嚴(yán)曉丹,唐莉玲,錢長暉,招金娣,楊 媛,廖凌虹,3*
(1.福建中醫(yī)藥大學(xué)中西醫(yī)結(jié)合學(xué)院,福建 福州 350122;2.福建中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)學(xué)院,福建 福州 350122;3.福建省中醫(yī)健康狀態(tài)辨識重點實驗室,福建 福州 350122)
以西式飲食為代表高卡路里的飲食方式容易引起肥胖,肥胖是多種疾病如脂肪肝、代謝綜合征、心血管疾病、結(jié)直腸癌、乳腺癌等的共同風(fēng)險因素。分析病理機制可知機體慢性低度炎癥是這些疾病的共同病理基礎(chǔ)[1-2],如果能夠抑制或減輕炎癥,那么對相關(guān)疾病的預(yù)防具有積極意義。長期高脂飲食可導(dǎo)致血液中的脂多糖(LPS)含量升高[3-4],激活Toll 樣受體-4(TLR4)和髓樣分化因子88(MyD88)信號通路,使肝臟巨噬細(xì)胞極化為促炎的M1 型,分泌多種炎性因子,促進(jìn)炎癥[5-8]。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為長期嗜食肥甘厚味,形成痰濁,進(jìn)一步阻礙脾胃的運化功能,繼發(fā)損傷其他臟腑功能,成為多種疾病的發(fā)病基礎(chǔ)。本團(tuán)隊擬從健脾化痰的角度入手,觀察二陳湯對高脂喂養(yǎng)的肥胖小鼠炎癥和肝臟脂肪樣變性的作用,并檢測血清LPS 含量和TLR4、MyD88 的表達(dá)情況,探討二陳湯對于高脂喂養(yǎng)肥胖小鼠肝臟的保護(hù)作用及機制。
1.1 實驗動物 SPF 級C57BL/6 雄性小鼠45 只,體質(zhì)量為(20±2) g,購自上海斯萊克動物有限責(zé)任公司,許可證號:SCXK(滬)2017-0005,動物質(zhì)量合格證編號:20170005043943。小鼠飼養(yǎng)于福建中醫(yī)藥大學(xué)動物實驗中心SPF 級動物實驗室,實驗動物使用許可證編號:SYXK(閩)2014-0001。本實驗已通過福建中醫(yī)藥大學(xué)動物倫理委員會審批(動物倫理號:FJTCM IACUC 2021084)。
1.2 藥物與試劑 根據(jù)《太平惠民和劑局方》二陳湯的原方,組成:陳皮15 g,姜半夏15 g,茯苓9 g,炙甘草4.5 g,生姜9 g,烏梅3 g。上述中藥購自福建中醫(yī)藥大學(xué)附屬第三人民醫(yī)院,藥物浸泡 30 min,武火燒開文火煎30 min,重復(fù)煎煮2 次的藥液混合后蒸發(fā)濃縮成含生藥濃度為0.555 g/mL 二陳湯濃縮液。普通飼料:脂肪4%,糖類8%,蛋白20%(北京華阜康生物科技股份有限公司);高脂飼料:脂肪45%,糖類20%,蛋白20%(上海帆泊生物技術(shù)有限公司)。甘油三酯(TG)、總膽固醇(TC)、高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)ELISA 檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所,批號:A110-1-1、A111-1-1、A112-1-1 和A113-1-1);小鼠腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素-6(IL-6)和脂多糖結(jié)合蛋白(LBP)ELISA 檢測試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司,批號:EK0527、EK0411 和EK1274);逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(日本Takara 公司,批號:5015);LPS 檢測試劑盒(美國Thermo Scientific 公司,批號:A39552)。
1.3 儀器 Infinite M200 多功能酶標(biāo)儀(奧地利Tecan 公司);超微量紫外分光光度儀(美國Thermo Scientific 公司);ABI 實時熒光定量PCR 儀(美國Thermo Scientific 公司)。
