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    丁?;鈮A代謝異常新生兒的基因型和生化表型分析

    2024-01-09 02:33:38吳鼎文楊茹萊方可欣湯佳明于美君趙正言
    關(guān)鍵詞:變異型初篩等位基因

    吳鼎文,楊茹萊,方可欣,劉 晨,湯佳明,于美君,趙正言

    浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬兒童醫(yī)院遺傳與代謝科 國(guó)家兒童健康與疾病臨床醫(yī)學(xué)研究中心 浙江省新生兒疾病診治重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江 杭州 310052

    串聯(lián)質(zhì)譜法將傳統(tǒng)的“一樣本、一檢測(cè)、一標(biāo)志物、一疾病”篩查變成了“一樣本、一檢測(cè)、多標(biāo)志物、多疾病”篩查,成為新生兒疾病篩查領(lǐng)域的關(guān)鍵技術(shù)[1]?;诟裳哌M(jìn)行C4 檢測(cè)主要用于IBDD 和SCADD 的新生兒篩查[2]。但因C4 和異丁酰肉堿的質(zhì)荷比相同,無(wú)法通過(guò)串聯(lián)質(zhì)譜法區(qū)分,故進(jìn)一步的分型檢測(cè)十分關(guān)鍵[3]?;驒z測(cè)是對(duì)生化檢測(cè)的有效補(bǔ)充,可提高遺傳代謝病診斷的準(zhǔn)確性,具有重要的臨床應(yīng)用價(jià)值[4]?;诎邢蚧虿东@的高通量測(cè)序是針對(duì)感興趣的特定基因外顯子區(qū)域定制探針,與基因組DNA進(jìn)行雜交,經(jīng)富集后利用高通量測(cè)序進(jìn)行分析。由于測(cè)序的目標(biāo)區(qū)域只占基因組的一小部分,因此可在保證獲得足量目標(biāo)基因變異信息的前提下,極大地降低測(cè)序成本。靶向基因捕獲與高通量測(cè)序的組合應(yīng)用既保留了信息自動(dòng)化分析的優(yōu)勢(shì),又避免檢測(cè)過(guò)多冗余內(nèi)含子區(qū)域,大大提高了基因缺陷疾病的檢測(cè)效率[5-6]。當(dāng)前,生化指標(biāo)檢測(cè)聯(lián)合基因變異的篩查已成為新生兒疾病篩查的新趨勢(shì)[7]。故明確基因變異型與生化表型的關(guān)系更顯得必要和緊迫。迄今,對(duì)于新生兒疾病篩查中出現(xiàn)單純性C4 增高的群體,其基因變異型與生化表型的關(guān)聯(lián)性尚待進(jìn)一步探討。本研究回顧性分析了120 例單純性C4 增高新生兒臨床檢測(cè)資料,通過(guò)靶向捕獲目標(biāo)基因聯(lián)合高通量測(cè)序檢測(cè)C4 代謝異常新生兒的基因變異情況,分析基因變異型與生化表型的關(guān)系,從而為新生兒遺傳代謝病篩查及臨床決策提供參考。

    1 對(duì)象與方法

    1.1 對(duì)象

    收集2018年1月至2023年6月在浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬兒童醫(yī)院經(jīng)串聯(lián)質(zhì)譜法篩查結(jié)果為單純C4增高的120例新生兒(男性63例,女性57例)初篩和召回復(fù)查的C4、C4/C3 檢測(cè)數(shù)據(jù)。在法定監(jiān)護(hù)人簽署知情同意書后,采集C4增高新生兒及其父母EDTA 抗凝靜脈血各1.0~2.0 mL,4 ℃保存?zhèn)溆?。研究通過(guò)浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬兒童醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)審查(2018-IRB-076)。

