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    明小花蝽卵黃原蛋白的鑒定及表達(dá)分析

    2024-09-22 00:00:00杜會(huì)玲王瑞娟覃冬云陳浩郭琳劉艷蘇龍代曉彥趙珊鄭禮董小林翟一龍
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2024年8期

    摘要:本研究對明小花蝽Orius nagaii的卵黃原蛋白(vitellogenin,vg)進(jìn)行結(jié)構(gòu)分析、原核表達(dá)、抗體制備以及時(shí)空動(dòng)態(tài)表達(dá)分析,旨在為昆蟲卵黃原蛋白的研究提供理論依據(jù)。用RACE方法克隆出OnVg基因全長,運(yùn)用生物信息網(wǎng)站分析OnVg蛋白得出其具有3個(gè)保守結(jié)構(gòu)域:脂蛋白N端結(jié)構(gòu)域、未知功能結(jié)構(gòu)域以及血管性血友病因子結(jié)構(gòu)域。構(gòu)建On Vg的原核表達(dá)載體pET-32a-c(+)-OnVg,轉(zhuǎn)至大腸桿菌進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),通過免疫昆明小鼠制備了anti-OnVg抗體。Western blot結(jié)果顯示anti-OnVg抗體與OnVg蛋白能夠特異性結(jié)合。qPCR檢測vg基因在明小花蝽若蟲、成蟲階段和成蟲不同組織中的時(shí)空動(dòng)態(tài)表達(dá),結(jié)果表明vg基因在若蟲階段最低,成蟲階段表達(dá)量升高且3d時(shí)表達(dá)水平達(dá)到最高:成蟲腹部表達(dá)量最高,其次是腸道和卵巢。本研究結(jié)果可為探究明小花蝽的生殖調(diào)控機(jī)理提供理論支持。

    關(guān)鍵詞:明小花蝽:卵黃原蛋白:原核表達(dá):抗體制備;時(shí)空表達(dá)

    中圖分類號(hào):S476.2:Q786 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A 文章編號(hào):1001-4942(2024) 08-0137-09

    小花蝽(Orius spp.)屬半翅目花蝽科,原產(chǎn)于亞洲,目前在世界各國均有分布。作為一類重要的廣食性捕食性天敵昆蟲,小花蝽被廣泛應(yīng)用于防治田間及溫室中的蚜蟲、薊馬、螨類等多種小型害蟲以及部分鱗翅目害蟲。明小花蝽(Orius nagaii)隸屬小花蝽屬,目前僅有少量關(guān)于其分布和內(nèi)生共生菌的報(bào)道,其飼養(yǎng)技術(shù)、生物學(xué)、生理學(xué)及防害應(yīng)用等方面還未見報(bào)道。通過室內(nèi)飼養(yǎng)明小花蝽,發(fā)現(xiàn)其適應(yīng)能力強(qiáng)、產(chǎn)卵量高,且易于在室內(nèi)大量擴(kuò)繁,極具商業(yè)化飼養(yǎng)潛力。

    卵黃原蛋白(vitellogenin,vg)是一種脂肪體細(xì)胞蛋白,其表達(dá)受性別、組織以及生長歷期調(diào)控。在雌性成蟲脂肪體中,vg被特異性合成,隨后經(jīng)過切割、糖基化和磷酸化等一系列過程,最終釋放到血腔中,通過受體介導(dǎo)的內(nèi)吞作用被卵巢攝取,在卵巢內(nèi)被進(jìn)一步修飾形成并發(fā)育成卵子。雌性昆蟲的生殖過程受保幼激素和蛻皮激素調(diào)控,vg是主要分子靶點(diǎn),但是不同昆蟲受激素調(diào)節(jié)存在差異,例如蜜蜂、果蠅受蛻皮激素調(diào)控,黏蟲受保幼激素調(diào)控,而斜紋夜蛾受蛻皮激素和保幼激素共同調(diào)控。

    國內(nèi)有關(guān)小花蝽的報(bào)道更多是關(guān)于捕食功能反應(yīng)、毒性試驗(yàn)、營養(yǎng)物質(zhì)選擇等領(lǐng)域,對其繁殖關(guān)鍵因子的分子生物學(xué)基礎(chǔ)研究甚少。本研究利用轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)獲取vg基因cDNA片段,采用RACE技術(shù)克隆明小花蝽vg基因全長,運(yùn)用生物信息學(xué)網(wǎng)站分析明小花蝽vg蛋白基因(OnVg)結(jié)構(gòu)特征,構(gòu)建pET-32a-c(+)-OnVg原核表達(dá)載體,并制備蛋白特異性抗體,通過熒光定量PCR分析vg基因在明小花蝽若蟲、成蟲階段,以及成蟲頭、胸、腹、卵巢、腸道組織中的表達(dá)模式,為進(jìn)一步研究OnVg的功能及其在生殖中的作用機(jī)理奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 供試?yán)ハx

