[摘 要] 目的:觀察小鼠皮層區(qū)和基底神經(jīng)節(jié)隆起 (GE) 區(qū)神經(jīng)元突觸發(fā)育過程,闡明興奮性突觸和抑制性突觸在不同腦區(qū)的體內(nèi)外發(fā)育差異。方法:C57BL/6雌鼠于妊娠第13. 5~15. 5天斷頸處死后,經(jīng)無菌操作取胚胎小鼠,顯微鏡下逐步分離獲取胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和GE 區(qū)。體外原代培養(yǎng)胚胎小鼠神經(jīng)元,于培養(yǎng)3、7、14 和21 d 分別收集細(xì)胞樣品,并將其作為培養(yǎng)3、7、14 和21 d 組。采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR (RT-qPCR) 法檢測(cè)各組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中突觸后表達(dá)蛋白突觸后密度蛋白95 (PSD95) 及橋尾蛋白(Gephyrin) mRNA 表達(dá)水平。免疫熒光法檢測(cè)各組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中囊泡谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1 (vGLUT1)、PSD95、囊泡γ-氨基丁酸(GABA) 轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(vGAT) 及Gephyrin 蛋白表達(dá)水平。免疫熒光法檢測(cè)胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和GE區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1及vGAT蛋白表達(dá)水平。結(jié)果:與培養(yǎng)3 d組比較,培養(yǎng)14和21 d組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 及Gephyrin mRNA 表達(dá)水平明顯升高(Plt;0. 01);與皮層區(qū)比較,培養(yǎng)14 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中Gephyrin mRNA 表達(dá)水平明顯降低(Plt;0. 01)。顯微鏡下觀察,培養(yǎng)14 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中興奮性突觸及抑制性突觸均初步發(fā)育,相關(guān)蛋白呈陽性表達(dá);其中興奮性突觸相關(guān)蛋白陽性表達(dá)在皮層區(qū)神經(jīng)元中更為明顯,且突觸前分子vGLUT1 和突觸后分子PSD95 在皮層區(qū)神經(jīng)元的胞體及突起部位均呈現(xiàn)共定位的特征;抑制性突觸前分子vGAT 蛋白和突觸后分子Gephyrin 蛋白在GE 區(qū)神經(jīng)元胞體及突起中也呈現(xiàn)共定位的特征,且突觸前分子較相應(yīng)的突觸后分子蛋白陽性表達(dá)更明顯。與皮層區(qū)比較,培養(yǎng)14 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGLUT1 和PSD95 蛋白表達(dá)水平明顯降低(Plt;0. 01),vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平明顯升高(Plt;0. 01)。培養(yǎng)21 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元突觸相關(guān)蛋白陽性表達(dá)增加,興奮性突觸和抑制性突觸進(jìn)一步成熟并完善。皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元的胞體及突起部位均形成了豐富的突觸前后對(duì)應(yīng)的表達(dá)模式,突觸結(jié)構(gòu)逐步發(fā)育良好,且突觸前分子較相應(yīng)的突觸后分子蛋白陽性表達(dá)更明顯。與皮層區(qū)比較,培養(yǎng)21 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGLUT1 和PSD95 蛋白表達(dá)水平均明顯降低(Plt;0. 01),vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平均明顯升高(Plt;0. 01)。與皮層區(qū)比較,胚胎小鼠腦組織GE 區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1 蛋白表達(dá)水平明顯降低(Plt;0. 01),vGAT 蛋白表達(dá)水平明顯升高 (Plt;0. 05)。結(jié)論:皮層區(qū)和GE區(qū)神經(jīng)元的突觸發(fā)育具有明顯的差異性,皮層區(qū)興奮性突觸發(fā)育較早,GE 區(qū)抑制性突觸發(fā)育較早。突觸的腦區(qū)特異性發(fā)育提示不同細(xì)胞類型的神經(jīng)疾病可能具有不同的發(fā)育來源。
