乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中抗氧化酶的影響

摘要：前期研究顯示乙烯利能緩解干旱脅迫下草地早熟禾（Poa pratensis L.）的受脅迫程度，但其作用機(jī)制未知。為探究抗氧化酶在乙烯利對草地早熟禾水分脅迫響應(yīng)中的作用，利用草地早熟禾品種‘Midnight’進(jìn)行水分脅迫和脅迫后復(fù)水處理，以正常澆水作為對照（CK），研究乙烯利（ETH）、水分脅迫（WS）和乙烯利水分脅迫（EWS）4種處理下草地早熟禾的生理指標(biāo)和各項抗氧化酶活性變化，分析抗氧化酶在乙烯利緩解水分脅迫中的作用。結(jié)果表明：乙烯利在水分脅迫條件下顯著提高了草地早熟禾過氧化物酶（Peroxidase，POD）以及谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione peroxidase，GPX）活性；在復(fù)水恢復(fù)階段，乙烯利大幅提升GPX和脫氫抗壞血酸還原酶（Dehydroascorbate reductase，DHAR）活性。綜上所述，乙烯利對草地早熟禾水分脅迫下POD，GPX，DHAR抗氧化酶的活性提高產(chǎn)生積極作用，對其他抗氧化酶活性的影響不顯著。

關(guān)鍵詞：草地早熟禾；乙烯利；抗氧化酶；水分脅迫

中圖分類號：Q945.78""" 文獻(xiàn)標(biāo)識碼：A"""" 文章編號：1007-0435（2024）08-2540-08

Effects of Ethephon on Antioxidant Enzymes in Kentucky Bluegrass

under Water Stress and Rewatering

LIU Yue-yue1#， GAO Ya-nan1，2#， LU Shuang1， ZHOU Sheng-feng1，

XU Xin-yu1， LIU Zhuo-fan1， XU Li-xin1*

（1. School of Grassland Science， Beijing Forestry University， Beijing 100083， China; 2. College of Grassland Science and

Technology， China Agricultural University， Beijing 100193， China）

Abstract：Previous studies have shown that ethephon can promote drought tolerance of Poa pratensis. However，the underlying mechanism is unknown. In order to explore the effect of ethephon on antioxidant enzymes in Kentucky bluegrass under water shortage conditions，Kentucky bluegrass （Poa pratensis L.） variety ‘Midnight’ was used for water stress and post rewatering treatment. Watering plants （CK），ethephon pre-treated plants （ETH），water stressed plants （WS） and ethephon pre-treated plants with water stress （EWS） were used to investigate changes in physiological indices and activities of antioxidant enzymes in Kentucky bluegrass. Main antioxidant enzyme responses to ethephon treatment under water stressed conditions were analyzed. Results showed that ethephon significantly increased the activities of peroxidase （POD） and glutathione peroxidase （GPX） in Kentucky bluegrass under water stress，and ethephon dramatically increased the activities of GPX and dehydroascorbate reductase （DHAR） during rewatering. In conclusion，ethephon had a positive role on Kentucky bluegrass drought tolerance by promoting activities of POD，GPX and DHAR.

Key words：Kentucky bluegrass;Ethephon;Antioxidant enzyme;Water stress

大量研究表明，全球約有1/3的地區(qū)處在干旱狀態(tài)，且年總降水量呈下降趨勢［1］。缺水會使植物產(chǎn)生大量活性氧（Reactive oxygen species，ROS），影響氧化還原平衡，從而造成細(xì)胞損傷［2］，對植物正常生長發(fā)育產(chǎn)生影響。此時植物體內(nèi)的抗氧化酶系統(tǒng)通過增加各種酶活性清除ROS，緩解逆境對于植物的不利影響，包括超氧化物歧化酶（Superoxide dismutase，SOD）、過氧化氫酶（Catalase，CAT）、過氧化物酶（Peroxidase，POD）以及抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)（Ascorbate-glutathione cycle，AsA-GSH）過程中的多種抗氧化酶［3］。

