育正常，但出生后骨質開始喪失，提示IL-4可以降低新骨的產生。研究將淋巴細胞特異性近中啟動子應用于1ck基因造成小鼠異常表達IL–-4，出現了駝背、骨質變細及成骨細胞活性降低等表現，建立了小鼠OP模型。日本Jackson實驗室1970年從AKR/J小鼠培育成SAM小鼠，12個品系中9 個品系為SAM小鼠，3個為SAMR小鼠。其中SAMR小鼠為衰老小鼠，老化較正常小鼠快，有低峰值骨量和中老年骨折的發(fā)生趨向[5]。目前利用轉基因模型進行運動干預的研究尚未見報道。

2運動與骨代謝研究中動物的運動方式

2.1游泳訓練

游泳是運動與骨代謝動物實驗中運動負荷的主要手段之一，通常把大鼠作為游泳運動的研究對象，有時小鼠也被用作游泳運動的研究對象。動物在接受游泳訓練時，不會產生強烈的抵觸情緒，所需設備也簡便易得。目前運動生物科學的動物泳池可以分為兩類：靜水泳池和流水泳池。靜水泳池內水是非流動性的，運動負荷強度通過水深、水溫和尾部負重予以調節(jié)。靜水泳池雖然結構簡單，造價較低，但具有以下缺點：一是運動負荷方式脫離運動實際，有時動物表現出緩慢落入池底再反彈至水面的非游泳動作；二是運動強度難以控制，無統一運動強度標準可供參考和對照。流水泳池指泳池內水是流動性的，運動負荷強度主要通過水流速度予以調節(jié)。與靜水泳池相比，流水泳池具有以下優(yōu)點：一是運動方式符合運動實際，使實驗研究更能針對性解決實際問題；二是運動強度易于控制，實驗人員僅調節(jié)噴水閥門即可完成運動強度的改變；三是游泳的條件穩(wěn)定，有效避免或減少了實驗動物浮于水面和伏壁休息的現象。流水泳池的缺點是運動強度衡量較為困難，需要綜合考慮水溫、水深和水流速度等影響因素。在運動生物科學研究中，有關游泳運動與骨代謝相關的研究較多，主要集中在不同時間及不同強度的游泳運動對不同部位骨代謝的影響。

2.2跑臺訓練

動物跑臺主要是根據大鼠或小鼠跑步運動而設計的實驗裝置。動物跑臺運動接近動物的正常運動方式；運動量和運動強度可通過調整跑的時間、跑速和跑臺坡度來準確控制；跑臺運動可以實現向心性收縮為主和離心性收縮為主的兩種運動形式，動物上坡跑或下坡跑分別使肌肉作向心性收縮或離心性收縮；對照組便于設立，將動物放置于平板跑臺的跑道上但跑臺不轉動即可，因此跑臺運動在目前實驗研究中應用較多。但是動物跑臺一般采取電擊、聲音刺激、毛刷刺激或強氣流來驅使動物奔跑，是非主動性運動，這是動物跑臺應用中的一個局限因素。近年來，許多研究選用SD大鼠進行跑臺訓練建立動物模型，用其它一些鼠類也有報道，如Smith等[6]、Nader等[7]曾選用雌性Wistar大鼠建模。Kemi等[8]用巧克力獎賞使C57BLP6J型小鼠動物跑臺訓練來建立模型。Mikami等[9]曾選用雄性ICR小鼠建立耐力訓練動物模型。近年來有關跑臺運動與骨代謝相關的研究也逐漸增多。

2.3跳臺訓練

目前關于動物跳躍訓練模型較少見，根據實驗需要研制了動物跳躍訓練的跳箱[10]，跳箱底板由銅絲制成，四周為木板，跳臺可自由調節(jié)高度，跳箱底板連接生理刺激器，生理刺激器型號為JL-B1(上海嘉龍教學儀器)，波形為方波，頻率為50 Hz，電壓為30～50 V。將大鼠放在底板上，由生理刺激器給予一定強度的電刺激，讓大鼠跳上箱子一側專門設制的平臺，休息20 s，然后把大鼠重新放在底板上，再次通電刺激大鼠再次跳躍，如此循環(huán)，直到預定的跳躍次數。一般經幾次電刺激后，大鼠不需電刺激就會自動跳躍到安全的平臺上。

