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    經(jīng)典名方溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)總黃酮、柚皮苷和新橙皮苷含量測(cè)定

    2023-11-20 07:22:32楊思雨鄒妍李寅慶張紅梅
    中國(guó)野生植物資源 2023年10期
    關(guān)鍵詞:黃酮

    楊思雨,鄒妍,李寅慶,4,張紅梅

    (1.上海中醫(yī)藥大學(xué) 中藥學(xué)院,上海 201203;2.中藥創(chuàng)新藥物研發(fā)上海高校工程研究中心,上海 201203;3.神威藥業(yè)集團(tuán)有限公司,河北 石家莊 051430;4.河北省經(jīng)典名方與現(xiàn)代中藥質(zhì)量過程控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北 石家莊 051430)

    在國(guó)家中醫(yī)藥管理局頒布的《古代經(jīng)典名方目錄(第一批)》中,溫膽湯為第一批可進(jìn)行復(fù)方制劑簡(jiǎn)化注冊(cè)的經(jīng)典名方?!秱浼鼻Ы鹨健分嘘P(guān)于溫膽湯的記載為“半夏、竹茹、枳實(shí)各二兩,橘皮三兩,甘草一兩,生姜四兩,上六味?咀,以水八升煮取二升,分三服”[1],主要用于治療神經(jīng)系統(tǒng)[2]、內(nèi)分泌系統(tǒng)[3-4]、消化系統(tǒng)[5]、心血管系統(tǒng)[6]等疾病。

    目前關(guān)于溫膽湯及其加減方的報(bào)道,大多集中在臨床應(yīng)用及藥理作用方面,對(duì)于質(zhì)量控制方面的研究較少,主要集中在指紋圖譜的研究[7-8]及代表成分的含量測(cè)定[9-10],對(duì)于評(píng)價(jià)溫膽湯的質(zhì)量提供了一定的方法,但是對(duì)于溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中所含化學(xué)成分無法整體了解,目前溫膽湯大類成分研究只見于多糖類成分[11]的報(bào)道。經(jīng)過前期研究以及查閱文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn)[9],溫膽湯中黃酮類成分最為豐富,是治療高血壓、動(dòng)脈粥樣硬化的主要活性成分[12]。黃酮類成分中又以柚皮苷和新橙皮苷含量為主,常作為評(píng)價(jià)溫膽湯質(zhì)量的指標(biāo)成分,具有促進(jìn)胃腸運(yùn)動(dòng)和抗?jié)兊茸饔茫?3-14]。

    紫外分光光度法(Ultraviolet and visible spectrophotometry, UV)適用于總黃酮的測(cè)定,具有操作簡(jiǎn)便快速,準(zhǔn)確度高,精密度好的特點(diǎn)。目前黃酮類化合物測(cè)定法有直接測(cè)定法和比色法。比色法是將化合物加入顯色劑后測(cè)定吸光度再進(jìn)行換算測(cè)定的方法,常用的顯色方法有NaNO2-Al(NO3)3-NaOH法、AlCl3法、三乙胺法[15]。高效液相色譜(High performance liquid chromatography, HPLC)技術(shù)分辨率高、分析速度快且能夠?qū)崿F(xiàn)重復(fù)分析,藥品檢驗(yàn)時(shí)所需樣品量少,在藥品含量測(cè)定中有著較高的適用性[16]。

    物質(zhì)基準(zhǔn)為經(jīng)典名方制劑研發(fā)過程中的基礎(chǔ),是經(jīng)典名方制劑生產(chǎn)工藝和質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)研究的依據(jù)。本研究采用UV法測(cè)定溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中總黃酮含量,同時(shí)采用HPLC法測(cè)定溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中柚皮苷和新橙皮苷含量。為溫膽湯的進(jìn)一步研究和開發(fā)提供參考依據(jù)。

