代云莉,彭燦,梁丹,李志陽,馮昭衛(wèi),王一凡,馮莉,陳佳佳,陳圣杰,肖瑛
(1.貴州省常見慢性疾病發(fā)病機制及藥物研究重點實驗室,貴州 貴陽 550025;2.寧波市臨床病理診斷中心,浙江 寧波 315021;3.貴陽市第二人民醫(yī)院 科研管理科,貴州 貴陽 550023)
糖尿病腎?。╠iabetic kidney disease,DKD)是糖尿病(diabetes mellitus,DM)常見微血管并發(fā)癥[1]。近年來DKD被認為是一種慢性低度炎癥性和自然免疫性疾病[2]。Toll樣受體4(Toll-like receptors 4,TLR4)和含NOD樣受體熱蛋白結(jié)構(gòu)域相關(guān)蛋白3(Nod-like receptor family pyrin domain containing 3,NLRP3)炎癥小體作為病原模式識別受體在免疫應答和炎癥反應中發(fā)揮重要作用[3-4]。有研究報道,糖尿病大鼠腎組織TLR4表達明顯增多,伴隨炎癥因子的表達和細胞外基質(zhì)的沉積,促進DKD的進展[5]。課題組前期研究表明糖尿病大鼠腎組織TLR4表達增多,促進了炎癥因子的表達和細胞外基質(zhì)的沉積[6]。有實驗研究表明在糖尿病腎損傷及脂代謝異常中NLRP3介導的炎癥反應發(fā)揮著重要作用[7-10],NLRP3炎癥小體可通過誘導白細胞介素-1β(Interleukin-1β,IL-1β)和IL-18的分泌,將糖尿病腎臟中的代謝應激與促炎級聯(lián)反應的激活聯(lián)系起來[11],同源結(jié)構(gòu)域相互作用蛋白激酶2(homeodomain interacting protein kinase 2,HIPK2)是一種絲氨酸/蘇氨酸激酶,為腎纖維化的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子[12]。研究表明HIPK2不僅可以介導促纖維化通路,還可以介導炎癥反應,在腎間質(zhì)損傷及腎間質(zhì)纖維化中發(fā)揮重要作用[13]。但在DKD中,HIPK2與TLR4信號及NLRP3炎癥小體活化的相互作用未見報道。
氧化苦參堿(Oxymatrine,OMT)是一種從苦參根部分離的喹唑啉生物堿,具有抗炎癥、抗纖維化、抗腫瘤活性,抑制iNOS表達和轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)/Smad通路。其可用于治療病毒性肝炎、癌癥、病毒性心肌炎、胃腸出血和皮膚疾病[14-16]。本課題組前期研究結(jié)果顯示,OMT可下調(diào)糖尿病大鼠腎組織TLR4的表達,抑制炎癥因子的表達和細胞外基質(zhì)的沉積,延緩DN進展[6]。為進一步探究OMT對糖尿病腎病的保護作用及其可能機制,本研究通過觀察糖尿病小鼠中腎組織TLR4、HIPK2和NLRP3的表達情況,以及給予OMT治療后小鼠腎組織TLR4、HIPK2、NLRP3、纖維連接蛋白(Fibronectin)、上皮鈣黏素(E-cadherin)及炎癥信號因子的表達變化,初步探討OMT對糖尿病腎病的保護作用及其可能機制,為尋找新的抗炎抗纖維化藥物提供理論和實驗基礎(chǔ)。
1.1.1 實驗動物 健康6周齡、SPF級db/db小鼠20只和同月齡同背景非轉(zhuǎn)基因db/m小鼠10只,體重分別為(40±5)g、(20±20)g,雌雄不限,由南京大學-南京生物醫(yī)藥研究院提供[實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2015-0001,實驗動物使用許可證號:SYXK(黔)2018-001],本實驗符合貴州醫(yī)科大學動物論理審查委員會操作規(guī)范。