[關(guān)鍵詞] 神經(jīng)元發(fā)育; 興奮性突觸; 抑制性突觸; 皮層區(qū); 基底神經(jīng)節(jié)隆起區(qū)
[中圖分類號(hào)] R394 [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
突觸是神經(jīng)系統(tǒng)的基本結(jié)構(gòu),神經(jīng)元之間及神經(jīng)元與效應(yīng)細(xì)胞之間形成突觸連接是傳遞電化學(xué)信號(hào)的結(jié)構(gòu)基礎(chǔ)。因此,突觸發(fā)育是神經(jīng)發(fā)育的關(guān)鍵步驟。突觸結(jié)構(gòu)包括興奮性突觸和抑制性突觸,分別由各自特異的突觸前后蛋白組成。興奮性突觸通常會(huì)形成樹突棘樣結(jié)構(gòu),突觸前膜和突觸后膜均聚集大量特異性蛋白, 電鏡下觀察可見突觸后致密體。興奮性突觸可使用的標(biāo)志物包括興奮性突觸前特異性分子囊泡谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1 (vesicularglutamate transporter 1, vGLUT1) 和興奮性突觸后特異性分子突觸后密度蛋白95 (postsynapticdensity 95,PSD95),可分別對(duì)突觸前成分和突觸后成分進(jìn)行染色并觀察[1-4]。抑制性突觸由獨(dú)特的蛋白聚集于突觸前膜和后膜形成,其中具有特征性且常用于染色觀察的標(biāo)志物包括抑制性突觸前特異性分子囊泡γ - 氨基丁酸(γ -aminobutyric acid,GABA) 轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(vesicular GABA transporter,vGAT) 和抑制性突觸后特異性分子橋尾蛋白(Gephyrin),相關(guān)特異性分子分別組成特定的突觸結(jié)構(gòu),共同形成復(fù)雜的神經(jīng)環(huán)路[5-9]。神經(jīng)元的體外原代培養(yǎng)是一種常用的神經(jīng)觀察體系[10]。原代培養(yǎng)神經(jīng)元被廣泛應(yīng)用于神經(jīng)發(fā)育和突觸發(fā)育的觀察,還可用于藥理作用下或病理模型中神經(jīng)元生理和病理的研究及神經(jīng)元電生理功能的觀測(cè)等[11-14]。不同腦區(qū)來源的神經(jīng)元其體外發(fā)育過程不同,突觸相關(guān)發(fā)育也存在差異。對(duì)不同腦區(qū)神經(jīng)元的發(fā)育和突觸發(fā)育進(jìn)行觀察可為后續(xù)開展針對(duì)性的生理病理及電生理研究提供實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。研究[15-16] 顯示:原代神經(jīng)元培養(yǎng)大多選擇皮層區(qū)神經(jīng)元,對(duì)基底神經(jīng)節(jié)隆起(ganglionic eminence,GE) 區(qū)神經(jīng)元培養(yǎng)并觀察其發(fā)育情況的研究較少。本研究對(duì)皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元突觸發(fā)育過程進(jìn)行比較,探討體外培養(yǎng)小鼠不同腦區(qū)來源神經(jīng)元的突觸結(jié)構(gòu)發(fā)育情況, 闡明不同性質(zhì)突觸結(jié)構(gòu)中最佳觀察和干預(yù)時(shí)間,為突觸發(fā)育研究和病理藥理研究提供參考。
1 材料與方法
1. 1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、主要試劑和儀器
