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    諾氟沙星磁分子印跡納米粒子的制備及其富集分離

    2020-09-10 03:33:16黃昭李跑曹亞男李佳銀劉霞
    食品研究與開發(fā) 2020年18期
    關鍵詞:印跡氨基標準溶液

    黃昭,李跑,曹亞男,李佳銀,劉霞

    (湖南農業(yè)大學食品科技學院,食品科學與生物技術湖南省重點實驗室,湖南長沙410128)

    氟喹諾酮類抗生素(fluoroquinolones,FQs)是一類人工合成的廣譜抗生素,其抗菌活性強、價格低,被廣泛用于動物養(yǎng)殖中,若被長期使用,即使是低劑量,也易造成動物源食品中該抗生素的殘留。殘留的抗生素可通過食物鏈進入人體,引起一些不良反應,主要對肌肉、肌腱、骨骼和神經系統(tǒng)產生危害[1],甚至有致癌、致畸、致突變的風險。

    食品分析檢測技術是保障食品安全的重要手段。因為食品基質復雜,氟喹諾酮類抗生素殘留濃度低,大部分檢測技術,如液相色譜(liquid chromatography,LC)、高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)、及高效液相色譜-質譜(high performance liquid chromatography-mass spectrum,HPLCMS)等[2-4],在檢測實際樣品前需要對目標物進行富集分離,排除基質干擾,以提高檢測的靈敏度和準確性。常用的富集分離方法如液液萃?。╨iquid-liquid extraction,LLE)、固相萃?。╯olidphase extraction,SPE)和固相微萃?。╯olid-phase microextraction,SPME)等技術,這些方法通常存在操作復雜、耗時長、有機溶劑用量大等缺點[5-10]。

    分子印跡技術(molecular imprinting technology,MIT)是使模板分子與功能單體以共價鍵或非共價鍵結合,再通過聚合作用形成包覆配合物的立體結構,經過洗脫解離模板分子后,形成與模板分子空間構型相匹配的印跡孔穴,可對模板分子進行特異性識別和吸附[11-12]。而磁分子印跡納米粒子(magnetic molecularly imprinted polymers nanoparticles,MMIPs NPs)兼具特異性和磁性,在選擇性吸附目標物的同時可通過外加磁場快速與基質分離,具有制備簡單、成本低廉、特異性強、可重復利用等優(yōu)點[13-15]。

    本研究以諾氟沙星(norfloxacin,NOR)為模板分子,利用多巴胺(dopamine,DA)在室溫(25℃)弱堿性溶液中可進行氧化自聚合的性質,在氨基修飾的四氧化三鐵納米粒子(Fe3O4@NH2NPs)表面合成了MMIPs NPs,其制備條件溫和、耗時短、試劑用量少,制備的MMIPsNPs能被磁鐵迅速吸附,為富集分離樣品中的NOR及其后續(xù)檢測提供了一種更簡單、環(huán)保的新技術。

    1 材料與方法

    1.1 試劑

    NOR、環(huán)丙沙星(ciprofloxacin,CIP)、四環(huán)素(tetracycline,TC)標準品:上海源葉生物有限公司;磺胺嘧啶(sulfadiazine,SD)標準品:上海瑞永生物科技有限公司;六水合氯化鐵(FeCl3·6H2O)、四水合氯化亞鐵(FeCl2·4H2O)、乙酸:上海國藥集團化學試劑有限公司;DA、四甲基氫氧化銨(tetramethylammonium hydroxide,TMAOH)、3-氨丙基三乙氧基硅烷(aminopropyltriethoxysiane,APTES):上海阿拉丁生化科技股份有限公司;Tris-base:美國VWR International有限公司。

    1.2 儀器與設備

    Multiskan GO 1510全波長酶標儀:芬蘭Thermo Fisher Scientific Oy公司;DZF-6030A真空干燥箱:上海一恒科學儀器有限公司;KQ-100超聲波清洗器:昆山市超聲儀器有限公司;HNY-20017恒溫搖床:天津歐諾儀器儀表有限公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 Fe3O4@NH2NPs的制備