    明小花蝽來自山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院天敵昆蟲實(shí)驗(yàn)室,試驗(yàn)開始于2022年2月。飼養(yǎng)條件:溫度(26±1)℃,濕度(60+5)%,光照周期L:D=16 h:8h,以蕓豆和米蛾卵喂養(yǎng)。

    1.2 Vg蛋白的結(jié)構(gòu)分析

    使用NovoPro(https: //www. novopro. cn/tools/tmhmm. html)網(wǎng)站的在線工具進(jìn)行蛋白質(zhì)信號(hào)肽預(yù)測;使用EMBL(http://smart. embl- heidelberg.de/)中的SMART程序鑒定其功能結(jié)構(gòu)域:使用DNAMAN 6.0.3.99中文版翻譯成氨基酸序列。

    1.3 引物設(shè)計(jì)

    使用Primer3Plus(https://www. primer3plus.com/index.html)網(wǎng)站設(shè)計(jì)引物(表1)。RACE試驗(yàn)委托上海植碩生物科技有限公司完成,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

    1.4 明小花蝽vg基因全長克隆

    1.4.1 核心片段擴(kuò)增

    取約20 mg明小花蝽置于2 mL的離心管中,放于液氮中冷凍研磨,使用Tr-izol法提取總RNA。通過轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),利用核心引物OnVg-f/OnVg-r(表1),對提取的總RNA進(jìn)行RT-PCR。對擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行測序,按照Vazyme的phanta max fidelity DNA polymerase說明書獲得核心序列。

    1.4.2 5’/3 'RACE克隆基因全長

    根據(jù)核心序列設(shè)計(jì)RACE引物并進(jìn)行5'RACE和3'RACE。5'RACE依照5’/3'RACE Kit,2nd Generation(Roche)說明書,使用引物Vg-5' RACE -rt-r進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄;得到的cDNA經(jīng)引物Vg-5 'RACE-rl和Oligo dT-Anchor Primer(Vial 8)進(jìn)行第一輪PCR;以第一輪PCR產(chǎn)物為模板使用引物Vg-5' RACE-r2和PCR Anchor Primer(Vial 9)進(jìn)行第二輪巢式PCR0 3'RACE依照3'Full RACE Core Kit(Taka-ra)說明書,使用Vg-3' RACE-fl引物和3'RACEOuter Primer進(jìn)行第一輪PCR;以第一輪PCR產(chǎn)物為模板,使用引物Vg-3'RACE-f2和3'RACEControl Inner Primer進(jìn)行第二輪嵌套PCR。PCR產(chǎn)物經(jīng)純化,送至生工進(jìn)行測序,將5' RACE、核心序列及3'RACE拼接在一起,得到OnVg cDNA的全長序列。

    1.5 PCR擴(kuò)增

    提取明小花蝽總RNA,使用PrimeScript RTreagent Kit(TaKaRa)反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,參考祝晴、李佳鵬等的擴(kuò)增體系和反應(yīng)程序,其中上、下游引物On-Vg-1 F/R和OnVg - 2F/R各2μL,cDNA模板1μL;反應(yīng)程序:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30s,62℃退火30 s,72℃延伸1 min,共30-35個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。PCR結(jié)束后電泳檢測目的條帶(960 bp)。

    1.6 重組表達(dá)載體的構(gòu)建

    按照膠回收試劑盒(北京聚合美生物科技有限公司)的使用說明,將正確的凝膠條帶回收純化。將回收產(chǎn)物與pET-32a-c(+)(Novagen)載體分別用限制性內(nèi)切酶BamH I(Thermo)、NotI(Thermo)進(jìn)行雙酶切。利用T4連接酶(TaKaRa)進(jìn)行連接,構(gòu)成重組表達(dá)載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌Escherichia coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,涂布于含氨芐青霉素(Ampr)抗性的LB固體培養(yǎng)基上,于37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)13 - 16 h后挑取菌落。將單菌落置于1.5 mL離心管中(離心管中放人500 μL含Ampr的LB液體培養(yǎng)基),37℃、220 r/min搖床振蕩培養(yǎng)12 -14 h后,送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序,以獲得含目的基因的重組載體pET-32a-c(+)-OnVg。