AsA-GSH循環(huán)是植物體內(nèi)抗氧化的重要機(jī)制，主要包括抗壞血酸過氧化物酶（Ascorbic acid peroxidase，APX）、谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione peroxidase，GPX）、谷胱甘肽還原酶（Glutathione reductase，GR）、脫氫抗壞血酸還原酶（Dehydroascorbate reductase，DHAR）以及單脫氫抗壞血酸還原酶（Monodehydroascorbate reductase，MDHAR）等幾種酶，在其共同作用下將產(chǎn)生的主要氧化物質(zhì)H2O2轉(zhuǎn)化為H2O，達(dá)到減少ROS損傷的目的［4］。

水分是草坪草生長發(fā)育的關(guān)鍵因子［5］，利用各種技術(shù)手段提高草坪草的抗旱性具有十分重要的實(shí)踐意義。草地早熟禾（Poa pratensis L.）作為冷季型草坪草，分布廣泛，具有耐修剪、葉片質(zhì)地細(xì)膩等優(yōu)良特性［6］，但抗旱性、耐鹽性等抗逆性相對較差。內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)通過施加適宜濃度的肌醇，降低或升高部分滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量，達(dá)到緩解鹽害對草地早熟禾脅迫損傷的作用［7］。陳潤娟等人［8］發(fā)現(xiàn)NO能夠促進(jìn)低溫脅迫下草地早熟禾抗氧化酶活性的提高，增強(qiáng)了低溫脅迫的適應(yīng)能力。隋永超等人［9］驗證了利用乙烯利可以提高草地早熟禾的抗旱性。

乙烯利（Ethephon）作為植物生長激素乙烯的生成劑，外施乙烯利可迅速轉(zhuǎn)化成乙烯，對植物的生長發(fā)育產(chǎn)生影響［10-11］。近幾年，乙烯利應(yīng)用研究大多集中在促進(jìn)作物、蔬菜的抗逆性和成熟度方面［12-13］。乙烯利在提升植物抗逆性，尤其是抗旱性方面的具體作用機(jī)制研究較少。部分學(xué)者認(rèn)為乙烯利處理會啟動植物防御反應(yīng)，引起植物相對含水量、電導(dǎo)率和丙二醛含量等生理指標(biāo)變化，從而提高其抵抗干旱脅迫的能力［8］。也有研究顯示，噴灑乙烯利抑制草坪草生長，同時控制干物質(zhì)積累，從而利用類似干旱逃避的策略增強(qiáng)干旱適應(yīng)性［14］。為進(jìn)一步解釋乙烯利對水分脅迫下草地早熟禾的作用機(jī)理，探究抗氧化酶在此過程中的作用，本研究檢測了草地早熟禾水分脅迫及脅迫后復(fù)水恢復(fù)過程中多個抗氧化酶的活性變化，分析和篩選響應(yīng)乙烯利處理的抗氧化酶，為解析乙烯利提升草坪草抗旱性機(jī)制提供基礎(chǔ)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

北京中農(nóng)克勞沃運(yùn)動場景觀工程有限公司提供草地早熟禾‘Midnight’品種作為試驗材料。

1.2 試驗設(shè)計

為了保證試驗的成功，我們在人工氣候箱中對草地早熟禾進(jìn)行養(yǎng)護(hù)，養(yǎng)護(hù)條件包括：光照強(qiáng)度17 600 Lux，濕度70% RH，溫度為23℃和18℃，分別光照和黑暗處理14 h和10 h。為了提供適合草地早熟禾生長的基質(zhì)，將土壤和沙子按照1.5∶1的比例混合，每平方米的土壤基質(zhì)上播種15 g的草地早熟禾［15］。為確保草種出苗，每天早晚給予適量的水澆灌，出苗后，立即將其移栽至大小為20 cm×16 cm的花盆中，以便進(jìn)行日常修剪和澆水。草種生長過程中減少灌溉次數(shù)，并補(bǔ)充1×Hoagland營養(yǎng)液（購買于北京酷來博科技有限公司，NS1010-50 mL），當(dāng)其生長至成坪階段，進(jìn)行水分脅迫處理。