2.1 分組與給藥 C57BL/6 雄性小鼠在SPF 級動物實驗室中適應(yīng)性喂養(yǎng)4 d 后,隨機分為對照組15 只,高脂組30 只。對照組給予普通飼料,高脂組給予高脂飼料。喂養(yǎng)6 周后,稱量小鼠體質(zhì)量,高脂組小鼠體質(zhì)量高于對照組20%判定為肥胖小鼠造模成功[9]。將造模成功的高脂組小鼠隨機分為模型組、二陳湯組,每組15 只。按照人與動物劑量換算常規(guī)法[10],二陳湯組予以含生藥量0.555 g/mL二陳湯濃縮液20 mL/(kg·d)灌胃,模型組及對照組則予以等體積生理鹽水灌胃,同時二陳湯組和模型組繼續(xù)給予高脂飼料喂養(yǎng),4 周后處死小鼠,收集血清和肝臟組織進(jìn)行檢測。
2.2 標(biāo)本采集 處死前一晚禁食,于次日清晨通過摘除小鼠眼球收集靜脈血,分離血清用于血清學(xué)檢測。脫脊椎處死小鼠,解剖后取小鼠肝臟右側(cè)肝葉切分為2 份,1 份置于4%多聚甲醛固定,用于肝組織病理形態(tài)學(xué)觀察,1 份置于-80 ℃冰箱用于檢測基因mRNA 相對表達(dá)水平和蛋白表達(dá)量。
2.3 觀察指標(biāo)及檢測方法
2.3.1 體質(zhì)量 每周1 次固定時間稱量小鼠體質(zhì)量,直至取材,比較3 組每周小鼠平均體質(zhì)量。
2.3.2 血脂指標(biāo)檢測 第10 周處死小鼠后按照ELISA 檢測試劑盒說明書檢測小鼠血清TG、TC、LDL-C、HDL-C 水平。
2.3.3 肝臟組織病理形態(tài)觀察 將4%多聚甲醛固定24 h 的3 組小鼠肝臟進(jìn)行常規(guī)石蠟包埋、切片(厚度5 μm),HE 染色后在200 倍光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照記錄。
2.3.4 血清TNF-α、IL-6 和LBP 檢測 用ELISA 試劑盒在酶標(biāo)儀上進(jìn)行檢測,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品濃度(X 值)及其對應(yīng)OD 值(Y 值),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,將各樣品孔吸光值代入,計算得出待測標(biāo)本中上述指標(biāo)的含量。
2.3.5 血清LPS 檢測 通過LPS 與細(xì)胞裂解物的特異性反應(yīng)催化無色顯色底物,借助酶標(biāo)儀測定待測樣品OD 值,根據(jù)顯色強度與LPS 之間對應(yīng)關(guān)系,可計算出樣品中LPS 含量。
2.3.6 qPCR 檢測肝臟組織TLR4、MyD88 mRNA 相對表達(dá)水平 取小鼠肝臟組織30 mg,提取總RNA,測定濃度。取2 μg 總RNA,逆轉(zhuǎn)錄成cDNA 并進(jìn)行qPCR 檢測,用2-ΔΔCT法分析相關(guān)基因的表達(dá)水平。檢測目的基因和內(nèi)參基因的引物序列如表1所示。
表1 目的基因和內(nèi)參基因引物序列
2.3.7 Western blot 檢測肝臟組織TLR4、MyD88 蛋白表達(dá)量 取小鼠肝臟組織提取總蛋白質(zhì),測定濃度,用聚丙烯酰胺凝膠電泳分離。常規(guī)轉(zhuǎn)膜后,用5%脫脂奶粉封閉,加入一抗4 ℃孵育過夜(其中TLR4、MyD88和GAPDH一抗稀釋比分別為1∶5 000、1∶800和1∶10 000),洗膜后加入二抗室溫孵育2 h。洗膜后,進(jìn)行化學(xué)顯影,掃描灰度值,以GAPDH 作為內(nèi)參照蛋白進(jìn)行校準(zhǔn),采用目標(biāo)蛋白條帶灰度值/GAPDH 條帶灰度值來表示目標(biāo)蛋白相對表達(dá)量。
2.4 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 25.0 統(tǒng)計學(xué)軟件分析,計量資料符合正態(tài)分布以(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析(One-Way ANOVA),多組間兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。