    1 儀器與材料

    1.1 儀器

    Waters e2695 高效液相色譜儀(美國(guó)Waters公司); Reprosil-Pur ODS-3 色譜柱(德國(guó)邁可公司);UES1810001 紫外分光光度計(jì)(上海美普達(dá)儀器有限公司);JYH-A30A1 全自動(dòng)煎藥壺(廣東佛山小熊電器有限公司);7670571 臺(tái)式真空冷凍干燥機(jī)(美國(guó)拉博科公司);CP224C 電子天平(d = 0.1 mg)[奧豪斯儀器(常州)有限公司];KQ5200DE 超聲清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

    1.2 試劑與藥材

    色譜純乙腈、甲醇、甲酸,均購自上海泰坦科技有限公司;水為娃哈哈純凈水,購自杭州娃哈哈集團(tuán)有限公司。對(duì)照品柚皮苷(批號(hào):110722-201815;質(zhì)量分?jǐn)?shù)為98%)、新橙皮苷(批號(hào):Z31J6L2067;質(zhì)量分?jǐn)?shù)為98%)均購自上海源葉生物科技有限公司。溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)(自制,批號(hào):20210101、20210102、20210103)。乙醇、氫氧化鈉、亞硝酸鈉、硝酸鋁均購自上海泰坦科技有限公司;氯化鋁購自上海潤(rùn)捷化學(xué)試劑有限公司;三乙胺購自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,以上試劑均為分析純。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)制備

    稱取半夏、竹茹、枳實(shí)各6 g,陳皮9 g,甘草3 g,生姜12 g,加水1600 mL,先武火(500 W)煮沸后轉(zhuǎn)文火(200 W)煎煮,約3.5 h后,以80目濾布趁熱過濾,濾液放涼后加水至400 mL,得到溫膽湯提取液。提取液冷凍干燥(預(yù)凍溫度:-80℃;冷阱溫度:-45℃;真空度: < 100 Pa),得到溫膽湯凍干粉,作為溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)對(duì)應(yīng)實(shí)物。

    2.2 總黃酮的含量測(cè)定

    2.2.1 對(duì)照品溶液制備

    取柚皮苷對(duì)照品適量,精密稱定,置于10 mL容量瓶中,加入70%乙醇溶解,并稀釋至刻度,制成202.2 μg/mL的對(duì)照品溶液。

    2.2.2 供試品溶液制備

    稱取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,加入70%乙醇溶解,并稀釋至10 mL,稱定重量,超聲30 min,稱重,補(bǔ)足減失的重量,濾過。精密吸取過濾液1 mL,加70%乙醇定容至25 mL,即得。

    2.2.3 總黃酮測(cè)定方法考察

    總黃酮含量作為質(zhì)量控制指標(biāo),常采用紫外-可見分光光度法測(cè)定。比色法應(yīng)用較廣的有NaNO2-Al(NO3)3-NaOH法、AlCl3法、三乙胺法。本研究考察并比較以上三種比色法與直接測(cè)定法對(duì)溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中總黃酮含量測(cè)定的影響,并確定含量測(cè)定方法。

    2.2.3.1 直接測(cè)定法

    量取濃度為202.2 μg/mL的柚皮苷對(duì)照品溶液1 mL,精密稱定,加 70%乙醇定容至10 mL。稱取溫膽湯對(duì)應(yīng)實(shí)物20 mg,加入70%乙醇,定容至10 mL,超聲30 min,濾過,量取過濾液1 mL加70%乙醇定容至25 mL。在波長(zhǎng)200 ~ 800 nm內(nèi)進(jìn)行掃描測(cè)定,見圖1。

    圖1 直接測(cè)定法全波長(zhǎng)掃描圖Fig.1 Full spectrum scan of direct determination method

    2.2.3.2 NaNO2-A(lNO3)3-NaOH法

    量取濃度為202.2 μg/mL的柚皮苷對(duì)照品溶液0.03 mL,加入5% NaNO2溶液0.8 mL,10% Al(NO3)3溶液0.8 mL,4% NaOH溶液4 mL,加70%乙醇定容至10 mL。稱取溫膽湯對(duì)應(yīng)實(shí)物20 mg,加入70%乙醇,定容至10 mL,超聲30 min,濾過,取濾液0.03 mL,加入5% NaNO2溶液0.8 mL,10% Al(NO3)3溶液0.8 mL,4% NaOH溶液4 mL,加70%乙醇定容至10 mL。在波長(zhǎng)200 ~ 800 nm內(nèi)進(jìn)行掃描測(cè)定,見圖2。