選取20盆長勢良好的草地早熟禾盆栽分別進(jìn)行正常澆水處理（CK）、乙烯利（ETH）處理、水分脅迫（WS）處理和乙烯利水分脅迫（EWS）處理，每組處理5個重復(fù)。處理開始后，4種處理均噴施過量蒸餾水，ETH和EWS處理須在噴施過量蒸餾水后噴施乙烯利溶液，直至葉片凝結(jié)水珠。乙烯利濃度的選擇依據(jù)韓露［16］的研究，選擇最有利于草地早熟禾抗旱性提高的200 mg·L-1。噴施完畢后，對草坪草葉片進(jìn)行第一次取樣，以便后續(xù)指標(biāo)測定。

處理期間，CK和ETH處理組正常澆水，保持土壤含水量穩(wěn)定在40%，WS和EWS不澆水，當(dāng)土壤含水量從最初的40%逐漸下降第10 d的4%時，進(jìn)行第二次取樣。最后進(jìn)行復(fù)水處理，當(dāng)RWC恢復(fù)到處理前水平時完成第三次的取樣（復(fù)水2 d）。在此過程中各組處理土壤含水量的變化，見表1［15］。取樣時間均在早上8：30—9：00之間。

1.3 測定指標(biāo)及方法

使用時間域反射（Time Domain Reflectometry，TDR）方法對土壤含水量進(jìn)行測定，水分速測儀TZS-Ⅰ購自浙江托普儀器有限公司；葉片相對含水量（Relative water content，RWC）采用傳統(tǒng)的烘干法進(jìn)行測定［17］；電導(dǎo)率（Electrolyte leaking，EL）使用Zhang等人［18］的方法用電導(dǎo)儀進(jìn)行測定；采用硫代巴比妥酸法進(jìn)行丙二醛（Malondialdechyde，MDA）含量的測定［19］；使用高俊風(fēng)［20］的方法對超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）活性進(jìn)行測定；過氧化氫酶（Catalase，CAT）、過氧化物酶（Peroxidase，POD）和抗壞血酸過氧化物酶（Ascorbic acid peroxidase，APX）活性測定分別采用紫外吸收法［21］、愈創(chuàng)木酚法［22］和Nakano and Asada［23］的方法進(jìn)行測定；使用從蘇州科明生物技術(shù)有限公司購買的試劑盒進(jìn)行谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione peroxidase，GPX）活性的測定；采用許立新［24］的方法，將試劑等比例減小調(diào)整為1 mL反應(yīng)體系進(jìn)行谷胱甘肽還原酶（Glutathione reductase，GR）、脫氫抗壞血酸還原酶（Dehydroascorbate reductase，DHAR）和單脫氫抗壞血酸還原酶（Monodehydroascorbate reductase，MDHAR）活性測定。

1.4 數(shù)據(jù)分析

為了對數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析和單因素比較，使用IBM SPSS Statistics 26軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析，并采用平均值和標(biāo)準(zhǔn)誤差來呈現(xiàn)試驗結(jié)果，最終使用Origin 2019b軟件制圖來直觀顯示數(shù)據(jù)結(jié)果。

2 結(jié)果與分析

2.1 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中葉片相對含水量的影響

如圖1所示，ETH處理下的RWC在第10 d和第12 d與CK相比均無顯著差異。在第10 d，WS和EWS處理下的RWC與CK相比均顯著下降（Plt;0.05），CK處理下的RWC分別是兩種處理的2.45倍和2.32倍。但與WS相比，處理期間EWS處理下草地早熟禾的RWC并未顯著升高，表明噴施乙烯利對提高草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中RWC無作用。

2.2 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中葉片膜透性的影響

如圖2所示，0天時，四種處理下的EL（圖2a），MDA（圖2b）含量無顯著差別。ETH處理下，EL和MDA在第10 d和第12 d與CK相比均無顯著差異。在第10 d時，WS和EWS處理下草地早熟禾EL是CK處理的3.42倍和2.78倍，均顯著上升（Plt;0.05）。但EWS處理下的EL顯著低于WS處理（Plt;0.05），且WS處理下的EL是EWS處理下的1.23倍，說明乙烯利對減輕草地早熟禾葉片在水分脅迫下細(xì)胞膜電解質(zhì)外滲的現(xiàn)象有一定作用，有助于草地早熟禾更好地適應(yīng)水分脅迫。復(fù)水處理后，EWS處理下的MDA含量顯著低于WS處理（Plt;0.05），WS處理下MDA含量是EWS處理下的1.24倍。表明乙烯利能夠在草地早熟禾水分脅迫的復(fù)水恢復(fù)階段，起到緩解細(xì)胞膜過氧化損傷的作用。