10只 C57BL/6小鼠來源于空軍軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK (陜) 2019-001。小鼠于SPF級(jí)動(dòng)物房飼養(yǎng), 室內(nèi)溫度約為24 ℃, 相對(duì)濕度約為50%, 光照為 12 h 光/12 h 暗循環(huán)。 神經(jīng)元基礎(chǔ)培養(yǎng)液(neurobasal medium, NB)、 0. 25% 胰酶消化液(Typsin-EDTA)、 細(xì)胞平衡鹽緩沖液(Hanks’ balanced salt solution, HBSS)、B27 添加劑和青- 鏈霉素混合液(100 U·mL-1 青霉素和0. 1 g·L-1 鏈霉素)(美國Gibco 公司),L-谷氨酰胺(美國Amresco 公司),胎牛血清(杭州四季青生物工程公司), 多聚賴氨酸(美國Sigma 公司), 抗PSD95 抗體和抗vGAT 抗體(美國 Abcam 公司),抗Gephyrin 抗體(美國Synaptic Systems 公司),抗vGLUT1 抗體(美國SYSY 公司), Alexa Fluor?488 標(biāo)記鼠抗小鼠多克隆二抗、Alexa Fluor? 488 標(biāo)記鼠抗兔多克隆二抗、Alexa Fluor? 594 標(biāo)記鼠抗兔多克隆二抗和Alexa Fluor? 594 標(biāo)記抗豚鼠多克隆二抗(美國 Jackson Immunoresearch 公司),4', 6- 二脒基-2- 苯基(4', 6-diamidino-2-phenylindole, DAPI)(德國Sigma 公司), 山羊血清(北京索萊寶科技有限公司),Triton X-100 (瑞士Roche 公司), NovoStart?SYBR High-sensitivityqPCR SuperMix (合肥吉象生物技術(shù)有限公司),PrimeScripttm RT Master Mix (北京寶日醫(yī)生物技術(shù)有限公司), TRIzol (北京TIANGEN 公司)。CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo Scientific 公司),酶標(biāo)儀(瑞士TECAN 公司),超凈工作臺(tái)(蘇州蘇凈集團(tuán)安泰公司), 實(shí)時(shí)熒光定量 PCR (real-timefluorecence quantitative PCR, RT-qPCR) 儀(型號(hào):C1000 Touch,美國Bio-Rad 公司),激光共聚焦顯微鏡(型號(hào):FV3000,日本Olympus 公司)。
1. 2 神經(jīng)元原代培養(yǎng)及分組
C57BL/6雌鼠于妊娠第13. 5~15. 5 天斷頸處死后, 經(jīng)無菌操作取胚胎小鼠,置于含提前預(yù)冷1×HBSS 的培養(yǎng)皿中。于顯微鏡下逐步分離以獲取胚胎小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)腦組織,并去掉其表面腦膜。0. 25% Typsin-EDTA消化腦組織,制備為單細(xì)胞懸液,接種至預(yù)先用多聚賴氨酸包被的6 孔和24 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,采用含2% B27、1% 青-鏈霉素混合液和0. 5 mmol·L-1 L-谷氨酰胺的NB 培養(yǎng)液培養(yǎng)。神經(jīng)元細(xì)胞于37 ℃ 、5% CO2 孵箱中孵育。隔日進(jìn)行半量換液1 次。于培養(yǎng)3、7、14 和21 d 分別收集細(xì)胞樣品, 并將其作為培養(yǎng)3、7、14 和21 d 組。
1. 3 RT-qPCR法檢測(cè)各組小鼠皮層區(qū)和GE區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95及Gephyrin mRNA表達(dá)水平
于培養(yǎng)3、7、14 和21 d 取出小鼠皮層區(qū)及GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元后,采用TRIzol 法提取細(xì)胞總RNA。采用多功能酶標(biāo)儀檢測(cè)RNA 的濃度和純度, 取吸光度(A)(260) /A (280) 比值范圍于1. 8~2. 0 的RNA 樣本,進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄以合成cDNA。以β-actin 為內(nèi)參,檢測(cè)小鼠皮層區(qū)及GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 和Gephyrin mRNA 表達(dá)水平。將配制好的反應(yīng)體系轉(zhuǎn)移至Bio-Rad CFX96 儀器中,設(shè)置反應(yīng)程序,進(jìn)行RT-qPCR 反應(yīng)。反應(yīng)條件: 95 ℃ 起始模板變性15 min; 94 ℃ 變性20 s、60 ℃退火30 s,75 ℃延伸30 s,循環(huán)45 次。擴(kuò)增結(jié)束后,分析熔解曲線。采用2—ΔΔCt 法計(jì)算目的基因表達(dá)水平。引物序列見表1。