    圖2 硝酸鋁顯色法全波長(zhǎng)掃描圖Fig.2 Full spectrum scan of NaNO2-Al(NO3)3-NaOH method

    2.2.3.3 AlCl3法

    稱取AlCl30.13 g于10 mL容量瓶中,加入70%乙醇定容至刻度線,制成0.1 mol/L三氯化鋁溶液;醋酸-醋酸鈉緩沖液(pH值為5.2)制備,甲液為0.2 mol/L醋酸(量取114 μL冰醋酸用蒸餾水稀釋至10 mL),乙液為0.2 mol/L醋酸鈉(稱取醋酸鈉0.2722 g用蒸餾水稀釋至10 mL),量取甲液1.05 mL,乙液3.95 mL,混合,最后用蒸餾水稀釋至10 mL。量取濃度為202.2 μg/mL的柚皮苷對(duì)照品溶液0.6 mL,加入0.1 mol/L三氯化鋁溶液2 mL,醋酸-醋酸鈉緩沖液(pH值為5.2)2 mL,加 70%乙醇定容至10 mL。稱取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,加入70%乙醇,定容至10 mL,超聲30 min,濾過,取濾液0.4 mL,加入0.1 mol/L三氯化鋁溶液2 mL,醋酸-醋酸鈉緩沖液(pH值為5.2)2 mL,加 70%乙醇定容至10 mL。在波長(zhǎng)200 ~ 800 nm內(nèi)進(jìn)行掃描測(cè)定,見圖3。

    圖3 三氯化鋁顯色法全波長(zhǎng)掃描圖Fig.3 Full spectrum scan of AlCl3 method

    2.2.3.4 三乙胺法

    量取濃度為202.2 μg/mL的柚皮苷對(duì)照品溶液0.6 mL,加1%三乙胺乙醇溶液4 mL,加 70%乙醇定容于10 mL。稱取溫膽湯對(duì)應(yīng)實(shí)物20 mg,加入70%乙醇,定容至10 mL,超聲30 min,濾過,取濾液0.5 mL,加1%三乙胺乙醇溶液4 mL,加70%乙醇定容至10 mL。在波長(zhǎng)200 ~ 800 nm內(nèi)進(jìn)行掃描測(cè)定,見圖4。

    圖4 三乙胺顯色法全波長(zhǎng)掃描圖Fig.4 Full spectrum scan of triethylamine method

    按照上述方法分別測(cè)定溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)總黃酮含量(n=3),結(jié)果見表1。四種測(cè)定方法的供試品溶液和對(duì)照品溶液峰的吸收特性均無明顯差異。但NaNO2-Al(NO3)3-NaOH法測(cè)定總黃酮含量時(shí),容易受溶劑加入量和加入時(shí)間等影響,穩(wěn)定性差,最大吸收波長(zhǎng)處有雜峰干擾,需要現(xiàn)配現(xiàn)用,且重復(fù)性差;以AlCl3法測(cè)定總黃酮含量時(shí),最大吸收波長(zhǎng)處吸收峰較鈍,最大吸收峰重復(fù)性差;三乙胺法與直接測(cè)定法最大吸收波長(zhǎng)重疊,未見紅移,因此無法判斷是試樣吸收還是反應(yīng)產(chǎn)物吸收??紤]直接測(cè)定法偏差較小,重復(fù)性較好,且操作簡(jiǎn)便,因此選擇直接測(cè)定法測(cè)定總黃酮的含量,直接測(cè)定法在284 nm有最大吸收,且干擾較小,故選擇284 nm作為測(cè)定波長(zhǎng)。

    表1 不同顯色方法測(cè)定溫膽湯總黃酮含量Tab.1 The determined content of total flavonoids in samples by different color developing method