    1.7 Vg蛋白誘導(dǎo)表達(dá)

    取2 μL測序正確的pET-32a-c(+)-OnVg重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到E.coli BL21感受態(tài)細(xì)胞(天根生化科技有限公司)中,培養(yǎng)在含Ampr的LB固體培養(yǎng)基上,37℃高速振蕩12 -14 h后觀察并挑取菌落。將單菌落懸浮于15mL離心管(離心管中放人3 mL含Ampr的LB液體培養(yǎng)基),37℃、220 r/min振蕩培養(yǎng)12 - 16 h,菌液渾濁后轉(zhuǎn)入100 mL液體培養(yǎng)基擴(kuò)大培養(yǎng)。后續(xù)菌液OD00。值在0.6左右時(shí),加入1mg/mL IPTG(索萊寶)進(jìn)行誘導(dǎo),37℃、150 r/min搖5-6 h后,8 000 r/min低溫離心10- 12 min收集菌體。

    收集未誘導(dǎo)與誘導(dǎo)樣品菌體,加5 mL細(xì)胞裂解液(CLB:GLPBLO為99:1),經(jīng)超聲波破碎,于10 000 r/min、4℃離心10- 12 min后收集上清和沉淀,1×SDS - PAGE蛋白上樣緩沖液與上清1:1混合,2xSDS-PAGE蛋白上樣緩沖液與沉淀按照2:1混合,振蕩儀充分振蕩后,于100℃沸水中變性5 min,進(jìn)行聚丙烯酰氨凝膠電泳檢測。檢測合格后分裝,- 80℃保存,用于后續(xù)的抗體制備。

    1.8 Western blot

    將免疫印記膜用甲醇處理約15 s,按照三明治結(jié)構(gòu)方法(濾紙-PVDF膜-凝膠-濾紙),60 V或300mA轉(zhuǎn)膜3h。參考祝晴、李佳鵬等的方法進(jìn)行奶粉封閉、一抗和二抗孵育,使用His標(biāo)簽抗體和anti- OnVg血清抗體進(jìn)行蛋白檢測。

    1.9 Vg抗體制備

    將正確的重組蛋白膠條研磨,用O.go-/o生理鹽水稀釋。昆明小鼠提前喂養(yǎng)2-3 d,每只20 9左右。用1 mL針管注射300 - 400 μL稀釋液到小鼠腹腔,每周注射一次,持續(xù)4周。第5周眼球取血至1.5 mL離心管,37℃水浴1h,4℃冰箱放置6h后,12 000 r/min、4℃離心13 - 15 min,取上清,置于液氮冷凍至發(fā)白狀態(tài)后放入-800C凍存,或用血清加60%甘油稀釋后-20℃冰箱保存。

    1.10 明小花蝽卵巢蛋白提取

    將羽化3d后的明小花蝽置于PBS中進(jìn)行卵巢解剖,提取蛋白。研磨液制備:蛋白裂解液(RI-PA)200 μL、磷酸酶抑制劑4μL、1×蛋白酶抑制劑2 μL、100x PMSF 2μL混合在一起,所有試劑配制在冰上操作。明小花蝽卵巢(n≥40)中加入200 μL研磨液進(jìn)行研磨,放人冰盒靜置30min,12 000 r/min、4℃離心5- 10 min,取上清液;上清液與蛋白上樣緩沖液4:1混合,100℃金屬浴5min。

    1.11 OnVg基因的時(shí)空表達(dá)

    分別取卵、1-5齡若蟲和羽化1、3、5、7、9、10d的雌成蟲(n≥35),及羽化后12-24 h雌成蟲的頭、胸、腹、卵巢、腸道組織(n≥40)。提取總RNA,并進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,而后以cDNA為模板,Actin為內(nèi)參,引物見表1,使用思科捷2x SYBR GreenqPCR Mix(With ROX)試驗(yàn)盒檢測OnVg的相對表達(dá)。qPCR反應(yīng)體系20 μL:上、下游引物各0.4μL,ddH2O 6.8 μL,cDNA模板2μL(cDNA稀釋10倍),2x SYBR qPCR Mix 10 μL, ROX ReferenceDyeⅡ0.4 μL。反應(yīng)程序(二步法):95℃預(yù)變性20 s;90℃變性3s,60℃退火30 s,共40個(gè)循環(huán)。每個(gè)處理組進(jìn)行3次生物學(xué)重復(fù),4個(gè)技術(shù)重復(fù)。結(jié)果用2-△△Ct法計(jì)算基因的相對表達(dá)量。

    1.12 數(shù)據(jù)分析

    使用PASW Statistics 18軟件(SPSS Inc.,Chi-cago.IL,USA)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 OnVg基因的核心片段及基因全長