1.1.2 藥物與試劑 OMT購自南京廣潤生物制品有限公司,免疫組織化學SP兩步法檢測試劑購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,血糖儀及血糖試紙購自美國強生制藥有限公司,TRIzol? Reagent購自美國Thermo Fisher Scientific公司,RIPA強裂解液和一抗稀釋液購自蘇州碧云天生物有限公司,BCA蛋白濃度測定試劑盒、BSA以及Tween-20購自北京索萊寶生物有限公司,蛋白酶磷酸酶抑制劑、30%丙烯酰胺、SDS、TEMED、APS、甘氨酸、DTT、Tris-堿、DGlucose、PMSF購自北京索萊寶生物有限公司,ECL發(fā)光試劑盒購自常州天地人和生物科技有限公司,脫脂奶粉購自內(nèi)蒙古伊利實業(yè)集團股份有限公司,RevertAIdTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit以及總RNA提取試劑盒購自美國Thermo Fisher Scientific公司,2×SuperReal PreMix Plus購自北京天根生物化學科技有限公司,小鼠抗HIPK2單克隆抗體購自美國Santa公司,小鼠抗TLR4單克隆抗體、兔抗Fibronetin多克隆抗體、小鼠抗E-cadherin單克隆抗體購自美國CST公司,小鼠抗β-actin抗體購自武漢普美克生物技術(shù)有限公司,Goat Anti-rabbit IgG/HRP、Goat Anti-Mouse IgG/HRP購自武漢普美克生物技術(shù)有限公司,酶聯(lián)免疫吸附試驗(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒購自武漢Elabscience公司。全自動生化分析儀購自德國Bayer公司,高速低溫離心機購自美國Beckman公司,電泳系統(tǒng)及電轉(zhuǎn)移裝置購自北京六一公司,凝膠成像系統(tǒng)購自美國Bio-Rad公司。
1.2.1 動物模型復制及分組 小鼠均給予無菌飼料適應性喂養(yǎng)2周,自由飲純凈水,將db/db小鼠隨機分為糖尿病組(DM組)、氧化苦參堿治療組(OMT組),各10只;并設(shè)同月齡同背景非轉(zhuǎn)基因db/m小鼠為對照組(NC組)。OMT組小鼠予以腹腔注射生理鹽水溶解的氧化苦參堿120 mg/(kg·d)[14],給藥8周后處死小鼠。
1.2.2 標本收集 處死小鼠前采集并記錄小鼠24 h尿液,空腹6 h后乙醚麻醉后摘眼球取血,并開腹取兩側(cè)腎臟。腎組織部分用4 %中性甲醛固定進行石蠟切片,其余腎臟組織置于-80 ℃冰箱冷凍保存。
1.2.3 生化指標檢測 按試劑盒說明書操作,用葡萄糖氧化酶法檢測小鼠血糖,酶分析法檢測血總膽固醇,雙縮脲法測尿蛋白濃度,得到的尿蛋白濃度與24 h尿量乘積為24 h尿總蛋白量。
1.2.4 HE、Masson染色檢測腎組織病變情況 將4%中性甲醛固定的腎臟組織做成3μm厚的石蠟切片,分別予以HE、Masson染色,光鏡下觀察腎臟組織形態(tài)及結(jié)構(gòu)變化。
1.2.5 免疫組織化學染色檢測腎組織HIPK2、TLR4、NLRP3表達和定位 采用免疫組織化學染色SP二步法,將腎組織石蠟切片進行脫蠟、水化、微波爐加熱進行抗原修復、3%過氧化氫去離子水孵育,一抗孵育(HIPK2、TLR4、NLRP3均以1∶50濃度稀釋)置于4 ℃冰箱過夜,應用DAB溶液顯色,最后用自來水充分沖洗、復染、脫水、封片,光鏡下觀察并拍攝圖片。