3.1 3 組小鼠體質(zhì)量變化比較 高脂飼料喂養(yǎng)6 周后,模型組體質(zhì)量為(31.9±2.2)g,與對照組(26.4±1.2)g 比較明顯增高(P<0.05);給藥第1、2、3 周后,對照組小鼠體質(zhì)量明顯低于模型組和二陳湯組(P<0.05),二陳湯組小鼠體質(zhì)量明顯低于模型組(P<0.05)。見圖1。
圖1 3 組小鼠體質(zhì)量每周變化圖
3.2 3 組小鼠血脂指標(biāo)比較 見表2。
表2 第10 周3 組小鼠血脂指標(biāo)比較(±s) mmol/L
表2 第10 周3 組小鼠血脂指標(biāo)比較(±s) mmol/L
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05。
HDL-C 4.03±0.13 4.32±0.38 5.44±0.162)組別對照組模型組二陳湯組n 15 15 15 TG 3.11±0.17 5.27±0.131)3.58±0.102)TC 3.45±0.21 5.57±0.581)2.49±0.172)LDL-C 0.69±0.10 2.29±0.201)1.49±0.082)
3.3 3 組小鼠肝臟組織病理學(xué)形態(tài)比較 對照組小鼠肝細(xì)胞以中央靜脈為中心,呈放射狀排列,未見脂肪空泡,炎癥細(xì)胞浸潤;模型組小鼠肝細(xì)胞內(nèi)脂肪空泡明顯增大,并伴隨輕度炎癥細(xì)胞浸潤;二陳湯組肝細(xì)胞脂肪空泡減小,炎癥細(xì)胞浸潤減少,中央靜脈、肝索、肝血竇結(jié)構(gòu)趨于正常。見圖2。
圖2 3 組小鼠肝臟組織HE 染色圖(×200)
3.4 3 組小鼠血清TNF-α、IL-6、LBP、LPS 含量比較 見表3。
表3 3 組小鼠血清中TNF-α、IL-6、LBP、LPS 含量比較(±s)
表3 3 組小鼠血清中TNF-α、IL-6、LBP、LPS 含量比較(±s)
注:與對照組比較,1) P<0.05,2) P<0.01;與模型組比較,3) P<0.05。
組別對照組模型組二陳湯組n 15 15 15 TNF-α/(pg/mL)13.53±0.17 21.98±2.651)15.62±1.023)IL-6/(pg/mL)8.13±0.89 12.35±1.441)8.61±0.583)LBP/(ng/mL)293.17±32.64 488.46±67.901)333.39±57.633)LPS/(EU/mL)50.58±0.63 74.63±1.922)54.64±2.163)
3.5 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88 mRNA 相對表達(dá)水平比較 見表4。
表4 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88 mRNA相對表達(dá)水平比較(±s)
表4 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88 mRNA相對表達(dá)水平比較(±s)
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05。
MyD88 1.00±0.04 1.25±0.311)1.05±0.122)組別對照組模型組二陳湯組n 15 15 15 TLR4 1.00±0.02 0.88±0.311)0.81±0.272)
3.6 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88 蛋白表達(dá)量比較 見圖5、表5。
圖5 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88 蛋白條帶圖
表5 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88蛋白表達(dá)量比較(±s)
表5 3 組小鼠肝臟組織TLR4、MyD88蛋白表達(dá)量比較(±s)
注:與對照組比較,1) P<0.05;與模型組比較,2) P<0.05。