跳躍訓練是一種很好的動物爆發(fā)力和受力訓練模型，符合運動實際，對于與運動生物科學相關的動物實驗具有較高的價值，對運動中骨應力方面的研究則更實用。跳躍訓練的運動強度可以由跳躍高度來決定，骨所受的機械應力與跳躍高度成正比關系，運動量可以由跳躍次數決定。然而，大鼠的跳躍模型和跑臺運動模型一樣，都是在電刺激的情況下迫使動物運動，這種電擊可能產生非運動性應激，甚至機械性損傷，從而影響運動模型的客觀性。為了盡量減少電刺激對動物影響，在跳躍訓練過程中盡量用較小強度的刺激來訓練動物跳躍，刺激電壓一般為30～40 V，不超過50 V。動物被放入跳箱后，一般最初的幾次都會主動跳到跳臺上，這時一般不打開生理刺激器電源，盡量讓動物主動跳躍，直到動物不再主動跳躍時，再接通生理刺激器電源，強迫動物做完預定的運動次數。隨著動物條件反射的逐漸建立，動物一旦被放入箱底后，也會主動跳躍而不用電刺激。另外，還可以結合聲音和光等的刺激來建立動物的條件反射。

2.4轉籠運動

轉籠是鼠類較常用的一種動物運動方式。轉籠運動是一種自主運動無需外界刺激強迫，可以避免被動運動時的傷害性刺激和運動過度，對照組也便于設立。目前研制的轉籠克服了傳統轉籠運動強度不易定量、運動量(動物所跑的圈數)不夠精確等缺點，大大提高了使用價值。如Ishihara等[11]設計了可控制和自動顯示負荷的大鼠主動轉籠運動訓練模型。轉籠連接一控制裝置，可連續(xù)記錄大鼠轉籠跑的圈數和籠的阻力大小，并可傳送至電腦存貯，籠阻力可調整(0～350 g)。Allen等[12]選用C57PB16雄性小鼠進行4 周自愿跑籠運動建模。自動計數器可以記錄最大跑速、跑籠總距離和總時間。轉籠運動的不足之處是難以進行大運動強度運動，一旦轉籠阻力過大，動物不能維持運動強度。另外訓練的組數、次數以及訓練間歇等參數也不易設定。有關運動與骨代謝相關的研究至今還未見相關報道。

2.5其他運動方式

除了上述常用的運動方式以外，近些年國外也出現了一些新的動物運動方式，如舉重和負重爬等。Wirth[13]的大鼠舉重訓練模型以食物作為誘導因素，紅外線進行控制，負荷可以隨意調整。大鼠為了獲得食物，必須將一定負荷的杠鈴通過頭頂下肢用力舉起，訓練中的向心收縮(舉起杠鈴)和離心收縮(放下杠鈴)的最大力、速度、總做功、平均功率等均可精確測出。Norenberg等[14]采取更大負荷也建立了類似的舉重模型。負重爬也是適宜于鼠類的一種力量訓練方式。國外近年復制較多，如Widrick等[15]、Duncan等[16]和Hornberger等[17]分別進行了動物負重爬梯相關實驗研究。動物舉重和負重爬梯在運動方式上與人類運動比較接近，但此類模型還不能自動進行，實驗所需時間也較長，訓練難度較大。

3運動與骨代謝研究中的評價指標[18]

目前有關骨骼對體育運動或運動訓練適應性的動物實驗研究，所采用的評價指標主要包括骨量、骨組織形態(tài)計量學指標、骨生物力學指標、骨代謝生化標志物及骨代謝基因水平調控等研究。

3.1 骨量

骨量是指單位面積或長度骨組織內骨礦鹽的含量。用g/cm2或g/cm為單位。前者稱骨礦密度(bone mineral density，BMD)，后者稱骨礦含量(bone mineral content，BMC)。BMD是機體某一部位骨組織中單位骨面積內所含的礦物質量，是影響骨強度的一個重要因素，是評價骨強度的一個最方便、最常用的指標，并且BMD的高低也被作為診斷骨質疏松的一項主要標準。有關運動對于BMD的影響的研究一直以來都是運動醫(yī)學的一個研究熱點，在這方面，國外的學者做了大量的工作[19-21]。