2.3 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中抗氧化酶活性的影響

2.3.1 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中SOD和CAT活性的影響 如圖3所示，經(jīng)過ETH處理后，SOD（圖3a）和CAT（圖3b）活性在處理第10 d和第12 d較CK均無顯著差異，表明在正常澆水條件下，乙烯利對草地早熟禾這兩種酶活性無調(diào)控作用。與CK相比，WS和EWS處理10 d后草地早熟禾葉片中SOD活性顯著降低（Plt;0.05），CK處理下的SOD活性分別是兩組處理的2.02倍和1.90倍；CAT活性則顯著升高（Plt;0.05），兩組處理的CAT活性分別為CK處理的1.54倍和1.66倍；但兩組處理之間SOD和CAT活性并無顯著差異。在復(fù)水恢復(fù)后，兩種酶的活性均恢復(fù)到對照組水平，這說明在水分脅迫期間，噴施乙烯利對調(diào)節(jié)草地早熟禾水分脅迫和復(fù)水過程中的SOD和CAT活性沒有作用。

2.3.2 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中POD和APX活性的影響 如圖4所示，與CK相比，WS處理10 d時草地早熟禾葉片中POD（圖4a）和APX（圖4b）活性顯著增加（Plt;0.05），且兩種酶活性較CK處理分別增加2.25倍和2.45倍；第10 d時，EWS處理下POD活性明顯高于其他三種處理（Plt;0.05），分別是CK處理的3.94倍，ETH處理的3.01倍和WS處理的1.75倍，但EWS處理下的APX活性與CK相比并未顯著改變。復(fù)水恢復(fù)后，WS和EWS處理后的兩種酶活性均下降至對照組水平。表明噴施乙烯利能夠顯著增強(qiáng)草地早熟禾在水分脅迫下POD的活性，從而提高草地早熟禾干旱脅迫下的自由基清除能力，APX無此作用。

2.3.3 噴施乙烯利對草地早熟禾十分脅迫及復(fù)水過程中GPX和GR活性的影響 如圖5所示，與CK相比，ETH處理下第10 d和12 d的GPX（圖5a）和GR（圖5b）活性均顯著升高（Plt;0.05），其中GPX活性在10 d和12 d分別增加了1.59倍和2.11倍，GR活性分別增加了1.94倍和1.44倍。說明噴施乙烯利有助于提高草地早熟禾中這兩種酶的活性。10 d后，WS處理下GPX活性與CK相比顯著降低（Plt;0.05），CK處理的GPX活性是WS處理的6.51倍；EWS處理酶活性是WS處理酶活性的4.11倍，顯著高于WS處理（Plt;0.05）。復(fù)水后，WS處理下的GPX活性恢復(fù)至對照水平，但依舊顯著低于EWS處理（Plt;0.05），此時EWS處理下GPX活性是WS處理的1.61倍。說明乙烯利處理能夠提高草地早熟禾正常澆水條件、水分脅迫及復(fù)水恢復(fù)階段下的GPX活性水平，從而提高草地早熟禾自由基清除能力。但GR活性在WS和EWS處理下無顯著變化，復(fù)水處理后得到相同的結(jié)果，表明GR對清除草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水恢復(fù)階段產(chǎn)生的自由基無明顯作用。