    1.2 主要儀器及試劑

    Xevo TQD串聯(lián)質(zhì)譜系統(tǒng)為美國(guó)Waters公司產(chǎn)品;Nanodrop2000 超微量核酸蛋白測(cè)定儀為美國(guó)ThermoFisher Scientific 公司產(chǎn)品;HiSeq 2500NGS平臺(tái)為美國(guó)Illumina 公司產(chǎn)品;3500XL 測(cè)序儀為美國(guó)ABI Life 公司產(chǎn)品;非衍生化多種氨基酸、肉堿和琥珀酰丙酮測(cè)定試劑盒為美國(guó)PerkinElmer公司產(chǎn)品;QIAamp DNA Blood Mini Kit 血液DNA提取試劑盒為德國(guó)Qiagen 公司產(chǎn)品;Qubit 雙鏈DNA 檢測(cè)試劑盒、BigDyeTMTerminator v3.1 循環(huán)測(cè)序試劑盒為美國(guó)Invitrogen 公司產(chǎn)品;Agencourt AMPure XP 磁珠為美國(guó)Beckman Coulter 公司產(chǎn)品;TruePrepTM DNA Library Prep Kit V2 for Illumina?Kit 文庫(kù)構(gòu)建試劑盒、TruePrepTM Index Kit V2 for Illumina?Kit標(biāo)簽試劑盒為美國(guó)Vazyme公司產(chǎn)品;High Sensitivity DNA Kit 檢測(cè)試劑盒為美國(guó)Agilent 公司產(chǎn)品;DNA Quantification Standards and Primer Premix Kit 文庫(kù)定量試劑盒為美國(guó)KAPA Biosystems 公司產(chǎn)品;LA PCRTMKit酶試劑盒為日本TaKaRa 公司產(chǎn)品;NucleoSpin?Gel and PCR Clean-up PCR 產(chǎn)物純化試劑盒為德國(guó)Macherey-Nagel公司產(chǎn)品。

    1.3 串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè)新生兒外周血C4 及結(jié)果判斷

    依據(jù)新生兒疾病篩查技術(shù)規(guī)范的要求采集干血斑,參考非衍生化多種氨基酸、肉堿和琥珀酰丙酮測(cè)定試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行實(shí)驗(yàn)操作,于Xevo TQD 串聯(lián)質(zhì)譜系統(tǒng)進(jìn)行檢測(cè)。參考文獻(xiàn)[8]中的方法收集C4和C4/C3檢測(cè)數(shù)據(jù)。為消除不同時(shí)期C4檢測(cè)的差異,獲得C4水平在“同一平面”的比較分析,將C4 和C4/C3 檢測(cè)數(shù)據(jù)換算成C4 增高倍數(shù)。根據(jù)C4 檢測(cè)值參考范圍(0.03~0.48 μmol/L)和C4/C3比值參考范圍(0.04~0.46),C4增高倍數(shù)=(C4檢測(cè)值÷0.48+C4/C3比值÷0.46)÷2。召回串聯(lián)質(zhì)譜初篩發(fā)現(xiàn)C4指標(biāo)增高的新生兒,重新采樣進(jìn)行串聯(lián)質(zhì)譜檢測(cè),C4仍增高者確定為“C4增高”。

    1.4 靶向捕獲目標(biāo)基因聯(lián)合高通量測(cè)序檢測(cè)基因變異

    1.4.1 DNA提取 采用QIAamp DNA Blood Mini Kit 血液DNA 提取試劑盒,按照說(shuō)明書提取全血基因組DNA,采用紫外分光光度計(jì)和Qubit雙鏈DNA檢測(cè)試劑盒檢測(cè)DNA濃度和純度。

