摘""要:Atg26(或Ugt51)是一種UDP-葡萄糖:"甾醇葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶,其調(diào)控甾醇轉(zhuǎn)化成甾醇葡萄糖苷(SG)的生物過程,參與多種細胞自噬過程,在真菌生長發(fā)育及致病性方面具有重要作用。為探究Atg26對荔枝霜疫霉(Peronophythora"litchii)生長發(fā)育及毒性作用的影響,本研究通過生物信息學(xué)技術(shù)在荔枝霜疫霉中鑒定到6個與釀酒酵母Atg26同源的蛋白。蛋白質(zhì)特性分析發(fā)現(xiàn),其二級結(jié)構(gòu)以無規(guī)則卷曲為主,且具有親水性?;蚪Y(jié)構(gòu)和蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)分析結(jié)果顯示,除PlATG26a外,其余荔枝霜疫霉的ATG26同源基因均具有內(nèi)含子,且大多分布在基因末端;荔枝霜疫霉中Atg26同源蛋白均含有一個UDP-葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶(UDP-glucosyl"transferase,UDPGT)的催化結(jié)構(gòu)域,無PH(pleckstrin同源)和GRAM(糖基轉(zhuǎn)移酶、GTPase激活劑和肌管蛋白)功能域。進一步對Atg26同源蛋白進行系統(tǒng)進化和保守基序分析發(fā)現(xiàn),荔枝霜疫霉中的Atg26同源蛋白之間存在多樣性,但不同物種中Atg26的CAT結(jié)構(gòu)域具有保守性。蛋白質(zhì)互作預(yù)測和蛋白質(zhì)分子對接分析發(fā)現(xiàn),PlAtg26的互作蛋白多位于細胞質(zhì)或膜上,集中在細胞代謝過程中,具有催化活性、氧化還原活性或結(jié)合能力。實時熒光定量PCR(qRT-PCR)分析發(fā)現(xiàn),與菌絲階段表達相比,PlATG26b在荔枝霜疫霉游動孢子階段和侵染初期上調(diào)表達,在孢子囊階段和侵染后期無明顯差異,表明PlAtg26可能在荔枝霜疫霉的無性生殖和致病性中發(fā)揮重要作用。綜上所述,PlAtg26與其他真菌中Atg26同源蛋白在結(jié)構(gòu)上具有明顯差異,可能表現(xiàn)出與真菌不一樣的生物學(xué)功能。
關(guān)鍵詞:荔枝霜疫霉;細胞自噬;PlATG26;生物信息學(xué);qRT-PCR中圖分類號:S667.1""""""文獻標志碼:A
Identification"and"Expression"Analysis"of"PlATG26"in"Peronophythora"litchii
WANG"Xuejian1,2,"YANG"Chengdong1,2,"YU"Ge1,2,"JI"Zhenxi1,2,"GUO"Hengyuan1,2,"YE"Linlin1,2,"CHEN"Qinghe1,2*
1."School"of"Breeding"and"Multiplication"(Sanya"Institute"of"Breeding"and"Multiplication),"Hainan"University"/"School"of"Tropical"Agriculture"and"Forestry,"Hainan"University,"Sanya,"Hainan"572025,"China;"2."Key"Laboratory"of"Green"Prevention"and"Control"of"Tropical"Plant"Diseases"and"Pests,"Ministry"of"Education,"Haikou,"Hainan"570228,"China
Abstract:"Atg26"(or"Ugt51)"is"a"UDP-glucose:"sterol"glucosyltransferase,"which"regulates"the"biological"process"of"sterol"conversion"to"sterol"glucoside"(SG),"participates"in"various"cellular"autophagy"processes,"and"plays"an"important"role"in"fungal"growth,"development"and"pathogenicity."In"order"to"investigate"the"role"of"Atg26"in"the"growth,"development"and"virulence"of"Peronophythora"litchii,"six"Atg26"homologous"proteins"were"identified"through"bioinformatics."The"analysis"of"protein"properties"showed"that"the"secondary"structure"of"the"protein"was"mainly"random"curling"and"had"hydrophilic"properties."The"results"of"gene"and"protein"structure"analysis"showed"that"except"PlATG26a,"the"other"ATG26"homologous"genes"of"P."litchii"had"introns,"which"were"mostly"distributed"at"the"end"of"the"gene."All"Atg26"homologous"proteins"contained"the"CAT"catalytic"domain,"but"did"not"have"the"PH"(pleckstrin"homology)"and"GRAM"(glucosyltransferase,"Rab-like"GTPase"activators,"and"myotubularins)"domains"that"make"up"the"PBD"(phosphoinositide"binding"domain)."Further"phylogenetic"and"conserved"motif"analysis"of"Atg26"homologous"proteins"found"that"diversity"existed"among"the"Atg26"homologous"proteins"in"P."litchii,"but"the"CAT"domain"of"Atg26"was"conserved"in"different"species."Protein"interaction"prediction"and"protein"molecular"docking"analysis"showed"that"the"interacting"proteins"of"PlAtg26"were"mostly"located"in"the"cytoplasm"or"membrane,"concentrated"in"the"process"of"cell"metabolism,"and"had"catalytic"activity,"REDOX"activity"or"binding"ability,"which"also"indicated"that"PlAtg26"may"not"require"the"binding"ability"of"GRAM"domain"for"localization."Quantitative"real-time"PCR"(qRT-PCR)"analysis"showed"that"PlATG26b"was"up-regulated"in"zoospore"stage"and"early"infection,"but"had"no"significant"difference"in"sporangium"stage"and"late"infection."This"result"also"indicated"that"Atg26"played"an"important"role"in"the"asexual"reproduction"and"infection"of"P."litchii."In"conclusion,"PlAtg26"and"Atg26"homologues"in"fungi"have"significant"structural"differences"and"may"show"different"biological"functions"from"fungi.