    2.2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

    精密量取柚皮苷對(duì)照品溶液1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、4.0 mL,置于10 mL容量瓶中,加入70%乙醇溶解,并稀釋至刻度線,搖勻。按紫外-可見分光光度法(《中國(guó)藥典》2020年版四部通則0401)在284 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度(n=3),以吸光度為縱坐標(biāo),濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算回歸方程,得到柚皮苷標(biāo)準(zhǔn)曲線Y= 24.462X+ 0.116(r= 0.9996),且柚皮苷在20.22 ~ 80.88 μg/mL范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系,見圖5。

    圖5 柚皮苷對(duì)照品標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.5 Standard curve of naringin reference substance

    2.2.5 精密度試驗(yàn)

    按“2.7”項(xiàng)下制備供試品溶液,連續(xù)測(cè)定六次,結(jié)果測(cè)得供試品溶液的吸光度的RSD為0.18%,表明儀器精密度良好。

    2.2.6 重復(fù)性試驗(yàn)

    取同一批次溫膽湯對(duì)應(yīng)實(shí)物6份,按照“2.7”項(xiàng)下同法操作,測(cè)定各樣品吸光度,計(jì)算總黃酮含量,測(cè)得總黃酮含量的RSD為1.29%,表明重復(fù)性良好。

    2.2.7 穩(wěn)定性試驗(yàn)

    按“2.7”項(xiàng)下制備供試品溶液,于室溫分別放置0、20、40、60、80、100 min,計(jì)算總黃酮平均含量的RSD為0.07%,表明樣品溶液在100 min內(nèi)穩(wěn)定。

    2.2.8 加樣回收率試驗(yàn)

    取已知總黃酮含量的溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)9份,每份約0.5 mL,分別按已知總黃酮量的80%、100%、120%加入柚皮苷對(duì)照品溶液,加入70%乙醇定容至25 mL,加樣回收率結(jié)果見表2。

    表2 加樣回收率試驗(yàn)考察結(jié)果Tab.2 Results of recovery test

    2.2.9 提取條件優(yōu)化

    2.2.9.1 溶媒種類考察

    稱取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,分別加入水、70%甲醇和70%乙醇并定容至10 mL,超聲30 min,過濾,量取1 mL置于25 mL容量瓶中,加入對(duì)應(yīng)的提取溶媒至刻度線,搖勻。分別測(cè)定其吸光度值,按“2.3.4”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算總黃酮含量,依次為11.42%、14.22%、14.96%,結(jié)果顯示當(dāng)提取溶媒為70%乙醇時(shí),總黃酮含量測(cè)定值最高。

    2.2.9.2 溶媒濃度考察

    稱取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,分別加入30%、50%、70%、90%、100%乙醇并定容至10 mL,超聲30 min,過濾,量取1 mL置于25 mL容量瓶中,加入對(duì)應(yīng)不同濃度的乙醇至刻度線,搖勻。分別測(cè)定其吸光度值,按“2.3.4”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算總黃酮含量,依次為14.61%、12.44%、14.96%、12.66%、7.94%,結(jié)果顯示,當(dāng)提取溶媒濃度為70%乙醇時(shí),總黃酮含量測(cè)定值最高,見圖6。

    圖6 溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)總黃酮含量提取溶媒濃度考察Fig.6 The determined content of total flavonoids in Wendan decoction from different extraction solvent concentration

    2.2.9.3 提取時(shí)間考察

    稱取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,加入70%乙醇并定容至10 mL,分別超聲提取10、20、30、40、50 min,搖勻,并過濾,量取1 mL置于25 mL容量瓶中,加70%乙醇定容至刻度線,搖勻。分別測(cè)定其吸光度值,按“2.3”項(xiàng)下標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算總黃酮含量,依次為12.97%、14.03%、14.96%、13.96%、12.32%,結(jié)果顯示當(dāng)提取時(shí)間為30 min時(shí),總黃酮含量值最高,見圖7。

    圖7 溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)總黃酮提取時(shí)間考察Fig.7 The determined content of total flavonoids in Wendan decoction from different extraction time