1. 4 免疫熒光法檢測(cè)各組小鼠皮層區(qū)和 GE區(qū)原代 培 養(yǎng) 神 經(jīng) 元 中 vGLUT1、PSD95、vGAT 及Gephyrin蛋白表達(dá)水平
于培養(yǎng)第 14和 21天時(shí),由孵箱中取出小鼠皮層區(qū)或GE 區(qū)神經(jīng)元,4% 多聚甲醛固定細(xì)胞,采用3% BSA+0. 1% Triton X-100封閉液預(yù)處理15 min, 加入1% BSA 液體稀釋的vGLUT1 (1∶500) 與PSD95 (1∶150) 的抗體混合液或vGAT (1∶ 1 000) 與Gephyrin (1∶ 150)的抗體混合液,4 ℃條件下于濕盒中孵育過夜。次日, 磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline, PBS)洗滌細(xì)胞。加入稀釋的Alexa 488 標(biāo)記(1∶500)和Alexa 594 標(biāo)記(1∶500) 的熒光二抗,于暗室中孵育1 h。PBS 緩沖液漂洗細(xì)胞3 次后,于暗室孵育DAPI (1∶1 000) 染色以襯染細(xì)胞核。PBS 緩沖液漂洗細(xì)胞3 次,所有玻片倒置于加入適量抗熒光淬滅封片液的載玻片上,小心封片。-20 ℃避光保存。將樣品置于激光共聚焦掃描顯微鏡下觀察,每張玻片在60 倍目鏡下隨機(jī)采集3 個(gè)視野圖像,采用Imaris 軟件的“Filaments”功能計(jì)算樹突長度,計(jì)算單位長度樹突陽性染色點(diǎn)數(shù),代表目的蛋白表達(dá)水平。陽性染色點(diǎn)數(shù)=陽性蛋白染色總點(diǎn)數(shù)/樹突長度。
1. 5 免疫熒光法檢測(cè)胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元中 vGLUT1 及 vGAT 蛋白表達(dá)水平
C57BL/6 雌鼠妊娠第13. 5~15. 5 天時(shí)行腹腔注射1% 戊巴比妥麻醉, 麻醉起效后取出胚胎小鼠。行4% 多聚甲醛灌注后,取出胚胎小鼠腦組織浸泡入4% 多聚甲醛后固定2 h,30% 蔗糖-PBS 緩沖液脫水。脫水24 h 后,進(jìn)行OCT 包埋和冰凍切片。對(duì)腦切片采用10% BSA+0. 1% Triton X-100 預(yù)處理30 min,加入1% BSA 稀釋的vGLUT1 (1∶ 200)和vGAT (1∶400) 抗體孵育液,于4 ℃濕盒中孵育過夜。次日,PBS 緩沖液洗滌腦片,加入稀釋的Alexa 488 標(biāo)記(1∶500) 和Alexa 594 標(biāo)記(1∶500)的熒光二抗,并于暗室孵育1 h。PBS 緩沖液漂洗切片3次后,暗室孵育DAPI (1∶1 000) 染液以顯示細(xì)胞核。PBS 緩沖液漂洗后加入適量抗熒光淬滅封片液于腦片,蓋玻片封片,待觀察。將完成染色的腦片置于激光共聚焦掃描顯微鏡下觀察,重點(diǎn)觀察皮層區(qū)和GE 區(qū)視野。采集10 倍和40 倍顯微鏡下的圖像, 采用Image J 軟件檢測(cè)蛋白熒光強(qiáng)度,“Image”功能標(biāo)簽計(jì)算特定顏色的像素值,代表目的蛋白表達(dá)水平。
1. 6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用 GraphPad Prism 8統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。各組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95、Gephyrin mRNA 表達(dá)水平及vGLUT1、PSD95、vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平, 胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1 及vGAT 蛋白表達(dá)水平均符合正態(tài)分布,以-x±s 表示, 多組間樣本均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間樣本均數(shù)兩兩比較采用LSD-t 檢驗(yàn)。以Plt;0. 05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié) 果
2. 1 各組小鼠皮層區(qū)和 GE區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95及Gephyrin mRNA表達(dá)水平