Keywords:"Peronophythora"litchii;"autophagy;"PlATG26;"bioinformatics;"qRT-PCR
DOI:"10.3969/j.issn.1000-2561.2025.06.021
中國大陸是全球最大規(guī)模的荔枝(Litchi"chinensis"Sonn.)生產(chǎn)區(qū),2022年中國大陸荔枝種植面積約52.61萬hm2,基本保持穩(wěn)定;荔枝產(chǎn)量約222.27萬t[1]。由荔枝霜疫霉(Peronophythora"litchii"Chen"ex"Ko"et"al.)侵染引起的荔枝霜疫病嚴重影響荔枝的生長發(fā)育,是影響我國荔枝產(chǎn)量及產(chǎn)后最為嚴重的病害[2]。荔枝霜疫霉主要為害荔枝的果實,也會影響花穗和葉片,為害嚴重時,損失率可達30%~60%[3-5]。荔枝霜疫霉首次在中國臺灣荔枝病果上發(fā)現(xiàn),其孢囊梗為多級有限生長,形態(tài)與霜霉菌相似,但其他特性及基因組的序列特征與疫霉菌相似,將其歸于霜疫霉屬[6]。
自噬(autophagy)是真核生物體內(nèi)一種進化保守的生物學(xué)過程,是指細胞受到自噬起始信號后,形成雙膜囊泡,即自噬體,隔離細胞器、蛋白質(zhì)或細胞質(zhì)的一部分,以便輸送到溶酶體,進而將其降解的過程[7]。自噬過程受到多個自噬相關(guān)基因(ATG)的調(diào)控,1997年,YOSHINORI"OHSUMI發(fā)現(xiàn)并克隆到酵母中第一個自噬相關(guān)基因ATG1,目前在酵母中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了45個自噬相關(guān)基因[8-9]。
根據(jù)細胞內(nèi)容物進入溶酶體的不同方式,細胞自噬被分為巨自噬、微自噬和分子伴侶介導(dǎo)的自噬,而自噬根據(jù)底物的不同還可分為非選擇性自噬(nonselective"autophagy)和選擇性自噬(selective"autophagy)[10-11]。在畢赤酵母中,Atg26(Ugt51)是一種UDP-葡萄糖:"甾醇葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶,合成一種較小的膜脂質(zhì)甾醇葡糖苷(SG)。該酶含有1個磷酸肌醇結(jié)合結(jié)構(gòu)域(PBD)和1個含有UDP-葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶(UDP-glucosyl"transferase,UDPGT)的催化結(jié)構(gòu)域(catalytic,CAT)[12-13]。其中,PBD結(jié)構(gòu)域包括1個截斷的GRAM(糖基轉(zhuǎn)移酶、GTPase激活劑和肌管蛋白)-PH(pleckstrin同源)[trGRAM-pH]結(jié)構(gòu)域和1個GRAM結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)域?qū)τ贏tg26在自噬體前結(jié)構(gòu)(preauto phagosomal"structure,PAS)的定位至關(guān)重要[12-13]。Atg26在多種絲狀真菌中被鑒定,其功能已被證明與真菌的生長發(fā)育、自噬及毒力相關(guān)。在米曲霉(Aspergillus"oryzae)中,Atg26不僅調(diào)控其過氧化物酶體自噬,還參與其線粒體自噬和細胞自噬,且該基因的缺失會影響米曲霉氣生菌絲和分生孢子的形成[13]。在瓜類炭疽菌(Colletotrichum"orbiculare)中,Atg26調(diào)控其過氧化物酶體自噬但不參與巨自噬,并且通過影響其附著胞內(nèi)部壓力,從而導(dǎo)致致病性的減弱[14],這些研究結(jié)果表明Atg26在病原真菌生長發(fā)育、細胞自噬和植物致病中發(fā)揮重要作用。但是Atg26在包括荔枝霜疫霉在內(nèi)的植物病原卵菌生長發(fā)育及致病過程中的功能尚未報道。
前期的研究表明,荔枝霜疫霉中已鑒定到多個Atg蛋白,其中PlAtg2、PlAtg3、PlAtg8、PlAtg12對荔枝霜疫霉的生長發(fā)育、致病性以及細胞自噬具有重要作用,但Atg26還未得到鑒定[15-19]。本研究通過同源比對及pfam查找鑒定荔枝霜疫霉中的Atg26同源蛋白,利用生物信息學(xué)對其進一步分析,并通過qRT-PCR探究其在荔枝霜疫霉生長發(fā)育和侵染過程中的表達規(guī)律。
1.1""材料
1.1.1""供試菌株""荔枝霜疫霉(P."litchii)菌株SHS3為實驗室長期保存。
1.1.2""供試植物""荔枝品種為妃子笑。
1.2""方法
1.2.1""荔枝霜疫霉Atg26的鑒定""荔枝霜疫霉SHS3基因組為實驗室轉(zhuǎn)錄組測序數(shù)據(jù),為了鑒定荔枝霜疫霉的Atg26,在文獻中查找真菌中已報道的Atg26同源蛋白,畢赤酵母(Pichia"pastoris)PpAtg26、釀酒酵母(Saccharomyces"cerevisiae)ScAtg26、米曲霉(A."oryzae)AoAtg26、稻瘟菌(Magnaporthe"oryzae)MoAtg26、禾谷鐮刀菌(Fusarium"graminearum)FgAtg26,并從GenBank獲得其氨基酸序列[13,"20-22]。利用NCBI本地blast工具建立荔枝霜疫霉本地數(shù)據(jù)庫,通過Blastp的方法分別將以上Atg26序列在本地數(shù)據(jù)庫中查找,設(shè)置目標功能域的E-value閾值為1e-5。通過pfam(http://pfam-legacy.xfam.org/)搜索PpAtg26的功能域(PF03033、PF00169、PF06722、PF02893),并利用TBtools[23]工具在荔枝霜疫霉數(shù)據(jù)庫中進行hmmsearch,與Blastp查找結(jié)果取交集以獲得候選蛋白。在NCBI"Batch"CD-search(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/bwrpsb/bwrpsb.cgi)(Elt;1e-5)上對候選蛋白及已知蛋白進行功能域預(yù)測,并進一步對比。