3.2骨組織形態(tài)計量學指標

形態(tài)計量學是對形態(tài)結構進行定量分析的科學，形態(tài)計量學用于測量骨組織形態(tài)結構，稱為骨組織形態(tài)計量學。在骨的生長、重建過程中，板層骨組織具有在分散、微小位置上的不斷轉換、重排的動態(tài)特性。由于細胞染色技術和熒光標記劑的應用發(fā)展，骨組織形態(tài)計量學不僅可以研究骨組織的靜態(tài)指標，而且可以研究骨生長重建的動態(tài)指標。四環(huán)素活體標記技術可用于研究骨的重建，它是揭示骨的生理機能與形態(tài)學改變之間關系的一種新的研究方法。其原理是利用四環(huán)素能與鈣特異性結合并沉積在骨礦化前沿的特性，把時間因素標記在骨的重建過程中，在熒光顯微鏡下，檢測骨組織內一次或兩次標記的四環(huán)素熒光線間距，單或雙標四環(huán)素熒光骨礦化前沿的標記率等動態(tài)變化，從而求得諸如骨礦化沉積率、單標四環(huán)素表面、雙標四環(huán)素表面及單、雙標四環(huán)素表面比、礦化延遲時間、骨再建單位時間和糾正礦化沉積率等多項骨動力學指標，以獲取骨細胞水平、組織水平以及器官水平上的活體信息。近年來，國內外有關運動與骨組織形態(tài)計量學的研究也逐漸增多[22-23]。

在制作骨組織形態(tài)計量學研究的切片時，一般選擇松質骨(如脛骨近端骨骺線下1~4 mm)，做5 μm不脫鈣切片，用甲苯胺蘭染色，30 μm四環(huán)素標記標本不脫鈣切片、不染色，分別在光學顯微鏡和熒光顯微鏡下觀察，在圖象分析軟件中，對于劃定的范圍進行面積、長度、距離和數目4大類基本測量。在得出所要測量的每張切片的基本參數以后，再依據Parfitt等對骨形態(tài)計量參數的定義與計算方法，測量出反映骨量、骨結構與骨代謝的三大類參數[22]。

3.3骨生物力學指標

骨生物力學是生物力學的分支，它以工程力學的理論為基礎，研究骨組織在外界作用下的力學特性和在受力后的生物學效應，是對骨質量進行評定的一種可靠的方法。骨的生物力學特性包括結構力學特性和材料力學特性。骨的結構力學特性是指整個骨結構的力學性能，不但與骨的材料力學特性有關，而且受骨的幾何特性，即形狀、尺寸等影響。骨的結構力學指標可以通過載荷－變形曲線來求得，主要包括：最大載荷、彈性載荷、斷裂載荷、最大撓度、彈性撓度、斷裂橈度、剛性系數和能量吸收。骨的材料力學特性是指骨組織本身的力學性能，與骨的幾何形狀無關，骨的材料力學指標可以通過應力應變曲線來求得，主要包括：最大應力、彈性應力、斷裂應力、最大應變、彈性應變、斷裂應變、彈性模量和能量吸收。運動對骨生物力學的影響已經逐漸成為現代運動醫(yī)學的一個研究熱點。如Hart等[24]研究指出，12周的游泳訓練使大鼠股骨力學性能明顯增強。Notomi等[25]令大鼠進行4周的抗阻力隨意運動后，發(fā)現股骨的最大載荷、總橫截面積和慣量矩顯著高于對照組，運動8周后，上述3個指標加之結構硬度(N/mm)和皮質骨面積亦顯著增加。

3.4骨代謝生化標志物

骨在整個生命過程中都具有新陳代謝的活性，骨代謝的過程往往能反映破骨細胞與成骨細胞的活動及骨基質、骨礦物質的變化，運動對骨的影響可通過骨代謝生化標志物的變化反映出來。這主要包括以下3個方面的研究：運動對骨形成和骨吸收生化標志物的影響；運動對骨代謝調節(jié)激素的影響；運動對骨代謝細胞調節(jié)因子的影響。