    1.4.2 建庫(kù)及測(cè)序 由美國(guó)Agilent 公司定制ACAD8和ACADS基因的外顯子及鄰近50 bp 區(qū)域的捕獲探針,通過(guò)多重探針雜交方法靶向富集目標(biāo)區(qū)域序列;Agencourt AMPure XP 磁珠純化捕獲產(chǎn)物。按照TruePrepTM DNA Library Prep Kit V2 for Illumina?Kit文庫(kù)構(gòu)建試劑盒說(shuō)明書處理純化產(chǎn)物,建庫(kù)過(guò)程中每個(gè)樣本加上特殊標(biāo)簽。文庫(kù)經(jīng)Qubit及2100 Bioanalyzer進(jìn)行濃度及片段大小質(zhì)檢分析確定合格后,利用DNA Quantification Standards and Primer Premix Kit 文庫(kù)定量試劑盒進(jìn)行文庫(kù)精確定量并確定上機(jī)樣本量,最后在HiSeq 2500平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序反應(yīng)。目標(biāo)區(qū)覆蓋度大于99.90%,目標(biāo)區(qū)平均測(cè)序深度大于300次。

    1.4.3 數(shù)據(jù)處理 將基因靶向高通量測(cè)序數(shù)據(jù)進(jìn)行低質(zhì)量過(guò)濾,以人類基因組hg19 為參考序列,通過(guò)BWA(Burrows-Wheeler Aligner)、Picard等生物信息軟件進(jìn)行序列比對(duì)及重復(fù)標(biāo)記。采用GATK(The Genome Analysis Toolkit)、Samtools進(jìn)行變異位點(diǎn)的識(shí)別[9]。采用Annovar 注釋軟件將變異位點(diǎn)注釋到公共突變數(shù)據(jù)庫(kù),以變異位點(diǎn)的人群頻率、序列保守性、變異所處的位置等條件進(jìn)行篩選。

    1.5 桑格測(cè)序檢測(cè)基因變異的遺傳來(lái)源

    采用桑格測(cè)序?qū)π律鷥杭捌涓浮⒛赣H進(jìn)行候選變異位點(diǎn)的驗(yàn)證,以明確變異的遺傳來(lái)源及順式或反式。取50 ng DNA,使用待測(cè)位點(diǎn)的特異性引物,按照LA PCRTMKit 酶試劑盒操作流程進(jìn)行PCR,并使用NucleoSpin?Gel and PCR Clean-up試劑盒純化PCR產(chǎn)物。回收PCR產(chǎn)物按照BigDyeTMTerminator v3.1 循環(huán)測(cè)序試劑盒操作流程進(jìn)行測(cè)序PCR 反應(yīng)及純化。純化產(chǎn)物于ABI 3500XL 平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序結(jié)果采用SeqMan 軟件進(jìn)行序列比對(duì)分析。

    1.6 蛋白功能域預(yù)測(cè)及基因變異的致病性評(píng)估

    通過(guò)檢索NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)獲得ACAD8基因(NM_014384.3)和ACADS基因(NM_000017.4)的蛋白質(zhì)序列。通過(guò)SMART數(shù)據(jù)庫(kù)(http://smart.embl-heidelberg.de/smart/change_mode.pl)對(duì)基因的蛋白質(zhì)序列進(jìn)行功能域預(yù)測(cè)。采用SIFT、Polyphen2_HDIV、Polyphen2_HVAR、LRT、MutationTaster、Mutation Assessor、FATHMM、PROVEAN、MetaSVM、MetaLR、REVEL等11個(gè)生物信息軟件預(yù)測(cè)錯(cuò)義突變的危害性,并使用SpliceAI 軟件預(yù)測(cè)變異是否影響基因剪切。在ClinVar、HGMD、LOVD 數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索相關(guān)變異的收錄和注釋情況,在PubMed 數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索相關(guān)變異的文獻(xiàn)報(bào)道情況。參考ACMG 分類標(biāo)準(zhǔn)結(jié)合臨床隨訪情況評(píng)估變異的致病性,具體分為“致病”、“可能致病”、“臨床意義未明”、“可能良性”、“良性”五級(jí)[10]。評(píng)估為“致病”、“可能致病”、“臨床意義未明”的基因變異納入本次研究。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    通過(guò)R 語(yǔ)言(https://www.r-project.org/)編程。計(jì)量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,采用威爾科克森秩和檢驗(yàn)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 單純C4增高新生兒基因變異檢測(cè)結(jié)果