1.2.2""PlAtg26蛋白理化特性及基因結(jié)構(gòu)分析""利用Expasy-ProtParam(http://web.expasy.org/"protparam/)對PlAtg26蛋白親水性、等電點及分子式量進行分析;利用PlAtg26及已知蛋白的DNA序列和CDS序列,在TBtools上對其基因結(jié)構(gòu)進行可視化;通過CELLO(http://cello.life.nctu."edu.tw/)對PlAtg26進行亞細胞定位預(yù)測;利用MEME(https://meme-suite.org/meme/tools/meme)預(yù)測分析PlAtg26及其同源序列的保守基序(motif),motif數(shù)量為10,長度為10~60"aa。
1.2.3""PlAtg26蛋白二、三級結(jié)構(gòu)預(yù)測分析""通過SOPMA預(yù)測PlAtg26蛋白二級結(jié)構(gòu);利用在線工具SWISS-MODEL[24](https://swissmodel."expasy.org/)預(yù)測PlAtg26蛋白的三級結(jié)構(gòu),并進行可視化。
1.2.4""系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建""在GenBank下載大豆疫霉(Phytophthora"sojae)、擬南芥(Arabidopsis"thaliana)、家鼠(Mus"musculus)的基因組數(shù)據(jù),通過已知的PpAtg26、ScAtg26、AoAtg26和FgAtg26使用Blastp法查找其Atg26同源序列。通過PhyloSuite[25]中的IQ-TREE插件構(gòu)建荔枝霜疫霉、釀酒酵母、畢赤酵母、致病疫霉、大豆疫霉、稻瘟菌、家鼠及擬南芥的Atg26蛋白系統(tǒng)發(fā)育樹。采用maximum"likelihood(ML)法,并設(shè)置ultrafast"bootstrap參數(shù)為1000進行構(gòu)建,其他參數(shù)采用默認值。
1.2.5""蛋白互作分析方法""通過STRING網(wǎng)絡(luò)對PlAtg26蛋白在線分析,發(fā)現(xiàn)PlAtg26在惡疫霉(P."cactorum)中存在對應(yīng)蛋白。利用STRING[26](https://cn.string-db.org/)對惡疫霉中對應(yīng)蛋白的互作關(guān)系進行分析,參數(shù)設(shè)置:最低要求交互分數(shù),中等置信度(0.4000),顯示最大交互數(shù)量不超過10個。
1.2.6""分子對接方法""通過SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/)對相關(guān)蛋白進行同源建模;利用GRAMM[27]進行分子對接;在PDBePISA(https://www.ebi.ac.uk/msd-srv/prot_int/"pistart.html)上分析分子對接結(jié)果,并使用Pymol軟件進行可視化。
1.2.7""PlAtg26b基因克隆及磷酸化位點、信號肽和跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測""將荔枝霜疫霉接種在V8液體培養(yǎng)基(取新鮮V8蔬菜汁過濾100"mL,加超純水定容至1"L)中,25"℃,120"r/min培養(yǎng)2"d,用ddH2O清洗之后收集菌絲提取DNA。引物序列:PlAtg26b-F,5¢-ATGGAGGCCACACAGACG-"3¢;PlAtg26b-R,5¢-TTAAAGAGCAACTGACG"ATG-3¢。PCR反應(yīng)體系:2×Phanta"Max"Master"Mix"(Dye"Plus)"25"μL,Primer"F"/"Primer"R各2"μL,DNA"1"μL,ddH2O"20"μL。通過在線工具NetPhos-3.1(https://services.healthtech.dtu.dk/ser vices/NetPhos-3.1/)、SignalP-4.1(https://services."healthtech.dtu.dk/services/SignalP-4.1/)和TMHMM-"2.0(https://services.healthtech.dtu.dk/services/TM HMM-2.0/)預(yù)測PlAtg26b的磷酸化位點、信號肽及跨膜結(jié)構(gòu)域。
1.2.8""荔枝霜疫霉不同時期樣品制備""參考王榮波等[15]的方法收集試驗樣品。將荔枝霜疫霉在V8固體培養(yǎng)基上暗培養(yǎng)2"d,隨后切割邊緣新鮮菌絲在V8液體培養(yǎng)基中,25"℃,120"r/min培養(yǎng)2"d,用ddH2O清洗之后收集,獲得荔枝霜疫霉?fàn)I養(yǎng)菌絲(MY);將荔枝霜疫霉在V8固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)5"d后,用ddH2O刮洗菌面,用濾紙過濾后,4000"r/min離心10"min后,棄上清后獲得游動孢子囊(SP)樣品;將上述SP樣品在12"℃低溫處理1"h后,轉(zhuǎn)移到25"℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)1"h,3800"r/min離心10"min后棄上清液獲得游動孢子(ZO)。不同侵染時期樣品獲得:荔枝霜疫霉在V8液體培養(yǎng)基培養(yǎng)2"d后,接種在新鮮荔枝嫩葉正面,吸去多余水分后,再蓋上一片嫩葉,放于25"℃黑暗培養(yǎng)。分別于12、24、36、48、60"h收集,其中12"h只收集菌絲,其余時期收集菌絲和葉片,液氮冷凍后,置于–80"℃保存,用于RNA提取。