    根據(jù)已知序列,設(shè)計(jì)了核心序列引物,進(jìn)行核心片段擴(kuò)增,開放閱讀框長5 973 bp(圖1A)?;蛱禺愐?'RACE-r1和5'RACE-r2分別與試劑盒自帶引物進(jìn)行第一輪、第二輪5'RACE試驗(yàn)。通過第一輪PCR得到了彌散條帶(圖IB,條帶2),以第一輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物為模板,進(jìn)行第二輪巢式PCR,得到一條清晰的條帶(圖1B,條帶3)。3'RACE步驟同上,進(jìn)行第二輪巢式PCR,得到一條清晰的條帶(圖1C)。

    2.2 OnVg基因序列分析

    OnVg基因cDNA全長6 133 bp,其中開放閱讀框長5 973 bp,翻譯成1 990個(gè)氨基酸,去掉信號(hào)肽,約219.33 kDa,包含3個(gè)保守結(jié)構(gòu)域:脂蛋白N端結(jié)構(gòu)域(LPD_N)、未知功能結(jié)構(gòu)域(un-known functuin,DUF1943)以及血管性血友病因子結(jié)構(gòu)域(von Willebrand factor type D domain.vWD)。選取灰色陰影部分960 bp堿基(圖2),杜會(huì)玲,等:明小花蝽卵黃原蛋白的鑒定及表達(dá)分析約32 kDa,進(jìn)行PCR克隆及測序。對序列進(jìn)行位點(diǎn)切割,切割位點(diǎn)RSRR將其分解成大、小兩個(gè)亞基,預(yù)測大亞基為173.74 kDa,不含信號(hào)肽的小亞基為41.69 kDa。結(jié)果表明,PCR擴(kuò)增序列長度正確,無突變堿基(圖3)。

    2.3 原核表達(dá)載體的構(gòu)建和鑒定

    將OnVg擴(kuò)增片段與pET-32a-c(+)載體經(jīng)帶有酶切位點(diǎn)的引物PCR擴(kuò)增(圖4),構(gòu)建重組表達(dá)載體pET-32a-c(+)-OnVg。利用通用引物經(jīng)PCR和雙酶切鑒定,得到的片段大小基本符合預(yù)期(圖5),表明載體構(gòu)建成功,可用于誘導(dǎo)表達(dá)重組蛋白。

    2.4 重組蛋白在大腸桿菌中的誘導(dǎo)表達(dá)

    將誘導(dǎo)和未誘導(dǎo)的上清和沉淀分別進(jìn)行聚丙烯酰胺蛋白電泳檢測,Bradford法染色后發(fā)現(xiàn),pET-32a-c(+)-OnVg的重組質(zhì)粒大小在55 kDa左右(圖6),為圖2灰色陰影部分蛋白分子量32kDa加上載體修飾,目的蛋白主要以沉淀形式表達(dá),在上清中表達(dá)不明顯。Western blot結(jié)果(圖7)顯示,目的蛋白與His抗體能夠很好地結(jié)合,55kDa處的條帶與預(yù)期大小一致,證明重組蛋白正確表達(dá)。

    2.5 抗體制備與檢測

    將重組蛋白經(jīng)切膠研磨后配制成生理鹽水稀釋液,注射到昆明小鼠體內(nèi),5周后收集血清,檢測血清抗體anti- OnVg。用稀釋5 000倍的血清對誘導(dǎo)樣品進(jìn)行檢測,結(jié)果(圖8)條帶單一且清晰,與預(yù)期相符,可滿足免疫組化和Western blot試驗(yàn)的要求。用anti-OnVg血清抗體檢測明小花蝽卵巢蛋白樣品,結(jié)果(圖9)顯示,在抗體稀釋5 000倍時(shí),蛋白條帶清晰,符合預(yù)測的蛋白分子量173.74 kDa。

    2.6 OnVg序列時(shí)空動(dòng)態(tài)表達(dá)

    以Actin為內(nèi)參,qPCR檢測OnVg基因在明小花蝽若蟲階段、成蟲階段和雌成蟲不同組織部位的動(dòng)態(tài)表達(dá)模式,表明OnVg在不同發(fā)育階段和成蟲不同組織中的表達(dá)均有波動(dòng)。其在成蟲腹部相對表達(dá)水平最高,其次是腸道和卵巢,在胸部和頭部的表達(dá)水平最低(圖10A)。整個(gè)若蟲階段OnVg的表達(dá)水平較低且各階段間無顯著差異;成蟲階段表達(dá)水平變化較大,3d時(shí)達(dá)到高峰,7d時(shí)降至最低,后再次上升,但顯著低于3d時(shí)(圖10B)。