1)運動對骨形成和骨吸收生化標志物的影響。

反映骨形成的生化標志物主要有血清總堿性磷酸酶(TALP或ALP)和骨堿性磷酸酶(BALP)、骨鈣素(BGP)、Ⅰ型前膠原梭基端前肽(PICP)、骨粘連蛋白(ostcnonectin) 等共9種。反映骨吸收的生化標志物主要是血漿抗酒石酸酸性磷酸酶(TRACP)、尿羥賴氨酸糖苷(HOLG)、Ⅰ型膠原交聯梭基末端肽(ICTP)、尿膠原吡啶交聯(PYD)等。關于運動對骨代謝生化指標的研究有很多，國內外研究者從不同的角度分析了運動對骨代謝生化指標的影響[26-28]。

2)運動對骨代謝調節(jié)激素的影響。

影響骨代謝的主要調控激素為維生素D(Vit D3)、甲狀旁腺激素(PTH)、降鈣素(CT)、生長激素(GH)和雌激素。Vit D3在肝臟羥化為25-(OH) Vit D3，后在腎臟生成1，25-(OH) Vit D3，Vit D3促進小腸吸收鈣、磷，促進腎小管對鈣、磷的重吸收，既作用于成骨細胞促進骨形成、又與PTH協同促進破骨細胞溶骨作用，對骨代謝有雙向調節(jié)，起平衡骨代謝作用。PTH具有促進成骨和溶骨的雙重作用，實驗研究表明小劑量PTH可促進成骨作用，而大劑量則可促進溶骨作用，但總的作用是促進溶骨，提高血鈣。CT作用是抑制破骨作用，抑制鈣、磷的重吸收，降低血鈣和血磷[29-30]。

3)運動對骨代謝細胞調節(jié)因子的影響。

目前對骨代謝作用比較清楚的細胞因子有胰島素樣生長因子(IGF)、轉化生長因子β(TGF-β)、骨形成蛋白(BMP)、成纖維生長因子(FGF)、血小板源生長因子(PDGF)、表皮生長因子(EGF)以及肝細胞生長因子(HGF)等。其中BMP是唯一具有誘導組織間充質細胞增殖、分化為軟骨和骨細胞的骨生長因子，也是骨再生的啟動因素。IGF對生長期骨組織的作用最強，對成骨細胞的分化有強烈的刺激作用，能夠引起骨基質沉積率增加，促進骨形成；還可以使成骨細胞內堿性磷酸酶(ALP)活性升高，產生骨鈣素(BGP)，從而對骨基質的保持和骨量的維持有促進作用。TGF-β是骨吸收和骨形成之間有力的調節(jié)和偶聯因子，可促進軟骨細胞的增殖，對軟骨細胞的分化和軟骨基質的合成具有雙重的調節(jié)作用，在骨形成過程中主要調節(jié)軟骨內骨礦化和骨重建。這些生長因子之間互相影響，完成協同或拮抗的作用，彼此形成復雜的網絡關系。目前，有大量研究表明，隨著年齡的增長，上述細胞因子的功能也相應降低，對骨代謝、骨重建的作用也隨著年齡的增長而減弱[31-32]。由于骨組織中骨代謝相關因子的增齡性降低在骨組織衰老中可能存在著關鍵作用，但關于運動對骨代謝相關細胞因子影響的研究報道較少。

3.5骨代謝基因水平調控

家族性流行病學調查發(fā)現，雙親骨折史與子女及旁系主要成員骨量之間存在明顯相關性，說明正常人群峰值骨量及骨密度受遺傳因素調控。隨著現代科學技術的發(fā)展，骨量及骨代謝及相關影響因素的分子生物學研究引起學術界關注，同時也為探討運動健骨的機制提供了研究思路。目前對于骨代謝相關的基因研究主要包括VDR等位基因、雌激素受體基因等。