1.2.9""qRT-PCR分析""內(nèi)參基因actin引物序列:PlAct-F,5¢-TCACGCTATTGTTCGTCTGG-3¢;PlAct-R,5¢-TCATCTCCTGGTCGAAGTCC-3¢;qp-PlAtg26b引物序列:qp-PlAtg26b-F,5¢-CGCA"CGAAATGAAGCTGTCT-3¢,qp-PlAtg26b-R,5¢-GGAGTACTTGAGCGGCTTGT-3¢。在AriaMx"Real-Time"PCR反應(yīng)儀上進行qRT-PCR分析,反應(yīng)體系:2×Q3"SYBR"qPCR"Master"Mix"(Universal)"10"μL,Primer"F"/"Primer"R各0.4"μL,cDNA"2"μL,ddH2O"7.2"μL。反應(yīng)程序:95"℃預(yù)變性30"s;95"℃變性10"s,60"℃退火30"s,循環(huán)40次。以菌絲階段基因表達水平為1,采用比較Ct值法(2–ΔΔCt法)分析PlATG26b在不同時期的相對表達量。每組樣品進行3次重復(fù)。
2.1""荔枝霜疫霉中Atg26同源蛋白的鑒定
為了鑒定荔枝霜疫霉中的Atg26同源蛋白,利用已報道的Atg26蛋白氨基酸序列,通過Blastp方法和HMM方法在荔枝霜疫霉數(shù)據(jù)庫中查找,將其結(jié)果取交集分析,最終確定6個Atg26同源蛋白。
通過pfam網(wǎng)站共獲得酵母Atg26蛋白的4個功能域(PF03033、PF00169、PF06722、PF02893),其中PF00169和PF02893組成PBD結(jié)構(gòu)域,PF03033和PF06722組成CAT結(jié)構(gòu)域。將4個功能域通過hmmsearch的結(jié)果取交集分析,并未在荔枝霜疫霉中發(fā)現(xiàn)同時具有4個功能域的蛋白,且Blastp結(jié)果中的6個蛋白均含有CAT結(jié)構(gòu)域中的PF03033和PF06722,而無PBD結(jié)構(gòu)域中的功能域(圖1)。有趣的是,在荔枝霜疫霉中未發(fā)現(xiàn)同時含PBD中PF00169和PF02893的蛋白,且含CAT結(jié)構(gòu)域中任一功能域的蛋白均不含PF00169和PF02893(圖1)。這一結(jié)果表明,荔枝霜疫霉Atg26與真菌中的同源蛋白在結(jié)構(gòu)域上差異極大。
通過在線工具ProtParam對6個候選蛋白進行理化性質(zhì)分析表明,6個候選蛋白的氨基酸數(shù)目在707~1503"aa之間,多數(shù)蛋白在1200"aa以上,其分子量(molecular"weight,"Mw)在96.66~167.14"kDa之間,等電點(isoelectric"point,"IP)在6.39~8.59之間,脂溶指數(shù)(aliphatic"index,"AI)在80.11~90.53之間,親水性平均值(GRAVY)均為負數(shù),具有親水性(表1)。通過在線工具SOPMA預(yù)測PlAtg26的二級結(jié)構(gòu),其二級結(jié)構(gòu)以無規(guī)則卷曲為主,6個同源蛋白均不含β-折疊(表2)。在CELLO上預(yù)測候選蛋白的亞細胞定位情況,6個候選蛋白分別定位在不同的細胞位置(表2)。由此可以看出荔枝霜疫霉中的Atg26具有多樣性,其可能參與多個細胞過程。
2.2""荔枝霜疫霉中Atg26結(jié)構(gòu)分析
通過分析荔枝霜疫霉及已知ATG26基因結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)FgATG26、AoATG26均具有3個內(nèi)含子,且其內(nèi)含子的分布也有一定規(guī)律。在荔枝霜疫霉中,除PlATG26a外,其余同源基因均含有1個或2個內(nèi)含子,且其內(nèi)含子分布差異極大,但大多位于5¢或3¢末端(圖2A)。
其他真菌中已知Atg26的PBD結(jié)構(gòu)域分布在N端,而CAT結(jié)構(gòu)域則在蛋白質(zhì)的C端。通過NCBI"Batch"CD-Search對荔枝霜疫霉和已知Atg26的保守功能域進行分析,發(fā)現(xiàn)與hmmsearch結(jié)果一致,與其他已知Atg26不同,在荔枝霜疫霉中Atg26只含有CAT結(jié)構(gòu)域而無PBD結(jié)構(gòu)域。在荔枝霜疫霉中,CAT結(jié)構(gòu)域均分布在Atg26蛋白的N端,但除PlAtg26a和PlAtg26f外,不同的同源蛋白的C端功能域具有顯著差異,多數(shù)是含有不同糖基轉(zhuǎn)移酶的催化結(jié)構(gòu)域。根據(jù)基因結(jié)構(gòu)和保守功能域的分析結(jié)果,荔枝霜疫霉的Atg26與其他真菌具有顯著差異,且其同源蛋白之間也具有多樣性,但是不同物種間Atg26中CAT結(jié)
構(gòu)域是保守的(圖2B)。
2.3""荔枝霜疫霉中Atg26的系統(tǒng)發(fā)育及保守基序分析
為了探究Atg26蛋白的進化特征,通過不同物種的Atg26同源蛋白建立系統(tǒng)發(fā)育樹做進化分析。進化關(guān)系分析表明,荔枝霜疫霉與大豆疫霉中的Atg26較為接近,二者存在對應(yīng)關(guān)系。擬南芥中的同源蛋白較多且都源自同一分支。真菌的Atg26與家鼠中的同源蛋白似乎來自于同一個祖先,而與擬南芥和卵菌都不同。有趣的是,PlAtg26與大豆疫霉中的Atg26同源蛋白親緣關(guān)系更近(圖3)。