    2.3 柚皮苷和新橙皮苷的含量測(cè)定

    2.3.1 色譜條件

    色譜柱為Reprosil-Pur ODS-3(5 μm,250 mm ×4.6 mm);流動(dòng)相為乙腈-0.1%甲酸水;梯度洗脫:0 ~ 35 min,0% ~ 19.5%乙腈,35 ~ 36 min,19.5% ~35%乙腈,36 ~ 60 min,35% ~ 45%乙腈;檢測(cè)波長(zhǎng)283 nm;柱溫30℃;體積流量為0.8 mL/min;進(jìn)樣量為5 μL。色譜圖見圖8。

    圖8 柚皮苷和新橙皮苷含量測(cè)定圖譜Fig.8 Chromatographic determination of naringin and neohesperidin

    2.3.2 對(duì)照品溶液制備

    取柚皮苷、新橙皮苷對(duì)照品適量,精密稱定,加甲醇溶解,分別制成質(zhì)量濃度為0.047、0.031 mg/mL的對(duì)照品溶液。

    2.3.3 供試品溶液制備

    稱取0.1 g溫膽湯凍干粉,加水溶解定容至10 mL,14000 r/min離心15 min,吸取上清液,過親水性濾膜(0.22 μm),作為基準(zhǔn)樣品對(duì)應(yīng)實(shí)物供試品溶液備用。

    2.3.4 線性關(guān)系考察

    精密稱取柚皮苷、新橙皮苷對(duì)照品適量,用甲醇稀釋成6種不同質(zhì)量濃度的系列對(duì)照品溶液,按“2.2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣分析,以峰面積(Y)為縱坐標(biāo),對(duì)照品濃度(X)為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算回歸方程,得到柚皮苷的回歸方程為Y= 20193513.70X- 6637.8209,r= 0.9998,且柚皮苷在0.01~ 0.51 mg/mL范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線性關(guān)系;新橙皮苷的回歸方程為Y= 25607167.53X-77152.8199,r= 0.9998,且新橙皮苷在0.01 ~0.50 mg/mL范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線性關(guān)系。

    2.3.5 精密度試驗(yàn)

    按“2.2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,按“2.2.1”項(xiàng)下色譜條件連續(xù)進(jìn)樣6次,分別進(jìn)行日內(nèi)精密度和日間精密度測(cè)定,柚皮苷、新橙皮苷日內(nèi)精密度峰面積RSD分別為0.33%、0.83%,柚皮苷、新橙皮苷日間精密度峰面積RSD分別為0.77%、0.74%,表明儀器精密度良好。

    2.3.6 重復(fù)性試驗(yàn)

    按“2.2.3”項(xiàng)下方法平行制備6份供試品溶液,按“2.2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣分析,測(cè)得柚皮苷、新橙皮苷峰面積RSD分別為0.74%、1.22%,表明該方法重復(fù)性良好。

    2.3.7 穩(wěn)定性試驗(yàn)

    按“2.2.3”項(xiàng)下方法制備供試品溶液,取同一供試品溶液,分別在0、4、8、12、24、48 h按“2.2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣分析,測(cè)得柚皮苷、新橙皮苷峰面積RSD分別為0.73%、1.14%,表明溶液在48 h內(nèi)穩(wěn)定性良好。

    2.3.8 加樣回收率試驗(yàn)

    按“2.2.3”項(xiàng)下方法平行制備6份供試品溶液,分別加入一定量的對(duì)照品,按“2.2.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣分析,計(jì)算可知柚皮苷、新橙皮苷平均加樣回收率分別為2.47%、1.59%,見表3。

    表3 柚皮苷和新橙皮苷加樣回收率結(jié)果Tab.3 The extraction recovery test of naringin and neohesperidin

    2.4 樣品含量測(cè)定

    分別制備3批溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn),按照“2.2.2”項(xiàng)下供試品溶液處理方法,在284 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值,計(jì)算樣品中總黃酮含量;按“2.3.1”項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣測(cè)定,計(jì)算樣品中柚皮苷和新橙皮苷的含量,見表4。結(jié)果顯示建立的含量測(cè)定方法操作簡(jiǎn)單,結(jié)果準(zhǔn)確,重復(fù)性好??傸S酮平均含量為15.03%,柚皮苷和新橙皮苷的平均含量分別為22.78 mg/g和9.75 mg/g。