2.3.4 噴施乙烯利對草地早熟禾水分脅迫及復(fù)水過程中DHAR和MDHAR活性的影響 如圖6所示，第10 d時，各處理下DHAR（圖6a）活性均無顯著差別。復(fù)水后，EWS處理下的DHAR活性是WS處理下的是1.77倍，顯著高于WS處理（Plt;0.05）；但較CK并無顯著升高。說明草地早熟禾中DHAR對水分脅迫不響應(yīng)，但通過葉片噴施乙烯利，可以提高其在復(fù)水恢復(fù)過程中的活性，從而促進(jìn)草地早熟禾逆境損傷的修復(fù)。ETH處理第10 d和第12 d，MDHAR（圖6b）活性與CK相比均無顯著差異，表明正常澆水條件下，乙烯利對MDHAR活性沒有影響。與WS處理組相比，第10 d以及復(fù)水后EWS處理下草地早熟禾葉片中MDHAR活性無明顯變化，表明乙烯利對水分脅迫下MDHAR活性無促進(jìn)作用。

3 討論

植物受到干旱脅迫時，通過調(diào)節(jié)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)和抗氧化酶活性等機(jī)制提高自身抵抗逆境的能力［24］。一定程度的缺水脅迫，會導(dǎo)致RWC降低、EL及MDA上升［25-26］。本研究中，草地早熟禾生理指標(biāo)響應(yīng)干旱情況與其他研究類似，不同的是，本研究中草地早熟禾的RWC降低到約40%，相比其他草地早熟禾耐旱性研究［27-28］，本研究處理屬于中度水分脅迫，中度水分脅迫降低了SOD活性，促進(jìn)了CAT和APX酶活性的升高。CAT和APX酶活性的升高說明植物通過這兩種酶適應(yīng)脅迫提升了清除過氧化氫的能力。SOD作為抗氧化系統(tǒng)的第一道防線，具有清除超氧陰離子的重要作用［29］，這里SOD活性的下降說明水分脅迫使草地早熟禾清除超氧陰離子能力下降，不少研究也有類似研究結(jié)果［30-31］。但也有研究顯示，干旱促進(jìn)植物SOD活性上升［32］，我們分析可能是干旱脅迫的程度不一致、植物基因型差異等因素所致。因此不同植物的抗氧化酶系統(tǒng)并不是以相同的模式響應(yīng)干旱脅迫。干旱對植物抗氧化酶的影響由很多因素共同決定，包括干旱處理的時間、干旱脅迫的程度和植物的抗旱性、基因型差異等。

關(guān)于乙烯利的作用，我們發(fā)現(xiàn)葉面噴施乙烯利抑制了水分脅迫下草地早熟禾EL和MDA的增加，EL是衡量植物細(xì)胞膜透性的重要指標(biāo)，MDA反映細(xì)胞脂質(zhì)過氧化損傷［29］，此結(jié)果說明乙烯利在水分脅迫下有助于提高草地早熟禾細(xì)胞膜的穩(wěn)定性，進(jìn)一步驗證了乙烯利在提高草地早熟禾抗旱性中的作用。水分脅迫下POD和GPX兩種酶活性在乙烯利作用下明顯升高。APX和GPX兩種酶均屬于POD清除系統(tǒng)，主要作用是將SOD生成的H2O2轉(zhuǎn)化為H2O［33］。乙烯利對干旱脅迫下玉米幼苗的影響研究中也發(fā)現(xiàn)乙烯利顯著提高水分脅迫下POD的活性［34］，但乙烯利對于水分脅迫下GPX活性的影響作用研究很少。本研究說明水分脅迫下，乙烯利主要是通過提高抗氧化酶系統(tǒng)中的POD和GPX的活性達(dá)到清除草地早熟禾體內(nèi)ROS的作用。

MDA含量越高，表明細(xì)胞膜脂受到的損傷程度愈大，反之愈?。?5-36］。復(fù)水恢復(fù)階段，乙烯利顯著抑制了草地早熟禾MDA含量的上升。同時，乙烯利顯著提升復(fù)水過程中GPX和DHAR活性，馬玉玲［37］在對大豆干旱復(fù)水的過程中（復(fù)水7 d）也得出了DHAR活性顯著升高的結(jié)論。因此，GPX和DHAR這兩種抗氧化酶對乙烯利促進(jìn)草地早熟禾干旱后復(fù)水恢復(fù)能力具有重要作用。