通過MEME對荔枝霜疫霉中Atg26及其他物種中的同源蛋白的保守基序進行分析,發(fā)現(xiàn)卵菌中的同源蛋白都含有兩組保守基序,且其分布具有一定規(guī)律;而在真菌中,其保守基序多分布在蛋白質(zhì)的C端,N端含有少量保守基序,這一結(jié)果也與NCBI"Batch"CD-Search保守功能域的分析結(jié)果相似。擬南芥中的Atg26同源蛋白只含有一組保守基序,且多數(shù)分布規(guī)律一樣,與真菌同源蛋白的C端及卵菌同源蛋白的N端的保守基序具有相似的分布特征,該部分可能是UDP-葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶domain的編碼氨基酸序列。而在家鼠的同源蛋白中僅有個別保守基序(圖3)。綜上表明,荔枝霜疫霉中的Atg26同源蛋白之間具有多樣性,且不同物種中Atg26的CAT結(jié)構(gòu)域具有保守性,但PBD結(jié)構(gòu)域似乎是真菌中所特有的。
2.4""荔枝霜疫霉中Atg26蛋白互作預(yù)測分析
為了進一步分析荔枝霜疫霉中Atg26的功能,通過在線工具STRING預(yù)測惡疫霉(P."cactorum)中同源蛋白(表3)的互作蛋白網(wǎng)絡(luò)。通過STRING預(yù)測,發(fā)現(xiàn)惡疫霉中與PlAtg26同源蛋白具有強相互作用的蛋白質(zhì)基本一致(圖4)。根據(jù)STRING數(shù)據(jù)庫分析發(fā)現(xiàn),這些蛋白位于細胞質(zhì)或膜上,集中在細胞代謝過程中,也有少部分參與生物合成過程,具有催化活性、氧化還原活性或結(jié)合能力。
2.5""荔枝霜疫霉中Atg26蛋白分子對接分析
為了進一步確定荔枝霜疫霉中Atg26的蛋白功能,對惡疫霉中的分析結(jié)果在荔枝霜疫霉中進行分子對接分析。通過Blastp在荔枝霜疫霉數(shù)據(jù)庫中查找10個互作蛋白的同源蛋白,只有PC110_g10050、PC110_g2990、PC110_g5868和PC110_g8861具有對應(yīng)蛋白(Pl_g7383.t1、Pl_g9795.t1、Pl_g4663.t2、Pl_g8511.t1)。通過在線工具SWISS-MODEL對荔枝霜疫霉中的Atg26蛋白和上述4個蛋白進行同源建模。選擇其中模板覆蓋率較高的晶體結(jié)構(gòu)(圖5),通過GRAMM對其進行分子對接,在PDBePISA上分析分子對接結(jié)果,并通過PyMOL對其進行可視化(圖6)。
PDBePISA結(jié)果顯示,PlAtg26a與Pl_g7383之間自由能為–2.4"kcal/mol,PlAtg26f與Pl_g9795之間自由能為–15.2"kcal/mol,2個蛋白之間通過多個氫鍵和鹽橋作用進行連接,并通過PyMOL"對氫鍵作用進行可視化。PyMOL結(jié)果還顯示,2個蛋白之間具有多個相互作用的氨基酸殘基位點。這一結(jié)果表明,荔枝霜疫霉中Atg26蛋白的互作網(wǎng)絡(luò)可參考惡疫霉中的分析結(jié)果,由此推斷,荔枝霜疫霉中Atg26可能參與其細胞代謝過程,并具有催化活性。
2.6""PlATG26b基因克隆及磷酸化位點、信號肽和跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測
由于PlAtg26缺乏GRAM功能域(該結(jié)構(gòu)域在酵母中負責(zé)PAS定位),我們推測其可能通過其他途徑實現(xiàn)定位。通過序列分析發(fā)現(xiàn),PlAtg26b/"c/d這三個亞型具有潛在的Atg8相互作用基序(Atg8-interacting"motif,"AIM),這可能是PlAtg26實現(xiàn)功能替代的關(guān)鍵結(jié)構(gòu)[28]。因此,該試驗以PlAtg26b為例,進一步分析PlAtg26的功能。以荔枝霜疫霉菌絲DNA為模板,PlATG26b-F/R為引物對PlAtg26b編碼區(qū)進行擴增,擴增產(chǎn)物共4857"bp,與之前轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果一致(圖7)。對其蛋白質(zhì)序列進一步分析發(fā)現(xiàn),PlAtg26b蛋白不含信號肽及跨膜結(jié)構(gòu)域,但具有多個磷酸化位點,其中以絲氨酸和蘇氨酸為主(圖8)。PlAtg26b可能通過蛋白質(zhì)磷酸化-去磷酸化反應(yīng)進行信號傳導(dǎo),調(diào)控自噬的發(fā)生。
2.7""PlATG26b基因在荔枝霜疫霉不同階段的表達水平分析
為進一步分析Atg26在荔枝霜疫霉中不同時期的作用,以荔枝霜疫霉菌絲(MY)階段的樣本作為對照,通過qRT-PCR分析PlATG26b在孢子囊(SP)、游動孢子(ZO)及侵染12、24、48、60"h的表達量發(fā)現(xiàn),在游動孢子時期和侵染初期(12"h),PlATG26b表達量上調(diào),而在孢子囊時期和侵染后期,PlATG26b的表達量并無明顯變化(圖9)。這一結(jié)果也說明Atg26在荔枝霜疫霉的無性繁殖及侵染階段發(fā)揮重要作用。
細胞自噬是真核生物體內(nèi)一種自我降解的過程,對于在發(fā)育的關(guān)鍵時期平衡能量來源和應(yīng)對營養(yǎng)應(yīng)激非常重要[29-30]。甾醇苷(sterol"glycosides)廣泛存在于細菌、真菌、植物和動物中,并參與許多基本的細胞功能[31-32]。Atg26(Ugt51)作為一種甾醇葡萄糖基轉(zhuǎn)移酶,能夠?qū)⒛承╃薮嫁D(zhuǎn)化成甾醇葡萄糖苷(SG)[12]。在畢赤酵母(P."pastoris)中,冗余的過氧化物酶體會通過巨自噬和微自噬2種方式降解。在過氧化物酶體微自噬過程中,冗余的過氧化物酶體會被液泡隔離膜(vacuolar"sequestering"membranes,VSMs)吞沒,而VSMs的形成需要微噬膜裝置(micropexophagic"membrane"apparatus,MIPA)的輔助[33-34]。SG的合成可以促進PAS的成熟及MIPA位點的形成,并增強過氧化物酶體的選擇性降解[35-37]。