與培養(yǎng)3 d組比較, 培養(yǎng) 7 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 及Gephyrin mRNA 表達(dá)水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05), 培養(yǎng)14 和21 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 及Gephyrin mRNA 表達(dá)水平明顯升高(Plt;0. 01)。與皮層區(qū)比較,培養(yǎng)3、7 和21 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 及Gephyrin mRNA 表達(dá)水平差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05); 培養(yǎng)14 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中PSD95 mRNA 表達(dá)水平差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(Pgt;0. 05), GephyrinmRNA 表達(dá)水平明顯降低(Plt;0. 01)。見圖1。
2. 2 各組小鼠皮層區(qū)和 GE區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGLUT1、PSD95、vGAT 及 Gephyrin 蛋白表達(dá)水平
顯微鏡下觀察可見,培養(yǎng)14 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中興奮性突觸及抑制性突觸均初步發(fā)育,相關(guān)蛋白呈陽性表達(dá)。其中興奮性突觸相關(guān)蛋白陽性表達(dá)在皮層區(qū)神經(jīng)元中更為明顯,且突觸前分子vGLUT1 蛋白和突觸后分子PSD95蛋白在皮層區(qū)神經(jīng)元的胞體及突起部位均呈現(xiàn)共定位的特征;抑制性突觸前分子vGAT 蛋白和突觸后分子Gephyrin 蛋白在GE 區(qū)神經(jīng)元胞體及突起中也呈現(xiàn)共定位的特征,且突觸前分子較相應(yīng)的突觸后分子蛋白陽性表達(dá)更明顯。見圖2 和3。與皮層區(qū)(0. 236±0. 040 和0. 193±0. 040) 比較, 培養(yǎng)14 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGLUT1 和PSD95 蛋白表達(dá)水平(0. 195±0. 047 和0. 143±0. 039) 均明顯降低(Plt;0. 01)。與皮層區(qū)(0. 180±0. 037 和0. 065±0. 027) 比較,培養(yǎng)14 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平(0. 251±0. 043 和0. 198±0. 031) 均明顯升高(Plt;0. 01)。
培養(yǎng)21 d 組小鼠皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元突觸相關(guān)蛋白陽性表達(dá)增加,興奮性突觸和抑制性突觸進(jìn)一步成熟并完善。皮層區(qū)和GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元的胞體及突起部位均形成豐富的突觸前后對(duì)應(yīng)的表達(dá)模式,突觸結(jié)構(gòu)逐步發(fā)育良好,且突觸前分子較相應(yīng)的突觸后分子蛋白陽性表達(dá)更明顯。見圖4 和5。與皮層區(qū)(0. 474±0. 064 和0. 264±0. 044) 比較, 培養(yǎng)21 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGLUT1 和PSD95 蛋白表達(dá)水平(0. 351±0. 072 和0. 231±0. 061) 均明顯降低(Plt;0. 01)。與皮層區(qū)(0. 293±0. 038 和0. 151±0. 028) 比較,培養(yǎng)21 d 組小鼠GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元中vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平(0. 355±0. 063 和0. 269±0. 058) 均明顯升高(Plt;0. 01)。