4 結(jié)論

本研究結(jié)果表明，乙烯利處理可以緩解草地早熟禾水分脅迫誘導(dǎo)的輕度氧化脅迫損傷，當(dāng)草地早熟禾受到水分脅迫時，乙烯利通過降低EL的增加，提高POD和GPX活性，以緩解草地早熟禾的氧化損傷。在復(fù)水恢復(fù)階段，乙烯利通過減少水分脅迫下MDA的含量，增強(qiáng)GPX及DHAR的活性提升自由基清除能力，減輕細(xì)胞膜受氧化程度，進(jìn)而加快草地早熟禾的脅迫后恢復(fù)過程。

參考文獻(xiàn)

［1］ 李雯婧，應(yīng)忠敏. 全球干旱區(qū)氣候特征分析［J］. 現(xiàn)代化農(nóng)業(yè)，2020（5）：4-5

［2］ 徐松華. 逆境條件下植物體內(nèi)活性氧代謝研究進(jìn)展［J］. 安徽農(nóng)學(xué)通報，2021，27（21）：29-32

［3］ RAJPUT V D，HARISH，SINGH R K，et al. Recent developments in enzymatic antioxidant defence mechanism in plants with special reference to abiotic stress［J］. Biology，2021，10（4）：267

［4］ 杜昕，李博，毛魯梟，等. 褪黑素對干旱脅迫下大豆產(chǎn)量及AsA-GSH循環(huán)的影響［J］. 作物雜志，2022（1）：174-178

［5］ 陳雅君. 水分利用效率與草坪草抗旱性研究進(jìn)展［J］. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報，2011，42（10）：1-5

［6］ 葉文興，張勝男，劉雪婷. 12個草地早熟禾品種幼苗耐鹽性分析［J］. 草地學(xué)報，2023，31（9）：2740-2747

［7］ 聶宇東. 外源肌醇施用對草地早熟禾耐鹽性的影響［D］. 呼和浩特：內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)，2022：45-48

［8］ 陳潤娟，雷婭偉，白小明，等. NO對低溫脅迫下草地早熟禾抗氧化系統(tǒng)的調(diào)控［J］. 草原與草坪，2017，37（6）：17-23

［9］ 隋永超，冷暖，姜赫男，等. 乙烯利對干旱脅迫下草地早熟禾生理指標(biāo)的影響［J］. 草業(yè)科學(xué)，2018，35（4）：822-828

［10］DEMIR Y，OZTRK L. Influence of ethephon and 2，5-norbornadiene on antioxidative enzymes and proline content in salt-stressed spinach leaves［J］. Biologia Plantarum，2003，47：609-612

［11］XU C，ZHANG Y P，YANG H B. Effects of ethephon on physiological characteristics and gene expression of Tartary buckwheat under salt stress［J］. Chilean Journal of Agricultural Research，2022，82（2）：234-243

［12］KHAN M I R，JAHAN B，ALAJMI M F，et al. Ethephon mitigates nickel stress by modulating antioxidant system，glyoxalase system and proline metabolism in Indian mustard［J］. Physiology and Molecular Biology of Plants，2020，26（6）：1201-1213

［13］SHIONO K，EJIRI M，SHIMIZU K，et al. Improved waterlogging tolerance of barley （Hordeum vulgare） by pretreatment with ethephon［J］. Plant Production Science，2019，22（2）：285-295

［14］MACIEL C，POLETINE J，RAIMONDI M，et al. Development of turfgrass submitted to application of growth regulators under different light conditions［J］. Planta Daninha，2011，29：383-395

［15］高婭楠. 乙烯利對草地早熟禾（Poa pratensis L.）干旱脅迫下抗氧化酶的影響［D］. 北京：北京林業(yè)大學(xué)，2021：37-38

［16］韓露，韓烈保，許立新. 乙烯利影響植物抗旱性研究進(jìn)展［J］. 草地學(xué)報，2013，21（4）：631-636

［17］DACOSTA M，HUANG B. Changes in antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation for bentgrass species in response to drought stress［J］. Journal of the American Society for Horticultural Science，2007，132（3）：319-326

［18］ZHANG X，WANG K，ERVIN E H. Bermudagrass freezing tolerance associated with abscisic acid metabolism and dehydrin expression during cold acclimation［J］. Journal of the American Society for Horticultural Science，2008，133（4）：542-550