荔枝霜疫霉屬于卵菌門(Oomycetes),在系統(tǒng)發(fā)育上與真菌差異極大。在畢赤酵母中,PBD結(jié)構(gòu)域和CAT結(jié)構(gòu)域都是Atg26介導(dǎo)過氧化物酶體自噬所必需的[35]。但是在荔枝霜疫霉數(shù)據(jù)庫中,并未發(fā)現(xiàn)同時含有PBD結(jié)構(gòu)域和CAT結(jié)構(gòu)域的蛋白,通過Blastp得到的同源蛋白只含有CAT結(jié)構(gòu)域。在進一步對Atg26同源蛋白的保守基序分析時發(fā)現(xiàn),除真菌外,大豆疫霉、擬南芥以及家鼠中也未發(fā)現(xiàn)含有PBD結(jié)構(gòu)域的Atg26同源蛋白。在畢赤酵母中,Atg26通過其PBD結(jié)構(gòu)域中的GRAM功能域與磷脂酰肌醇4’-磷酸(Phosphatidylinositol"4’-phosphate,"PI4P)結(jié)合,從而定位于MIPA,并通過其催化結(jié)構(gòu)域調(diào)控SG合成[35-36]。與大豆疫霉、致病疫霉和擬南芥相同,荔枝霜疫霉中的Atg26存在多個同源蛋白且無GRAM結(jié)構(gòu)域,但通過PlAtg26的亞細胞定位分析發(fā)現(xiàn),其同源蛋白分布在細胞的多個位置,我們推測在這些物種中Atg26可能通過其他未知的方式進行定位。在釀酒酵母中,Atg26具有與PpAtg26序列相似的3個相同功能域(PH、GRAM和UDPGT),但是ScAtg26的缺失并未影響其prApe1的成熟、巨自噬以及過氧化物酶體自噬,這也表明了不同生物體之間同源基因功能的差異性[20]。
PlAtg26互作蛋白預(yù)測結(jié)果顯示,其相互作用蛋白集中在細胞代謝過程,且具有催化活性及結(jié)合能力,此外,PlAtg26b/c/d具有潛在的AIM基序,也暗示著PlAtg26可能通過其互作蛋白來替代GRAM功能域的結(jié)合能力。蛋白質(zhì)的翻譯后修飾(post"translational"modifications,PTMs)參與多種細胞活動,磷酸化途徑是研究最廣泛的PTMs之一,其中,AMPK(AMP"activated"protein"kinase)是自噬信號傳導(dǎo)的重要因子[38-40]。通過生物信息學(xué)分析,在PlAtg26b蛋白中含有多個磷酸化位點,其可能通過磷酸化-去磷酸化反應(yīng)進行自噬信號傳導(dǎo),調(diào)控荔枝霜疫霉的細胞活動。據(jù)報道,荔枝霜疫霉中的自噬相關(guān)蛋白大多數(shù)在游動孢子時期顯著上調(diào)表達[15]。在本研究中,與菌絲相比,PlATG26b在游動孢子時期和侵染12"h上調(diào)表達,但是在孢子囊時期及侵染24~60"h的各階段其表達量未明顯提高。這也說明在荔枝霜疫霉中,Atg26對其生長發(fā)育及致病力具有重要影響。
本研究通過生物信息學(xué)鑒定了荔枝霜疫霉中的Atg26同源蛋白,并發(fā)現(xiàn)該蛋白與其他真菌中Atg26同源蛋白在結(jié)構(gòu)上具有明顯差異,暗示了Atg26在不同物種中的功能差異性。通過qRT-PCR分析發(fā)現(xiàn),PlATG26b在荔枝霜疫霉的無性繁殖階段及侵染初期具有重要作用。后續(xù)將進一步研究該基因功能,以便對荔枝霜疫霉病的發(fā)生和傳播進行有效的預(yù)防和控制。
參考文獻
QI"W"E,"CHEN"H"B,"LI"J"X."Status,"trend"and"countermeasures"of"development"of"litchi"industry"in"the"mainland"of"China"in"2022[J]."Guangdong"Agricultural"Sciences,"2023,"50(2):"147-155."(in"Chinese)
Cai"X"Q,"Lin"N,"Chen"W,"Hu"F"P."Biological"characteristics"of"Peronophythora"litchii[J]."Chinese"Journal"of"Tropical"Crops,"2009,"30(9):"1226-1231."(in"Chinese)
Yang"D"D."Occurrence"and"control"of"litchi"downy"blight"caused"by"Peronophythora"litchii[J]."Plant"Health"and"Medicine,"2015,"28(5):"2."(in"Chinese)
Lyu"L,"Yang"C"D,"Zhang"X,"Yu"G,"Chen"T"X,"Chen"Q"H."Effect"of"TOR"inhibitor"rapamycin"on"growth,"development,"and"autophagy"of"Peronophythora"litchii[J]."Fujian"Journal"of"Agricultural"Sciences,"2022,"37(11):"6."(in"Chinese)
Huang"H,"Wang"C"P,"Xu"D"Y."Studies"on"Peronophythora"litchii[J]."Acta"Mycologica"Sinica,"1983,"2(4):"201-206."(in"Chinese)
Yu"Z,"Wang"T,"Song"Y"J,"Chen"L,"Wang"Z,"Ma"X"J."Advances"in"research"methods"of"cellular"autophagy[J]."Chinese"Journal"of"Cellular"and"Molecular"Immunology,"2019,"35(9):"849-854."(in"Chinese)
[13]"KIKUMA"T,"TADOKORO"T,"MARUYAMA"J"I,"KITAMOTO"K."AoAtg26,"a"putative"sterol"glucosyltransferase,"is"required"for"autophagic"degradation"of"peroxisomes,"mitochondria,"and"nuclei"in"the"filamentous"fungus"Aspergillus"oryzae[J]."Bioscience"Biotechnology"and"Biochemistry,"2017,"81(2):"384-395.