1.2.6 Western blotting檢測腎組織HIPK2、TLR4、NLRP3、Fibronectin、E-cadherin蛋白表達 在-80 ℃冰箱內(nèi)取腎臟組織0.08 g,加入500 μL組織蛋白裂解液進行組織勻漿。離心后,取上清液,按BCA試劑盒說明書檢測小鼠腎組織蛋白濃度。加入5×的上樣緩沖液,煮沸后經(jīng)聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白;轉(zhuǎn)膜,50 g/L脫脂牛奶封閉。TBST洗膜后,分別加入小鼠抗HIPK2單克隆抗體(1∶1 000),小鼠抗TLR4單克隆抗體(1∶1 000),兔抗Fibronetin多克隆抗體(1∶1 000),小鼠抗E-cadherin單克隆抗體(1∶1 000),小鼠抗β-actin抗體(1∶4 000),4 ℃孵育過夜。洗滌后,分別加入相應的Goat Anti-rabbit IgG/HRP或Goat Anti-Mouse IgG/HRP(1∶5 000),室溫水平搖床上孵育1 h,用增強化學發(fā)光法顯色,Bio-Rad凝膠成像系統(tǒng)曝光,經(jīng)Image Lab 5.1軟件處理并分析圖像。
1.2.7 ELISA檢測小鼠血清IL-1β和IL-18水平 將收集的小鼠血液置于低溫高速離心機中,4 ℃、3 500 r/min離心3 min,取上層血清液,按ELISA試劑盒說明書檢測血清IL-1β、IL-18水平。
數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件。計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,比較用方差分析,進一步兩兩比較用LSD-t檢驗,采用Pearson法進行相關(guān)性分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
各組小鼠體重、血糖、24 h尿蛋白量、總膽固醇、甘油三酯水平比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。DM組較NC組均升高(P<0.05),OMT組24 h尿蛋白量、總膽固醇、甘油三酯水平較DM組降低(P<0.05)。見表1。
表1 各組小鼠一般資料比較 (n=10,±s)
表1 各組小鼠一般資料比較 (n=10,±s)
組別NC組DM組OMT組F 值P 值體重/g 23.00±2.58 58.14±4.30 56.00±6.2 182.915 0.000血糖/(mmol/L)6.93±0.38 38.21±3.76 36.49±6.35 169.726 0.000 24 h尿蛋白量/mg 7.32±0.36 34.38±4.86 24.26±8.69 56.489 0.000總膽固醇/(mmol/L)2.18±0.38 4.21±0.36 2.88±0.59 51.287 0.000甘油三酯/(mmol/L)1.26±0.28 2.34±0.29 1.65±0.14 48.809 0.000
HE染色可見,在NC組小鼠的腎組織中,腎小球結(jié)構(gòu)清楚,輪廓清晰,腎小管上皮細胞排列整齊,DM組可見腎小球系膜區(qū)節(jié)段性增生,基底膜無明顯增厚,大部分腎小管上皮細胞裂解,有空泡樣變性,部分腎小管管腔內(nèi)有透明管型,間質(zhì)有大量淋巴細胞浸潤及纖維組織增生,部分小動脈內(nèi)膜纖維組織增生。與DM組相比,OMT組腎臟病變情況有不同程度的改善。Masson染色可見,與NC組相比,DM組腎小管間質(zhì)中呈深藍色的Masson染色陽性物質(zhì)明顯增多,而與DM組比較,OMT組可見腎小管間質(zhì)中Masson染色陽性物質(zhì)較DM組減少。見圖1。
圖1 各組小鼠腎組織的形態(tài)觀察
各組小鼠TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin、Ecadherin蛋白相對表達量比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。DM組TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin蛋白相對表達量較NC組上升(P<0.05),E-cadherin蛋白相對表達量較NC組下降(P<0.05);OMT組小鼠TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin蛋白相對表達量較DM組下降(P<0.05),E-cadherin蛋白相對表達量較DM組上升(P<0.05)。見表2和圖2。