    表4 溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)總黃酮、柚皮苷和新橙皮苷含量測(cè)定結(jié)果Tab.4 The content determination of total flavonoids, naringin and neohesperidin of Wendan Decoction

    3 討論

    3.1 指標(biāo)成分的選擇

    目前,總黃酮含量測(cè)定的對(duì)照品大多為蘆?。?],任珊珊等[15]研究表明進(jìn)行總黃酮含量測(cè)定時(shí),所選對(duì)照品應(yīng)盡可能真實(shí)反應(yīng)待測(cè)樣品中黃酮類成分的結(jié)構(gòu)和組成。何珺等[17]研究表明在測(cè)定總黃酮含量時(shí),當(dāng)藥材或制劑中不含蘆丁或蘆丁含量極少時(shí),應(yīng)盡量選用自身成分作為對(duì)照。經(jīng)過前期研究發(fā)現(xiàn)溫膽湯中大多為二氫黃酮類結(jié)構(gòu),柚皮苷在溫膽湯中含量較高,又能很好的代表復(fù)方中黃酮類成分,因此采用柚皮苷作為UV總黃酮含量測(cè)定的對(duì)照品。黃酮類成分是溫膽湯中的主要成分,柚皮苷和新橙皮苷作為其黃酮類成分的代表[18],具有抑制平滑肌收縮的功能,與中醫(yī)理氣功效相符,是發(fā)揮藥效的重要物質(zhì)基礎(chǔ)[19-20]。因此選擇柚皮苷和新橙皮苷作為HPLC含量測(cè)定的指標(biāo)成分。

    3.2 總黃酮提取因素確定

    本實(shí)驗(yàn)分別對(duì)溶媒種類、溶媒濃度、提取時(shí)間三個(gè)因素進(jìn)行考察,選擇總黃酮提取率最高的提取條件,最終確定溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)供試品溶液制備方法為取溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)20 mg,加入70%乙醇溶解,并定容至10 mL容量瓶,超聲30 min,濾過,精密吸取過濾液1 mL,加70%乙醇定容至25 mL,即得。

    3.3 柚皮苷和新橙皮苷色譜條件優(yōu)化

    本研究以各成分分離度、保留時(shí)間、峰型為指標(biāo),比較了不同流動(dòng)相比例(0.05%甲酸-水、0.10%甲酸-水、0.15%甲酸-水)、不同波長(zhǎng)(250、260、283 nm)、不同流速(0.6、0.8、1.0 mL/min)、不同色譜柱(Reprosil-Pur ODS-3、Alltima TM C18、Shimadzu-VP ODS)、不同柱溫(25、30、35℃),最終確定色譜條件為以乙腈-0.1%甲酸水溶液梯度洗脫,檢測(cè)波長(zhǎng)283 nm,流速0.8 mL·min-1,色譜柱為Reprosil-Pur ODS-3,柱溫為30℃。

    3.4 檢測(cè)結(jié)果分析

    目前對(duì)溫膽湯大類成分的研究?jī)H有多糖類,多糖類成分占比較少,為2% ~ 4%。本研究首次采用紫外分光光度法對(duì)溫膽湯總黃酮類成分進(jìn)行含量測(cè)定,結(jié)果顯示,溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中總黃酮平均含量為15.03%,高于多糖類成分,為溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中主要化學(xué)成分。進(jìn)一步采用高效液相色譜法對(duì)溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中兩個(gè)主要黃酮類活性成分柚皮苷和新橙皮苷進(jìn)行定量研究,結(jié)果顯示,柚皮苷和新橙皮苷的平均含量分別為22.78 mg/g和9.75 mg/g。

    本實(shí)驗(yàn)分別通過建立UV法和HPLC法分別測(cè)定了溫膽湯物質(zhì)基準(zhǔn)中總黃酮、柚皮苷和新橙皮苷含量。經(jīng)方法學(xué)驗(yàn)證,測(cè)定方法符合定量分析要求,操作簡(jiǎn)單,重復(fù)性好,為溫膽湯質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的提升提供依據(jù)。

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