[14]"ASAKURA"M,"NINOMIYA"S,"SUGIMOTO"M,"OKU"M,"YAMASHITA"S,"OKUNO"T,"SAKAI"Y,"TAKANO"Y."Atg26-mediated"pexophagy"is"required"for"host"invasion"by"the"plant"pathogenic"fungus"Colletotrichum"orbiculare[J]."Plant"Cell,"2009,"21(4):"1291-1304.
[15]"王榮波,"陳姝樽,"郭朦朦,"李文強,"劉裴清,"李本金,"翁啟勇,"陳慶河."荔枝霜疫霉自噬相關(guān)基因的鑒定與表達分析[J].nbsp;植物病理學(xué)報,"52(3):"310-320.
Wang"R"B,"Chen"S"Z,"Guo"M"M,"Li"W"Q,"Liu"P"Q,"Li"B"J,"Weng"Q"Y,"Chen"Q"H."Identification"and"expression"analysis"of"autophagy-related"genes"in"Peronophythora"litchi[J]."Acta"Phytopathologica"Sinica,"52(3):"310-320."(in"Chinese)
[16]"YANG"C,"LUO"M"F,"ZHANG"X,"YE"L"L,"YU"G,"LYU"Y,"CHEN"Y,"CHEN"T"X,"WANG"X"J,"FENG"W"Z,"CHEN"Q"H."Autophagy-related"protein"PlAtg3"participates"in"vegetative"growth,"sporangial"cleavage,"autophagy"and"pathogenicity"of"Peronophythora"litchii[J]."Journal"of"Integrative"Agriculture,"2024,"23(11):"3788-3800.
[17]"LYU"L,"YANG"C,"ZHANG"X,"CHEN"T,"LUO"M,"YU"G,"CHEN"Q."Autophagy-related"protein"PlATG2"regulates"the"vegetative"growth,"sporangial"cleavage,"autophagosome"formation,"and"pathogenicity"of"Peronophythora"litchii[J]."Virulence,"2024,"15(1):"2322183.
[18]"YU"G,"LI"W,"YANG"C,"ZHANG"X,"LUO"M,"CHEN"T,"WANG"X,"WANG"R,"CHEN"Q."PlAtg8-mediated"autophagy"regulates"vegetative"growth,"sporangial"cleavage,"and"pathogenesis"in"Peronophythora"litchii[J]."Microbiology"Spectrum,"2024,"12(1):"e0353123.
[19]"陳泰旭,"楊成東,"于戈,"羅曼非,"張雪,"呂林,"陳慶河."自噬相關(guān)基因PlATG12對荔枝霜疫霉生長發(fā)育和致病性的影響[J]."農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報,"2024,"32(9):"2137-2149.
CHEN"T"X,"YANG"C"D,"YU"G,"LUO"M"F,"ZHANG"X,""LYU"L,"CHEN"Q"H."Effect"of"autophagy-related"gene"PlATG12"on"the"growth,"developmentand"pathogenicity"of"Peronophythora"litchii[J]."Journal"of"Agricultural"Biotechnology,"2024,"32(9):"2137-2149."(in"Chinese)
[20]"CAO"Y,"KLIONSKY"D"J."Atg26"is"not"involved"in"autophagy-related"pathways"in"Saccharomyces"cerevisiae[J]."Autophagy,"2007,nbsp;3(1):"17-20.
[21]"CHEN"X"L,"WANG"Z,"LIU"C."Roles"of"peroxisomes"in"the"rice"blast"fungus[J]."Biomed"Research"International,"2016,"2016(1):"9343417.
[22]"LV"W,"WANG"C,"YANG"N,"QUE"Y,"TALBOT"N"J,"WANG"Z."Genome-wide"functional"analysis"reveals"that"autophagy"is"necessary"for"growth,"sporulation,"deoxynivalenol"production"and"virulence"in"Fusarium"graminearum[J]."Scientific"Reports,"2017,"7(1):"11062.
[23]"CHEN"C,"CHEN"H,"ZHANG"Y,"THOMAS"H"R,"FRANK"M"H,"HE"Y,"XIA"R."TBtools:"an"integrative"toolkit"developed"for"interactive"analyses"of"big"biological"data[J]."Molecular"Plant,"2020,"13(8):"1194-1202.
[24]"WATERHOUSE"A,"BERTONI"M,"BIENERT"S,"STUDER"G,"TAURIELLO"G,"GUMIENNY"R,"HEER"FT,"DE"BEER"T"A"P,"REMPFER"C,"BORDOLI"L,"LEPORE"R,"SCHWEDE"T."SWISS-MODEL:"homology"modelling"of"protein"structures"and"complexes[J]."Nucleic"Acids"Research,"2018,"46(W1):"W296-W303.