圖2 各組小鼠腎組織中TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin、E-cadherin蛋白條帶圖
表2 各組小鼠TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin、E-cadherin蛋白相對表達量比較 (n=10,±s)
表2 各組小鼠TLR4、HIPK2、NLRP3、Fibronectin、E-cadherin蛋白相對表達量比較 (n=10,±s)
組別NC組DM組OMT組F 值P 值TLR4 0.17±0.01 0.45±0.04 0.20±0.03 265.776 0.000 HIPK2 0.32±0.02 0.65±0.06 0.51±0.03 187.493 0.000 NLRP3 0.13±0.01 0.21±0.01 0.14±0.01 280.525 0.000 Fibronectin 0.13±0.01 0.51±0.03 0.20±0.03 644.810 0.000 E-cadherin 0.64±0.04 0.35±0.03 0.68±0.03 255.241 0.000
免疫組織化學染色可見,NC組小鼠腎組織中,TLR4、HIPK2、NLRP3無明顯棕黃染,表達減少;DM組可見TLR4、HIPK2、NLRP3棕黃染表達明顯增多,主要表達在腎小管上皮細胞和部分腎小球;OMT組TLR4、HIPK2、NLRP3陽性染色較DM組明顯減弱。見圖3。
圖3 各組小鼠腎組織TLR4、HIPK2、NLRP3表達 (免疫組織化學染色×200)
各組小鼠血清IL-1β、IL-18水平比較,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。DM組較NC組升高(P<0.05),OMT組較DM組降低(P<0.05)。見表3。
表3 各組小鼠血清中IL-1β、IL-18水平比較(n=10,pg/μL,±s)
表3 各組小鼠血清中IL-1β、IL-18水平比較(n=10,pg/μL,±s)
組別NC組DM組OMT組F 值P 值IL-1β 27.20±7.66 94.00±18.63 51.35±18.29 28.620 0.000 IL-18 116.68±23.63 256.72±13.05 159.40±47.29 31.271 0.000
Pearson相關(guān)性分析顯示,DM組腎組織中HIPK2蛋白與TLR4、NLRP3蛋白表達均呈正相關(guān)(r=0.881和0.774,P=0.001和0.009)。OMT組HIPK2蛋白與TLR4、NLRP3蛋白表達均呈正相關(guān)(r=0.814和0.871,P=0.004和0.001)。
有研究表明db/db小鼠從4周齡起即可出現(xiàn)貪食、肥胖、多飲多尿,隨著周齡的增加進而出現(xiàn)有明顯的高血糖、高血脂等特征[17]。本研究中小鼠隨著周齡的增加也出現(xiàn)了上述特征,經(jīng)病理組織HE染色和Masson染色可見db/db小鼠腎小球系膜區(qū)發(fā)生節(jié)段性增生,基底膜無明顯增厚,腎小管上皮細胞裂解有空泡樣變性,間質(zhì)有淋巴細胞浸潤及纖維組織增生,部分小動脈內(nèi)膜纖維組織增生,深藍色的Masson染色陽性物質(zhì)明顯增多,ELISA檢測顯示db/db小鼠血清中的炎性介質(zhì)IL-1β、IL-18水平明顯增加,生化指標檢測顯示db/db小鼠體重、血糖、24 h尿蛋白量、總膽固醇、甘油三酯水平較NC組均明顯升高;與db/db小鼠相比,OMT治療后db/db小鼠腎臟病理改變有所改善,伴隨24 h尿蛋白量、總膽固醇、甘油三酯水平降低,而體重和血糖水平無統(tǒng)計學差異,Masson染色陽性物質(zhì)明顯減少,炎性介質(zhì)IL-1β與IL-18的含量明顯降低,以上結(jié)果均提示db/db小鼠出現(xiàn)腎功能減退,糖尿病腎病模型復制成功,OMT可明顯減輕db/db小鼠腎臟炎癥反應及纖維化程度,改善腎功能,但其可能的作用機制不甚清楚。