3.6骨代謝各評價指標的相互關系

BMD是評價骨強度的一個最方便、最常用的指標，并且BMD的高低也被作為診斷骨質疏松的一項主要標準。與骨骼肌組織相比，骨屬于被動的“應變器官”，代謝速率較慢，應變效果的驗證主要借助在組織和器官水平上的骨組織形態(tài)學、BMD和骨生物力學變化。單純的骨量的高低也不能完全決定骨強度的好壞，其原因是：在骨量并無增加的情況下，骨亦會適應載荷的要求發(fā)生結構和形態(tài)改變，從而維持其力學性能，適量的載荷刺激能影響骨重建，增加或維持骨量。事實上，骨密度、骨組織形態(tài)計量學指標和骨的生物力學性能有著密切的關系，骨的內部結構的變化是引起骨生物力學性能變化的原因。骨代謝生化指標能反映成骨細胞和破骨細胞的活動狀況，以及骨基質和骨礦物質的變化，是骨量和骨微觀結構變化的先期條件，先于骨量和骨微觀結構表現出來，為評定體育鍛煉的效果和骨質疏松癥的診斷及早期預防提供了無創(chuàng)性、靈敏和特異性的檢測方法。盡管目前在醫(yī)學領域關于分子生物學方面的研究也是剛剛起步，但為我們探討運動健骨的機制提供了研究思路。

以上指標從各個不同的角度定量地反映模型動物的變化以及程度如何，但這些指標均有其局限性，需要綜合多種信息才能得到確實的情況判斷。在運動骨代謝動物模型評價指標中，骨量、骨生物力學性能和骨組織顯微結構變化是不可缺少的。

參考文獻：

[1] 張林. 運動骨代謝動物模型的選擇與構建——運動骨代謝動物模型研究進展(1)[J]. 體育學刊，2005，12(6)：57-59.

[2] Brighton C T. Treat ment of sciatic denervation disuse osteoporosis in the rat with capacitively coupled electrical stimulation[J]. J Bone Joint Surg(AM)，1985，67：1022-1025.

[3] Zhou H，Ma Y F，Yao W，et al. Lumbar vertebral cancellous bone is capable of responding to PGE2 treatment by stimulating both modeling and remodeling-dependent bone gain in aged male rats[J]. Calcif Tissue Int，2001，68：179-184.

[4] Ke H Z，Crawford D T，Qi H，et al. Long - term effects of aging and orchidectomy on bone andbody composition in rapidly growing male rats[J]. J Musculoskel Neuron Interact，2001，1：215-224.

[5] Takeda T. Senescence accelerated mouse(SAM)：A biogerontological resource in aging research[J]. Neurobiol Aging，1999，20：105-106.

[6] Heather K Smith，Linda Maxwell，Carol D Rodgers，et al. Exercise-enhanced satellite cell proliferation and new myonuclear accretion in rat skeletal muscle[J]. J Appl Physiol，2001，90：1407-1414.

[7] Gustavo A Nader，Karyn A Esser. Intracellular signaling specificity in skeletal muscle in response to different modes of exercise[J]. J Appl Physiol，2001，90：1936-1942.

[8] Ole Johan Kemi，Jan P Loennechen，Ulrik Wislff，et al. Intensity-controlled treadmill running in mice：Cardiac and skeletal muscle hypertrophy[J]. J Appl Physiol，2002，93：1301-1309.

[9] Toshio Mikami，Satoshi Sumida，Yoshitomo Ishibashi，et al. Endurance exercise training inhibits activity of plasma GOT and liver caspase-3 of rats exposed to stress by induction of heat shock protein 70[J]. J Appl Physiol，2004，96：1776-1781.

[10] 鄭慶云，李世昌，馬濤. 縱跳對生長期大鼠骨密度、骨代謝生化指標的影響[J]. 體育科學，2008，28(8)：45-49.

[11] Akihiko Ishihara，Roland R Roy，Yoshinobu Ohira，et al. Hypertrophy of rat plantaris muscle fibers after voluntary running with increasing loads[J]. J Appl Physiol，1998，84：2183-2189.

[12] David L Allen，Brooke C Harrison，Alexander Maass，et al. Cardiac and skeletal muscle adaptations to voluntary wheel running in the mouse[J]. J Appl Physiol，2001，90：1900-1908.