2. 3 胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和 GE 區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1 和 vGAT 蛋 白 表 達(dá) 水 平
與 皮 層 區(qū)(127. 70±17. 04 和103. 6±8. 87) 比較, 胚胎小鼠腦組織GE 區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1 蛋白表達(dá)水平(104. 10±9. 08) 明顯降低(Plt;0. 01),vGAT蛋白表達(dá)水平(118. 30±8. 79)明顯升高(Plt;0. 05)。見圖6。
3 討 論
在神經(jīng)系統(tǒng)相關(guān)的研究中,體外培養(yǎng)神經(jīng)元能夠?yàn)樯砗筒±硌芯刻峁┝己玫募?xì)胞模型,在神經(jīng)元功能、神經(jīng)發(fā)育、細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、神經(jīng)藥理學(xué)和神經(jīng)疾病研究等方面具有重要的意義[17-18]。在神經(jīng)退行性疾病阿爾茨海默病的研究中,培養(yǎng)基底前腦的神經(jīng)元可觀察其中不同類型神經(jīng)元(如膽堿能神經(jīng)元) 在致病因素作用下的變化,揭示疾病相關(guān)的細(xì)胞病理變化及其機(jī)制[19]。因此, 對(duì)于神經(jīng)元體外培養(yǎng)發(fā)育時(shí)程和發(fā)育特征等生理過程的研究具有重要意義,也是病理研究的基礎(chǔ)。
本研究結(jié)果顯示:隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,體外培養(yǎng)皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元的發(fā)育過程中,突觸相關(guān)分子vGLUT1、PSD95、vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平均明顯升高,且皮層區(qū)和GE 區(qū)抑制性突觸及興奮性突觸發(fā)育存在差異。在相同培養(yǎng)時(shí)間點(diǎn),興奮性突觸相關(guān)分子在皮層神經(jīng)元的表達(dá)高于GE 區(qū)神經(jīng)元, 抑制性突觸相關(guān)分子在GE 區(qū)神經(jīng)元的表達(dá)高于皮層神經(jīng)元。提示GE 區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元較皮層區(qū)原代培養(yǎng)神經(jīng)元更適合進(jìn)行GABA能神經(jīng)元的發(fā)育研究。此外,突觸前分子和突觸后分子的表達(dá)也存在差異,在皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元的興奮性及抑制性突觸中,突觸前相關(guān)分子的表達(dá)均較突觸后分子的表達(dá)更為明顯。
皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元突觸分子的差異表達(dá)可能是由于2 個(gè)腦區(qū)發(fā)育的細(xì)胞類型不同所致。本研究結(jié)果顯示:胚胎小鼠腦組織皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元在突觸分子表達(dá)方面及突觸發(fā)育方面存在差異,可能與2 個(gè)腦區(qū)的神經(jīng)元細(xì)胞發(fā)育有關(guān)。GE 區(qū)是大腦胚胎發(fā)育過程中短暫存在的腦結(jié)構(gòu),位于端腦的腹側(cè)部,被認(rèn)為是紋狀體、杏仁核和基底前腦等重要腦區(qū)的發(fā)育原基[20]。GE 區(qū)神經(jīng)干(祖) 細(xì)胞分化為大量的GABA 能神經(jīng)元, 分布于皮層區(qū)和紋狀體等端腦亞區(qū)[21-23]。因此, 皮層區(qū)的抑制性GABA 能中間神經(jīng)元也來源于GE 區(qū),并在分化發(fā)育過程中逐漸遷移至皮層區(qū)[24]。皮層區(qū)原位的神經(jīng)干(祖) 細(xì)胞主要發(fā)育為皮層區(qū)的興奮性神經(jīng)元。本研究結(jié)果顯示:相同的原代培養(yǎng)時(shí)間,與皮層區(qū)比較,GE 區(qū)神經(jīng)元中vGLUT1 和PSD95 蛋白表達(dá)水平明顯降低,vGAT 和Gephyrin 蛋白表達(dá)水平明顯升高,可能與不同腦區(qū)可作為不同類型神經(jīng)元的發(fā)育原基有關(guān)。