研究發(fā)現(xiàn),TLR4和NF-κB作為炎癥反應激活通路中的重要調(diào)節(jié)因子,在糖尿病腎病發(fā)展過程中的表達水平上調(diào)以及過度激活可能是導致糖尿病腎損傷的重要機制之一[18]。而NAGAREDDY等[19]發(fā)現(xiàn),在脂肪組織巨噬細胞中,通過TLR4/MyD88誘導IL-1β和NLRP3炎癥小體的活化,抑制TLR4的配體或NLRP3-IL-1β信號軸可以減輕肥胖狀態(tài)下脂肪組織的炎癥反應和胰島素抵抗。提示TLR4的信號傳導與NLRP3之間存在信號串擾且共同參與了糖尿病肥胖狀態(tài)的病理過程[20]。本研究結(jié)果中NC組小鼠腎組織中TLR4、NLRP3少量棕黃染,db/db小鼠在腎小管上皮細胞和部分腎小球中可見TLR4、NLRP3棕黃染表達明顯增多,Western blotting結(jié)果顯示,兩者的水平明顯增加,且伴隨纖維化指標Fibronectin蛋白表達增多,EMT指標E-cadherin蛋白表達明顯下降,以上結(jié)果提示db/db小鼠腎組織中TLR4、NLRP3炎癥信號通路被激活,炎性介質(zhì)產(chǎn)生增多,出現(xiàn)腎臟病理改變,上皮細胞表型標志物減少,促進了EMT過程,纖維結(jié)締組織在腎組織中含量增加,加快纖維化進展。
HIPK2是一種功能多樣的絲氨酸/蘇氨酸激酶,可促凋亡、促纖維化、抑制腫瘤轉(zhuǎn)移,參與DNA損傷應答及缺氧環(huán)境中抑制血管生成。有研究發(fā)現(xiàn)HIPK2能抑制TGF-β誘導的Smad3磷酸化,HIPK2缺失可抑制該通路的激活[21];也有研究證實TGF-β/Smad3信號通路的激活能促進NLRP3炎癥小體的活化,而在小膠質(zhì)細胞中,脂多糖可通過上調(diào)TLR4表達,激活小膠質(zhì)細胞,促進NLRP3與Caspase-1活化,引起小鼠腦組織中炎性細胞因子高表達[22];非小細胞肺癌中,胡蘿卜素B直接結(jié)合TLR4來激活NLRP3炎癥小體,進一步導致Gasdermin D的N-和C-末端分離以執(zhí)行焦性下垂[23]。以上研究提示HIPK2可能與TLR4、NLRP3共同參與糖尿病腎病的發(fā)病機制,但是否存在相關(guān)性,尚未見報道。本研究結(jié)果顯示,與NC組相比,db/db小鼠腎小管上皮細胞和部分腎小球中HIPK2蛋白表達明顯增加,相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)db/db小鼠HIPK2分別與TLR4和NLRP3呈正相關(guān),揭示3者共同促進糖尿病腎病的腎功能減退,促炎信號的活化及腎臟纖維化的進程。
有學者研究發(fā)現(xiàn),OMT可通過抑制TLR4或NLRP3炎癥信號發(fā)揮作用[24-25]。本研究發(fā)現(xiàn)OMT組與DM組相比,HIPK2、TLR4、NLRP3的表達均明顯降低,伴隨炎癥反應減弱、炎性介質(zhì)釋放減少,同時Ecadherin表達增加,F(xiàn)ibronectin沉積減少,OMT組HIPK2分別與TLR4和NLRP3也呈正相關(guān)。
綜上所述,OMT可改善db/db小鼠血脂水平和腎功能,減少炎性介質(zhì)的釋放,逆轉(zhuǎn)EMT過程,減輕腎臟纖維化進展,可能與下調(diào)HIPK2表達,進而抑制TLR4和NLRP3炎癥信號通路有關(guān),但是具體的調(diào)控機制還需要在體外應用多種手段干預進一步論證。