[25]"ZHANG"D,"GAO"F,"JAKOVLI?"I,"ZOU"H,"ZHANG"J,"LI"W"X,"WANG"G"T."PhyloSuite:"an"integrated"and"scalable"desktop"platform"for"streamlined"molecular"sequence"data"management"and"evolutionary"phylogenetics"studies[J]."Molecular"Ecology"Resources,"2020,"20(1):"348-355.
[26]"SZKLARCZYK"D,"FRANCESCHINI"A,"WYDER"S,"FORSLUND"K,"HELLER"D,"HUERTA-CEPAS"J,"SIMONOVIC"M,"ROTH"A,"SANTOS"A,"TSAFOU"K"P,"KUHN"M,"BORK"P,"JENSEN"L"J,"VON"MERING"C."STRING"v10:"protein-protein"interaction"networks,"integrated"over"the"tree"of"life[J]."Nucleic"Acids"Research,"2015,"43(DI):"D447-452.
[27]"SINGH"A,"COPELAND"M"M,"KUNDROTAS"P"J,"VAKSER"I"A."GRAMM"Web"server"for"protein"docking[J]."Methods"in"Molecular"Biology,"2024,"2714:"101-112.
[28]"Rogov"V"V,"Nezis"I"P,"Tsapras"P,"Zhang"H,"Dagdas"Y,"Noda"NN,"Nakatogawa"H,"Wirth"M,"Mouilleron"S,"McEwan"D"G,"Behrends"C,"Deretic"V,"Elazar"Z,"TOOZE"S"A,"DIKIC"I,"LAMARK"T,"JOHANSEN"T."Atg8"family"proteins,"LIR/AIM"motifs"and"other"interaction"modes[J]."Autophagy"Reports,"2023,"2(1):"27694127.
[29]"GOULD"S"J,"KELLER"G"A,"SUBRAMANI"S."Identification"of"peroxisomal"targeting"signals"located"at"the"carboxy"terminus"of"four"peroxisomal"proteins[J]."Journal"of"Cell"Biology,"1988,"107(3):"897-905.
[30]"GLICK"D,"BARTH"S,"MACLEOD"K"F."Autophagy:"cellular"and"molecular"mechanisms[J]."Journal"of"Pathology,"2010,"221(1):"3-12.
[31]"MADINA"B"R,"SHARMA"L"K,"CHATURVEDI"P,"SANGWAN"R"S,"TULI"R."Purification"and"characterization"of"a"novel"glucosyltransferase"specific"to"27"beta-hydroxy"steroidal"lactones"from"Withania"somnifera"and"its"role"in"stress"responses[J]."Acta"Biochimica"et"Biophysica"Sinica,"2007,"1774(9):"1199-1207.
[32]"THUAN"N"H,"YAMAGUCHI"T,"LEE"J"H,"SOHNG"J"K."Characterization"of"sterol"glucosyltransferase"from"Salinispora"tropica"CNB-440:"potential"enzyme"for"the"biosynthesis"of"sitosteryl"glucoside[J]."Enzyme"and"Microbial"Technology,"2013,"52(4/5):"234-240.
[33]"KIEL"J"A,"KOMDUUR"J"A,"VAN"DER"KLEI"I"J,"VEENHUIS"M."Macropexophagy"in"Hansenula"polymorpha:"facts"and"views[J]."FEBS"Letters,"2003,"549(1/3):"1-6.
[34]"DUNN"WA"J"R,"CREGG"J"M,"KIEL"J"A,"VAN"DER"KLEI"I"J,"OKU"M,"SAKAI"Y,"SIBIRNY"A"A,"STASYK"O"V,"VEENHUIS"M."Pexophagy:"the"selective"autophagy"of"peroxisomes[J]."Autophagy,"2005,"1(2):"75-83.
[35]"OKU"M,"WARNECKE"D,"NODA"T,"MüLLER"F,"HEINZ"E,"MUKAIYAMA"H,"KATO"N,"SAKAI"Y."Peroxisome"degradation"requires"catalytically"active"sterol"glucosyltransferase"with"a"GRAM"domain[J]."EMBO"Journal,"2003,"22(13):"3231-3241.
[36]"YAMASHITA"S,"OKU"M,"WASADA"Y,"ANO"Y,"SAKAI"Y."PI4P-signaling"pathway"for"the"synthesis"of"a"nascent"membrane"structure"in"selective"autophagy[J]."Journal"of"Cell"Biology,"2006,"173(5):"709-717.
[37]"NAZARKO"T"Y,"POLUPANOV"A"S,"MANJITHAYA"R"R,"SUBRAMANI"S,"SIBIRNY"A"A."The"requirement"of"sterol"glucoside"for"pexophagy"in"yeast"is"dependent"on"the"species"and"nature"of"peroxisome"inducers[J]."Molecular"Biology"of"the"Cell,"2007,"18(1):"106-118.
[38]"SINGH"V,"RAM"M,"KUMAR"R,"PRASAD"R,"ROY"B"K,"SINGH"K"K."Phosphorylation:"implications"in"cancer[J]."Protein"Journal,"2017,"36(1):"1-6.
[39]"PAQUETTE"M,"EL-HOUJEIRI"L"C,"ZIRDEN"L,"PUUSTINEN"P,"BLANCHETTE"P,"JEONG"H,"DEJGAARD"K,"SIEGEL"P"M,"PAUSE"A."AMPK-dependent"phosphorylation"is"required"for"transcriptional"activation"of"TFEB"and"TFE3[J]."Autophagy,"2021,"17(12):"3957-3975.
[40]"KIM"J,"KUNDU"M,"VIOLLET"B,"GUAN"K"L."AMPK"and"mTOR"regulate"autophagy"through"direct"phosphorylation"of"Ulk1[J]."Nature"Reviews"Molecular"Cell"Biology,"2011,"13(2):"132-141.