突觸前后相關(guān)分子的先后發(fā)育可能反映了發(fā)育過程中突觸前對(duì)突觸后的發(fā)育引導(dǎo)。在突觸發(fā)育過程中,突觸前成分與突觸后成分之間被證實(shí)存在相互作用, 且突觸前成分對(duì)突觸后成分具有引導(dǎo)作用[25]。當(dāng)突觸前神經(jīng)元釋放興奮性神經(jīng)遞質(zhì)谷氨酸后,可以通過 P38 和 Jun 等信號(hào)分子,誘導(dǎo)突觸后神經(jīng)元,上調(diào)與谷氨酸相對(duì)應(yīng)的離子型受體在細(xì)胞膜上的表達(dá), 如興奮性受體 N-甲基-D 天冬氨酸(N-methyl-D-aspartate, NMDA) 受體GluN1 亞基的表達(dá)。本研究結(jié)果顯示:相同原代培養(yǎng)時(shí)間,突觸前成分相關(guān)蛋白表達(dá)較突觸后成分相關(guān)蛋白表達(dá)更明顯,與突觸發(fā)育過程中突觸前對(duì)突觸后的引導(dǎo)作用一致。
綜上所述,皮層區(qū)和GE 區(qū)神經(jīng)元的突觸發(fā)育具有明顯的差異性,皮層區(qū)興奮性突觸發(fā)育較早,GE 區(qū)抑制性突觸發(fā)育較早。突觸的腦區(qū)特異性發(fā)育提示不同細(xì)胞類型的神經(jīng)疾病可能具有不同的發(fā)育來源,需在實(shí)驗(yàn)中加以甄別。
利益沖突聲明:所有作者聲明不存在利益沖突。
作者貢獻(xiàn)聲明:趙艷和盧廣泉參與文獻(xiàn)檢索、實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及論文撰寫,趙艷、杜金樂、潘雨綺和董子意參與數(shù)據(jù)收集及分析,康鑫和高弋婷參與論文結(jié)果分析及討論,高方和楊加周參與論文寫作指導(dǎo)及審校。
[參考文獻(xiàn)]
[1] DU X C, LI J S, LI M H, et al. Research progress onthe role of type I vesicular glutamate transporter(VGLUT1) in nervous system diseases[J]. Cell Biosci,2020, 10: 26.
[2] COLEY A A, GAO W J. PSD95: a synaptic proteinimplicated in schizophrenia or autism?[J]. ProgNeuropsychopharmacol Biol Psychiatry, 2018, 82:187-194.
[3] MCEACHERN E P, COLEY A A, YANG S S, et al.PSD-95 deficiency alters GABAergic inhibition in theprefrontal cortex[J]. Neuropharmacology, 2020, 179:108277.
[4] COLEY A A, GAO W J. PSD-95 deficiency disruptsPFC-associated function and behavior duringneurodevelopment[J]. Sci Rep, 2019, 9(1): 9486.
[5] ALONSO-MARTíNEZ C, RUBIO-TEVES M,PORRERO C, et al. Cerebellar and basal Ganglia inputsdefine three main nuclei in the mouse ventral motorthalamus[J]. Front Neuroanat, 2023, 17: 1242839.
[6] BOLNEO E, CHAU P Y S, NOAKES P G, et al.Investigating the role of GABA in neural developmentand disease using mice lacking GAD67 or VGATgenes[J]. Int J Mol Sci, 2022, 23(14): 7965.
[7] OLAH S S, KAREEMO D J, BUCHTA W C, et al.Acute reorganization of postsynaptic GABAA receptorsreveals the functional impact of molecularnanoarchitecture at inhibitory synapses[J]. Cell Rep,2023, 42(11): 113331.
[8] JUNG H, KIM S, KO J, et al. Intracellular signalingmechanisms that shape postsynaptic GABAergicsynapses[J]. Curr Opin Neurobiol, 2023, 81: 102728.