［19］KUK Y I，SHIN J S，BURGOS N R，et al. Antioxidative enzymes offer protection from chilling damage in rice plants［J］. Crop Science，2003，43（6）：2109-2117

［20］高俊鳳. 植物生理學(xué)實(shí)驗指導(dǎo)［M］. 北京：高等教育出版社，2006：211-213

［21］AEBI H. Catalase in vitro［M］. New york：Methods in Enzymology，1984：121-126

［22］KOCHHAR S，KOCHHAR V，KHANDUJA S. Changes in the pattern of isoperoxidases during maturation of grape berries cv Gulabi as affected by ethephon （2-chloroethyl） phosphonic acid［J］. American Journal of Enology and Viticulture，1979，30（4）：275-277

［23］NAKANO Y，ASADA K. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts［J］. Plant and Cell Physiology，1981，22（5）：867-880

［24］DACOSTA M，HUANG B. Changes in antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation for bentgrass species in response to drought stress［J］. Journal of the American Society for Horticultural Science，2007，132（3）：319-326

［25］馬福林，馬玉花. 干旱脅迫對植物的影響及植物的響應(yīng)機(jī)制［J］. 寧夏大學(xué)學(xué)報（自然科學(xué)版），2022，43（4）：391-399

［26］蘇瑋娟，趙桂琴，琚澤亮，等. 干旱脅迫時間對6份飼用燕麥種質(zhì)萌發(fā)期生理指標(biāo)的影響［J］. 草地學(xué)報，2022，30（3）：646-654

［27］許立新. 草地早熟禾適應(yīng)干旱以及干旱后復(fù)水恢復(fù)機(jī)理研究［D］. 北京：北京林業(yè)大學(xué)，2011：21-22

［28］XU L X，YU J J，HAN L B，et al. Photosynthetic enzyme activities and gene expression associated with drought tolerance and post-drought recovery in Kentucky bluegrass［J］. Environmental and Experimental Botany，2013，89：28-35

［29］張俊霞，劉曉鵬，向極釬. 植物抗氧化系統(tǒng)對逆境脅迫的動態(tài)響應(yīng)［J］. 湖北民族學(xué)院學(xué)報（自然科學(xué)版），2015，33（4）：435-439

［30］TERZI R，KADIOGLU A. Drought stress tolerance and the antioxidant enzyme system in Ctenanthe setosa［J］. Acta biologica Cracoviens ia Series Botanica，2006，48（2）：89-96

［31］FAROOQ M，RAFIQSHAHZAD，MUHAMMADSAJJAD，et al. Differential variations in total flavonoid content and antioxidant enzymes activities in pea under different salt and drought stresses［J］. Scientia Horticulturae，2021，287（3）：110287

［32］ALTAF M A，SHAHID R，REN M，et al. Melatonin improves drought stress tolerance of tomato by modulating plant growth，root architecture，photosynthesis，and antioxidant defense system［J］. Antioxidants，2022，11（2）：309

［33］YU H，YUSHIXIE，YANWANG，et al. Ethephon improved drought tolerance in maize seedlings by modulating cuticular wax biosynthesis and membrane stability［J］. Agricultural Economics，2017，48（2）：123-133

［34］柳政戎，馬明呈，呂才忠，等. PEG-6000模擬干旱脅迫對陜甘花楸耐旱性生理指標(biāo)的影響［J］. 天津農(nóng)林科技，2024（1）：22-26

［35］GUO Y Y，YU H Y，YANG M M，et al. Effect of drought stress on lipid peroxidation，osmotic adjustment and antioxidant enzyme activity of leaves and roots of Lycium ruthenicum Murr. seedling［J］. Russian Journal of Plant Physiology，2018，65（2）：244-250

［36］王曉雪，李越，張斌，等. 干旱脅迫及復(fù)水對燕麥根系生長及生理特性的影響［J］. 草地學(xué)報，2020，28（6）：1588-1596

［37］馬玉玲. 干旱脅迫及復(fù)水對大豆活性氧清除系統(tǒng)的影響［D］. 哈爾濱：東北農(nóng)業(yè)大學(xué)，2018：66-68

（責(zé)任編輯 劉婷婷）