    在120 例C4 增高新生兒中,檢出ACAD8基因和(或)ACADS基因變異117例(97.50%),均為遺傳來(lái)源。ACAD8基因共檢出32 種變異型,涉及23 種錯(cuò)義突變(71.88%)、5 種移碼突變(15.63%)、3 種剪接突變(9.38%)和1 種同義突變(3.13%)。其中,c.244_245del(p.A82Pfs*22)、c.258del(p.F86Lfs*38)、c.121C>T(p.L41F)、c.359C>T(p.T120I)、c.887G>A(p.R296Q)、c.947A>C(p.Q316P)、c.986C>T(p.A329V)未曾報(bào)道,根據(jù)蛋白功能域預(yù)測(cè)結(jié)果,這7個(gè)變異均位于功能域,前2種移碼突變?cè)u(píng)估為“致病”,后5種錯(cuò)義突變?cè)u(píng)估為“臨床意義未明”。ACAD8基因變異位點(diǎn)分布情況見(jiàn)圖1。ACADS基因共檢出41 種變異型,涉及38種錯(cuò)義突變(92.68%)、2種剪接突變(4.88%)和1 種整碼突變(2.44%)。其中17 種變異型未曾報(bào)道,具體為c.79A>C(p.T27P)、c.104C>T(p.P35L)、c.233G>A(p.G78E)、c.301G>T(p.A101S)、c.346A>G(p.M116V)、c.360+5G>A、c.466G>A(p.E156K)、c.586G>A(p.V196M)、c.698T>C(p.I233T)、c.820G>T(p.G274C)、c.847G>A(p.A283T)、c.862G>T(p.D288Y)、c.968G>A(p.S323N)、c.987G>T(p.W329C)、c.1049T>C(p.L350P)、c.1062G>C(p.E354D)、c.1186G>A(p.E396K),其中c.360+5G>A 為剪接突變,其余均為錯(cuò)義突變;除c.79A>C(p.T27P)外,其余均位于功能域;c.233G>A(p.G78E)和c.1186G>A(p.E396K)被評(píng)估為“可能致病”,其余15種均被評(píng)估為“臨床意義未明”。ACADS基因變異位點(diǎn)分布情況見(jiàn)圖2。上述結(jié)果提示,ACAD8基因和ACADS基因變異是導(dǎo)致新生兒血C4 增高的主要遺傳學(xué)原因,錯(cuò)義突變是主要類型,且均存在高頻變異型。

    圖1 本研究檢出的32種ACAD8基因變異位點(diǎn)分布Figure 1 Distribution of ACAD8 genes variations detected in the study

    圖2 本研究檢出的41種ACADS基因變異位點(diǎn)分布Figure 2 Distribution of ACADS genes variations detected in the study

    2.2 不同基因型新生兒C4增高倍數(shù)比較

    120 例新生兒中,檢出ACAD8雙等位基因變異39例,ACAD8單等位基因變異3 例,ACADS雙等位基因變異34例,ACADS單等位基因變異36例,ACAD8和ACADS雙 基因變 異5例,未檢出基因變異3例。其中,ACAD8雙等位基因變異組的C4增高倍數(shù)初篩值為3.39±0.97(1.64~5.35),召回值 為3.79±1.18(1.00~5.86,其中1例小于1.50);ACADS雙等位基因變異組的C4 增高倍數(shù)初篩值為2.63±0.95(1.53~5.79),召回值為2.90±1.25(1.29~6.16,其中4 例小于1.50);ACADS單等位基因變異組的C4 增高倍數(shù)初篩值為1.42±0.35(0.87~2.49,其中27 例小于1.50),召回值為1.33±0.26(0.94~1.97,其中30 例小于1.50)。因ACAD8單等位基因變異及ACAD8和ACADS雙基因變異的例數(shù)較少,不具備統(tǒng)計(jì)學(xué)分析價(jià)值,故不予分組分析。組間比較顯示,ACAD8雙等位基因變異組、ACADS雙等位基因變異組C4 增高倍數(shù)初篩值和召回值均顯著高于ACADS單等位基因變異組(均P<0.01),且ACAD8雙等位基因變異組C4 增高倍數(shù)初篩值和召回值較ACADS雙等位基因變異組均更高(均P<0.01),見(jiàn)圖3,各例的基因型和C4 增高倍數(shù)見(jiàn)附表1。結(jié)果提示,檢出雙等位基因變異新生兒的C4 水平較單等位基因變異者高,且ACAD8變異者較ACADS變異者的C4水平更高;新生兒在初篩時(shí),C4 增高倍數(shù)1.50 以上檢出雙等位基因變異的概率更高。