[13] Oliver Wirth，Erik W Gregory，Robert G Cutlip，et al. Control and quantitation of voluntary weight-lifting performance of rats[J]. J Appl Physiol，2003，95：402-412.

[14] Norenberg K M，Fitts R H. Contractile responses of the rat gastrocnemius and soleus muscles to isotonic resistance exercise[J]. J Appl Physiol，2004，97：2322-2332.

[15] Jeffrey J Widrick，Robert H Fitts. Peak force and maximal shortening velocity of soleus fibers after non-weight-bearing and resistance exercise[J]. J Appl Physiol，1997，82：189-195.

[16] Duncan N D，Williams D A，Lynch G S. Adaptations in rat skeletal muscle following long - term resistance exercise training[J]. Eur J Appl Physiol Occup Physiol，1998，77(4)：372-378.

[17] Hornberger Jr T A，Farrar R P. Physiological hypertrophy of the FHL muscle following 8 weeks of progressive resistance exercise in the rat[J]. Can J Appl Physiol，2004，29(1)：16-31.

[18] 張林. 運動骨代謝實驗動物特點與動物模型評價—運動骨代謝動物模型研究進展(二)[J]. 體育學刊，2006，13(1)：51-53.

[19] Janz K F，Burns T L，Torner J C，et al. Physical activity and bone measures in young children：the Iowa bone development study[J]. Pediatrics，2001，107：1387-1393.

[20] Robin L T，Lanyon L E. Regulation of bone mass by mechanical strain magnitude[J]. Calcif Tissue Int，1985，37：411-417.

[21] Taha W，Chin D，Silverberg AI，et al. Reduced spinal bone mineral density in adolescents of an Ultra2Orthodox Jewish community in Brooklyn[J]. Pediatrics，2001，107：79.

[22] 李世昌，馬濤，尹小儉，等. 不同運動方式對生長期大鼠骨密度和組織形態(tài)計量學指標的影響[J]. 體育科學，2008，28(1)：54-58.

[23] Bourrin S，Gany C. Adverse effects of strenuous exercise: a densitometric and histomorphometric study in the rat[J]. J Appl Physiol，1994，76(5)：1999-2005.

[24] Hart K J，Shaw J M，Vajda E，et al. Swim-trained rats have greater bone mass，density，strength and dynamics[J]. J Appl Physiol，2001，91(4)：1663-1668.

[25] Notomi T，Okimoto N，Okazaki Y，et al. Effects of tower climbing exercise on bone mass，strength，and turnover in QrowinQ rats[J]. J Bone Miner Res，2001，16(1)：166-174.

[26] Eliakim A，Raisz L G，Brasel J A，et al. Exidence for increased bone formation following a brief endurance-type training intervention in adolescent males[J]. J Bone Res，1997，12(10)：1708-1713.

[27] Fujimura R，Ashizawa N，Watanabe M，et al. Effect of resistance exercise training on bone formation and resumption in young male subjects assessed by biomarkers of bone metabolism[J]. J Bone Miner Res，1997，12(4)：656-666.

[28] Rong H，Berg U，Torring O. Effect of acute endurance and strength exercise on circulating calcium-regulating hormones and bone markers in young heslthy males[J]. Scand J Med Sci Sports，1997，7(3)：152-159.

[29] Takada H，Washino K，Nagashima M，et al. Response of parathyroid hormone to anaerobic exercise in adolescent female athletes[J]. Acta Paediatr Jpn，1998，40(1)：73-77.

[30] Ljunghall S，Joborn H，Roxin L E，et al. Prolonged low-intensity exercise raise the serum parathyroid hormone levels[J]. Clin Endocrinol(Oxf)，1986，25(5)：535-542.

[31] Maddalozzo G F，Snow C M. High intensity resistanse training：effects on bone in older men and women[J]. Calcif-Tissue-Int，2000，66(6)：399-406.

[32] Cappon J，Brasel J A，Mohan S，et al. Effect of brief exercise on circulation insulin-like growth factor Ⅰ[J]. J Apple Phyiol，1994，76(6)：2490-2495.

[編輯：鄭植友]