MyD88 0.02±0.01 0.69±0.071)0.02±0.012)組別對照組模型組二陳湯組n 15 15 15 TLR4 0.04±0.01 0.29±0.021)0.02±0.012)
本研究結(jié)果顯示:與對照組小鼠比較,高脂飼養(yǎng)的模型組小鼠,除體質(zhì)量、血脂指標(biāo)升高外,還表現(xiàn)出血清炎癥指標(biāo)TNF-α 和IL-6 升高,組織病理學(xué)顯示模型組小鼠肝臟也出現(xiàn)炎癥細(xì)胞浸潤和肝細(xì)胞脂肪變,說明高脂飼養(yǎng)在引起小鼠肥胖同時引發(fā)機體代謝性炎癥。二陳湯干預(yù)4 周后,與模型組比較,血脂異常得到改善,血清炎癥因子TNF-α 和IL-6 降低,肝臟炎癥病理和脂肪變減輕,說明二陳湯對高脂飲食造成的炎癥具有治療作用,對肝臟組織有一定的保護(hù)作用。綜上可知:與對照組比較,模型組中血清LPS 和LPB 明顯升高,二陳湯干預(yù)后,LPS 和LPB 下調(diào),提示二陳湯的肝臟保護(hù)機制與LPS 有關(guān)。
長期高脂飲食導(dǎo)致腸道菌群失調(diào),革蘭氏陰性菌增多,LPS 分泌增多[11]。肝臟是清除LPS 的主要臟器,當(dāng)LPS 隨血液循環(huán)進(jìn)入肝臟后,可刺激肝臟細(xì)胞合成、分泌LBP,隨后LPS、LBP 和CD14 形成免疫復(fù)合物,作用于肝臟內(nèi)巨噬細(xì)胞表面TLR4 受體,激活胞內(nèi)MyD88/NF-κB 信號通路,同時促使靜息態(tài)巨噬細(xì)胞向促炎型M1 型發(fā)生極化,啟動多種促炎癥基因和趨化因子的轉(zhuǎn)錄[12],導(dǎo)致持續(xù)性炎癥的發(fā)生。此外,TLR4 也是Toll 樣受體家族中與脂代謝密切相關(guān)的成員,具有調(diào)節(jié)脂肪生成基因表達(dá),影響脂肪細(xì)胞分化和脂質(zhì)積累的作用[13]。因此,本研究檢測了肝臟組織TLR4 和MyD88 表達(dá)水平,結(jié)果顯示模型組肝臟組織TLR4 和MyD88 蛋白相對表達(dá)量均升高,提示TLR4、MyD88 通路已經(jīng)激活,導(dǎo)致血清中炎癥因子IL-6 和TNF-α 水平升高以及肝細(xì)胞脂肪空泡增大。二陳湯組TLR4、MyD88表達(dá)較模型組明顯降低,血清炎癥因子減少,肝細(xì)胞脂肪空泡變小。說明二陳湯可降低血清LPS,并進(jìn)一步抑制肝臟TLR4、MyD88 的基因表達(dá),具有降低炎癥因子表達(dá),從而改善肝臟細(xì)胞脂肪變性的效果,這與其他學(xué)者的研究結(jié)果一致[14]。在中醫(yī)理論中,過度營養(yǎng)和能量的飲食對機體造成的損傷與痰濁關(guān)系密切?!端貑枴け哉摗分赋觥帮嬍匙员?,腸胃乃傷”。過食肥膩和醇酒厚味會損傷脾胃,導(dǎo)致運化失司,水谷精微“化失其正”,影響氣血津液之代謝,引起痰濕內(nèi)生,過多的痰濕不能及時轉(zhuǎn)化和排泄,留而不去,即成痰濁。痰濁一旦形成,可進(jìn)一步阻礙脾胃的運化功能,阻滯中焦氣機,損傷其他臟腑。中醫(yī)更有“肥人多痰”的說法,提示肥胖及其相關(guān)疾病中,“痰”是關(guān)鍵中醫(yī)病理因素,這一說法也得到了多個理論和臨床研究的支持[15-16]。從痰入手治療過度營養(yǎng)造成的肥胖相關(guān)疾病也被認(rèn)為是行之有效的治療方法[17-22],如糖尿?。?7]、多囊卵巢綜合征[18-19]、非酒精性脂肪肝[20]、高脂血癥[21]。本研究發(fā)現(xiàn)二陳湯可能通過降低LPS 含量從而抑制TLR4、MyD88 表達(dá)來減輕炎癥,與張玉蓉等[23]研究結(jié)果相印證,但本研究首次從降低LPS 出發(fā)研究二陳湯作用機制,為后續(xù)進(jìn)一步研究二陳湯通過調(diào)整腸道菌群,減少LPS 釋放,從而干預(yù)肥胖相關(guān)的慢性炎癥提供了新的思路。
綜上所述,二陳湯對高脂飼養(yǎng)的肥胖小鼠炎癥因子升高和肝細(xì)胞脂肪變等病理改變有一定的改善作用,其具體機制與二陳湯抑制LPS 活化的TLR4、MyD88 通路有關(guān)。