    圖3 不同基因型新生兒C4增高倍數(shù)比較Figure 3 Comparison of multiples of C4 reference range among different gene variations groups

    3 討論

    采用串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè)新生兒干血斑中數(shù)十種氨基酸、游離肉堿及?;鈮A的水平來(lái)篩查氨基酸代謝障礙、有機(jī)酸血癥及脂肪酸氧化代謝障礙等多種遺傳代謝病,已廣泛應(yīng)用于新生兒出生缺陷的防治[11]。C4 是串聯(lián)質(zhì)譜法新生兒篩查的重要指標(biāo),在IBDD、SCADD、乙基丙二酸腦病、Ⅱ型戊二酸血癥和甲亞氨基谷氨酸尿癥病例中均可出現(xiàn)C4 或C4 異構(gòu)體的增高[2]。當(dāng)前,國(guó)際上普遍采用流動(dòng)注射式串聯(lián)質(zhì)譜法進(jìn)行新生兒遺傳代謝病篩查,可實(shí)現(xiàn)高通量,但無(wú)法分離C4 的異構(gòu)體和同量異位化合物[3]。因此對(duì)C4增高新生兒進(jìn)行后續(xù)的鑒別診斷十分重要。

    既往研究表明,IBDD 和SCADD 均為常染色體隱性遺傳病,分別由ACAD8和ACADS的雙等位基因變異所致,串聯(lián)質(zhì)譜法檢測(cè)均呈現(xiàn)單純的C4增高[2]。在本研究隊(duì)列的120 例單純C4 增高的新生兒中,39 例檢出ACAD8雙等位基因變異,3 例檢出ACAD8單等位基因變異,34 例檢出ACADS雙等位基因變異,36例檢出ACAD8單等位基因變異(19 例為母源,17 例為父源),5 例檢出ACAD8和ACADS雙基因變異,說(shuō)明單純C4增高新生兒的遺傳學(xué)原因復(fù)雜,ACAD8和ACADS基因的雙等位基因變異、單等位基因變異及雙基因復(fù)雜變異均可導(dǎo)致不同程度的C4 增高。本次檢出的32種ACAD8基因變異型離散分布于1 至10 號(hào)外顯子,錯(cuò)義突變占71.88%(23/32),其中c.286G>A和c.1000C>T 最常見(jiàn),與Feng等[12]總結(jié)的情況類似。本次檢出的41種ACADS基因變異型離散分布于2至10號(hào)外顯子,以錯(cuò)義突變?yōu)橹鳎?2.68%)。其中c.1031A>G、c.1130C>T 和c.164C>T 的檢出頻率較高,分別為27.27%(30/110)、14.55%(16/110)、9.09%(10/110)。而Zhang等[13]報(bào)道中國(guó)北方人群ACADS基因最常見(jiàn)變異型為c.1031A>G(33.33%)和c.164C>T(33.33%),而c.1130C>T 僅檢出2 次,提示ACADS基因變異存在一定地域特征,c.1130C>T(p.P377L)可能是浙江地區(qū)人群特有的高頻變異。在新近報(bào)道的50個(gè)ACAD8基因變異的病例中,合并報(bào)道了20 種新的變異型[12,14]。本次再增添7種未曾報(bào)道的ACAD8基因變異型和17種未曾報(bào)道的ACADS基因變異型,說(shuō)明ACAD8和ACADS變異均具有高度異質(zhì)性,可以預(yù)見(jiàn)隨著高通量測(cè)序技術(shù)在遺傳代謝病篩查和診斷中的廣泛應(yīng)用,將會(huì)出現(xiàn)更多新的變異型。