[9] HOFFMANN C, MILOVANOVIC D. Gephyrin: ascaffold that builds a phase at the inhibitorypostsynapses[J]. Cell Res, 2021, 31(3): 245-246.
[10]GASPERONI J, DWORKIN S. Neural stem/progenitor cell (NSPC) extraction and culture [J].Methods Mol Biol, 2024, 2746: 109-120.
[11]ZHOU W H, YANG X Y, WANG H X, et al.Neuronal aerobic glycolysis exacerbates synapse loss inaging mice[J]. Exp Neurol, 2024, 371: 114590.
[12]SOUZA S D, ROSARIO CLAUDIO J, SIM J, et al.Interleukin-10 signaling in somatosensory neuronscontrols CCL2 release and inflammatory response[J].Brain Behav Immun, 2024, 116: 193-202.
[13]GAZORPAK M, HUGENTOBLER K M, PAUL D,et al. Harnessing PROTAC technology to combat stresshormone receptor activation[J]. Nat Commun, 2023,14(1): 8177.
[14]ALEJANDRA LLANES-CUESTA M, HOI V, HAR, et al. Redox protein thioredoxin mediates neuriteoutgrowth in primary cultured mouse cerebral corticalneurons[J]. Neuroscience, 2024, 537: 165-173.
[15]沈永梅, 常曉菡, 張倩文, 等. PM2.5暴露對(duì)原代皮層神經(jīng)元 COX-2 啟動(dòng)子區(qū)甲基化水平的影響[J]. 毒理學(xué)雜志, 2022, 36(2): 152-156, 162.
[16]石子璇, 饒 維, 姬廣輝, 等. Npas4 在小鼠原代神經(jīng)元體外氧糖剝奪/復(fù)氧損傷中的保護(hù)作用及其可能機(jī)制[J]. 中國病理生理雜志, 2021, 37(8): 1409-1414.
[17]唐凡人, 余萍萍, 王 莉, 等. 白藜蘆醇預(yù)處理對(duì)大鼠皮質(zhì)神經(jīng)元氧糖剝奪/再復(fù)氧損傷后神經(jīng)元突起生長的影響[J]. 解剖學(xué)報(bào), 2017, 48(1): 1-6.
[18]KANG X, ZHANG Z P, SONG C G, et al. γ-secretaseinhibitor disturbs the morphological development ofdifferentiating neurons through affecting Notch/miR-342-5p[J]. Neurosci Lett, 2022, 778: 136603.
[19]HAMPEL H, MESULAM M M, CUELLO A C,et al. The cholinergic system in the pathophysiology andtreatment of Alzheimer’s disease[J]. Brain, 2018,141(7): 1917-1933.
[20]STILES J, JERNIGAN T L. The basics of braindevelopment[J]. Neuropsychol Rev, 2010, 20(4):327-348.
[21]KEPECS A, FISHELL G. Interneuron cell types are fitto function[J]. Nature, 2014, 505(7483): 318-326.
[22]NERY S, FISHELL G, CORBIN J G. The caudalganglionic eminence is a source of distinct cortical andsubcortical cell populations[J]. Nat Neurosci, 2002,5(12): 1279-1287.
[23]WICHTERLE H, TURNBULL D H, NERY S, et al.In utero fate mapping reveals distinct migratory pathwaysand fates of neurons born in the mammalian basalforebrain[J]. Development, 2001, 128(19): 3759-3771.
[24]GROUP P I N, ASCOLI G A, ALONSONANCLARESL, et al. Petilla terminology:nomenclature of features of GABAergic interneurons ofthe cerebral cortex[J]. Nat Rev Neurosci, 2008, 9(7):557-568.
[25]HAMMOND-WEINBERGER D R, WANG Y X,GLAVIS-BLOOM A, et al. Mechanism forneurotransmitter-receptor matching[J]. Proc Natl AcadSci U S A, 2020, 117(8): 4368-4374.
[基金項(xiàng)目] 國家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(82071529)