    3 討論與結(jié)論

    卵黃原蛋白可以向胚胎提供多種營養(yǎng)物質(zhì),供其發(fā)育產(chǎn)卵,例如各種氨基酸、磷、脂質(zhì)、碳水化合物、維生素等。在絕大多數(shù)昆蟲中,vg是由約6 000-7 000 bp堿基編碼的約220 kDa的大分子膜蛋白,大亞基(140 - 190 kDa)和小亞基(40-60 kDa) -般在分泌到血腔前被切割,大亞基往往輸送至卵巢。根據(jù)氨基酸序列分析,昆蟲Vg十分保守,有3個(gè)保守結(jié)構(gòu)域:位于N端的卵黃原蛋白N端結(jié)構(gòu)域(vitellogenin N domain,VitN)、中間區(qū)域的未知功能結(jié)構(gòu)域以及位于C端的血管性血友病因子結(jié)構(gòu)域:在N端有一個(gè)多聚絲氨酸區(qū)域,其具體功能尚不清楚,需要進(jìn)一步研究。

    通過對明小花蝽Vg基因序列的分析發(fā)現(xiàn),其總長6 133 bp,編碼1 990個(gè)氨基酸,去掉信號(hào)肽,分子量為219.33 kDa左右。本研究用于原核表達(dá)的Vg肽鏈N區(qū)是一個(gè)脂蛋白結(jié)構(gòu)域,主要用于脂質(zhì)運(yùn)輸,表達(dá)的vg重組蛋白為55 kDa左右,理論上用Vg重組蛋白免疫小鼠制備的多克隆抗體對Vg大、小亞基都應(yīng)有免疫反應(yīng),但Western blot結(jié)果顯示在明小花蝽雌蟲卵巢中,只檢測出vg的大亞基(173.74 kDa左右),在RSRR進(jìn)行位點(diǎn)切割,結(jié)果符合預(yù)測的大亞基的蛋白分子量。相關(guān)研究表明,斜紋夜蛾Vg抗體在卵與雌性血淋巴中進(jìn)行蛋白印跡分析檢測出vg的大亞基;甜菜夜蛾vg多克隆抗體在雌蟲血淋巴中只檢測出vg的大亞基(180 kD左右);在一些高等膜翅目昆蟲如日本瘤姬蜂(Pimpla nipponi-0ca)中也得到類似結(jié)果。甜菜夜蛾vg中只有編碼大亞基的部分才有轉(zhuǎn)錄活性,而編碼小亞基的部分缺失。

    vg具有傳統(tǒng)的蛋白前體功能,還與昆蟲免疫反應(yīng)等有關(guān)。研究表明,昆蟲vg的表達(dá)在不同發(fā)育階段具有很大差異,成蟲階段表達(dá)量最高。粘蟲VgR表達(dá)量在羽化后Sd最高,黑尾葉蟬在羽化后16 d達(dá)到VgR高峰值,草地貪夜蛾vg基因表達(dá)量在成蟲羽化4d達(dá)到峰值。本研究OnVg基因的表達(dá)情況與上述研究相符,都是在成蟲階段表達(dá)量最高,隨著羽化時(shí)間延長,呈先上升后下降的趨勢。卵巢是昆蟲重要的生殖器官,具有調(diào)控生殖發(fā)育、參與免疫應(yīng)答等功能。昆蟲不同組織中vg的表達(dá)量存在差異,番茄潛葉蛾VgR基因在雌蟲卵巢高度表達(dá),草地貪夜蛾vg在雌蟲脂肪體高度表達(dá),大草嶺雄蟲vg基因在腹部的表達(dá)量較高。對組織部位的研究結(jié)果表明,OnVg基因在明小花蝽雌蟲腹部高表達(dá),其次是腸道和卵巢,進(jìn)一步說明Vg與卵黃發(fā)生密切相關(guān)。下一步應(yīng)著重研究Vg對明小花蝽發(fā)育的影響,探究其分子調(diào)控機(jī)制,如產(chǎn)卵量、羽化率、產(chǎn)卵前期、RNA干擾、糖代謝、脂代謝等。

    本研究通過構(gòu)建重組質(zhì)粒并免疫小鼠,成功制備了anti-Vg血清抗體,可以特異性識(shí)別明小花蝽的vg蛋白,同時(shí)研究了OnVg基因在不同組織和發(fā)育階段的時(shí)空表達(dá)情況,所得結(jié)果為進(jìn)一步探究明小花蝽Vg的功能及生殖調(diào)控機(jī)理奠定了基礎(chǔ),可為明小花蝽商品化繁育提供新的途徑。

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