    眾所周知,在新生兒遺傳代謝病篩查體系中,通過(guò)初篩時(shí)特定生化指標(biāo)的差異來(lái)識(shí)別目標(biāo)疾病高危人群是其核心內(nèi)涵。那么初篩呈現(xiàn)C4增高的陽(yáng)性預(yù)測(cè)值如何呢?Zhou等[2]報(bào)道經(jīng)常規(guī)串聯(lián)質(zhì)譜法篩查,1029 名新生兒呈現(xiàn)C4 增高,通過(guò)二級(jí)篩查,初篩陽(yáng)性兒降低至237名,但僅有17名獲得了遺傳學(xué)證據(jù)支持,說(shuō)明現(xiàn)有串聯(lián)質(zhì)譜法新生兒篩查體系中C4 增高兒的假陽(yáng)性問(wèn)題突出。本研究對(duì)不同基因變異組C4 增高倍數(shù)進(jìn)行比較分析結(jié)果顯示,ACAD8和ACADS雙等位基因變異群體的召回復(fù)測(cè)C4 水平整體高于初篩時(shí)期,但不同患者升高或降低均存在。Zhou等[2]基于17 例檢出基因變異的C4 增高患兒進(jìn)行分析,提示SCADD 患兒和IBDD 患兒間C4 水平?jīng)]有差異。而本文資料顯示ACAD8雙等位基因變異組的初篩和召回復(fù)測(cè)C4 水平均顯著高于ACADS雙等位基因變異組和ACADS單等位基因變異組;ACADS雙等位基因變異組的初篩和召回復(fù)測(cè)C4水平均顯著高于ACADS單等位基因變異組。這是否意味著獲得遺傳學(xué)證據(jù)支持的患兒與缺乏遺傳學(xué)證據(jù)支持患兒間的C4水平存在“分水嶺”呢?本文資料顯示,所有攜帶ACAD8雙等位基因變異或ACADS雙等位基因變異新生兒的初篩C4 增高倍數(shù)均大于1.50,而ACADS單等位基因變異僅有約25%(9/36)的初篩C4 增高倍數(shù)大于1.50,提示常規(guī)串聯(lián)質(zhì)譜法新生兒篩查呈現(xiàn)為單純的C4 增高時(shí),其“篩查切值”可以適當(dāng)提升,以減少假陽(yáng)性病例。

    綜上所述,靶向捕獲疾病基因聯(lián)合高通量測(cè)序能高效探查C4代謝異常兒的遺傳學(xué)背景,可推薦為串聯(lián)質(zhì)譜法篩查陽(yáng)性患兒臨床鑒別及分型診斷的首選方法。本文資料提示ACAD8和(或)ACADS基因變異是新生兒C4 增高的主要遺傳學(xué)原因,拓展了ACAD8、ACADS的基因變異譜。新生兒串聯(lián)質(zhì)譜法篩查呈現(xiàn)單純的C4增高時(shí),其篩查切值建議適當(dāng)提升,但合適的切值有待后續(xù)研究。

    本文附表見(jiàn)電子版。

    志謝本研究得到了國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(2022YFC2703401)和浙江省重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃(2021C03099)的資助

    AcknowledgementsThis study was supported by the National Key R&D Program of China (2022YFC2703401),and Key R&D Program of Zhejiang Province (2021C03099)

    利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突

    Conflict of InterestsThe authors declare that there is no conflict of interests

    ?The author(s) 2023.This is an open access article under the CC BY-NC-ND 4.0 License (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/)

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