    將 10 mmol FeCl2·4H2O、18.5 mmol FeCl3·6H2O溶于100mL超純水中,通氮除氧,水浴加熱至85℃,滴加40 mL 2 mol/L NaOH溶液,在550 r/min轉速下反應1 h,冷卻至25℃后用磁鐵吸附,再用超純水反復沖洗至中性后真空干燥,黑色固體即為Fe3O4NPs。干燥后的Fe3O4NPs,經7% TMAOH活化后,用乙醇清洗5次。將0.8 g活化的Fe3O4NPs加入120 mL體積比為1∶1的乙醇-水溶液中混合均勻,水浴加熱至40℃再加入3 mL APTES,通氮除氧,在350 r/min條件下反應10 h,冷卻至25℃后用磁鐵吸附,乙醇沖洗5次,60℃真空干燥,于4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 MMIPs NPs的制備

    1.3.2.1 NOR檢測波長的確定

    分別對Fe3O4@NH2NPs、NOR、DA,用酶標儀掃描紫外全波段光譜,確定NOR的最佳檢測波長。

    1.3.2.2 MMIPs NPs的制備

    將500 mg的Fe3O4@NH2NPs加入100 mL體積比為1∶1的乙醇-水溶液(用Tris-HCl調節(jié)pH值至8.5)中攪拌均勻,轉移至250 mL的燒瓶,25℃水浴,依次加入15 mg NOR、134 mg DA攪拌均勻,在300 r/min轉速下反應2 h,用磁鐵吸附固體,純水清洗固體3次后用真空干燥。

    1.3.2.3 NOR洗脫液的選擇

    分別用1 mmol/L NaOH、1 mol/L NaOH、體積比為97∶3的乙醇-乙酸溶液、體積比為97:3的乙醇-乙酸溶液與1 mol/L NaOH交替洗脫4種方法洗脫模板分子,各洗脫5次,再用純水清洗3次。取20 mg MMIPs NPs吸附1 mL 0.1 mg/mL的NOR標準溶液2 h,檢測上清液中NOR的殘留量,考察洗脫液洗脫模板分子的能力,及MMIPs NPs再次吸附NOR的效果。

    1.3.2.4 模板分子與功能單體物質的量比的確定

    按照 1.3.2.2 的條件,固定Fe3O4@NH2NPs(500 mg)和NOR(15 mg)的添加量,改變NOR與DA物質的量比(NOR ∶DA=1 ∶5、1 ∶10、1 ∶15、1 ∶20) 制備 MMIPs NPs。取15 mg MMIPs NPs吸附1 mL 0.1 mg/mL的NOR標準溶液2 h,檢測上清液中NOR的殘留量,計算其吸附效率,確定最佳的NOR與DA物質的量比例。

    1.3.2.5 Fe3O4@NH2NPs添加量的確定

    按照1.3.2.4得到的最佳條件,固定NOR和DA的添加量,改變Fe3O4@NH2NPs的添加量(250、500、750 mg),制備MMIPs NPs。取一定量的MMIPs NPs吸附1 mL 0.1 mg/mL的NOR標準溶液2 h,檢測上清液中NOR的殘留量,計算其吸附效率,確定Fe3O4@NH2NPs的最佳添加量。

    1.4 吸附時間對吸附效率的影響

    準確稱取9份4 mg MMIPs NPs于4 mL離心管中,分別加入1 mL 0.02 mg/mL的NOR標準溶液,于恒溫培養(yǎng)振蕩器中吸附,在吸附 10、20、30、40、50、60、80、100、120 min時取出,磁鐵吸附后取上清液,檢測其NOR的殘留量,計算其吸附效率,考察吸附時間對吸附效率的影響。

    1.5 MMIPs NPs用量對吸附效率的影響

    分別準確稱取 4、10、15、20 mg 的 MMIPs NPs于4 mL離心管,分別加入1 mL 0.1 mg/mL的NOR標準溶液,于恒溫培養(yǎng)振蕩器中吸附120 min,磁鐵吸附后取上清液,檢測其NOR的殘留量,計算其吸附效率。考察MMIPs NPs用量對吸附效率的影響。

    2 結果與分析

    2.1 Fe3O4@NH2NPs的制備

    2.1.1 Fe3O4@NH2NPs的制備及穩(wěn)定性

    制備的Fe3O4NPs和Fe3O4@NH2NPs呈黑色,在外加磁場作用下可快速聚集,具有良好的磁性。120℃熱風干燥時,Fe3O4NPs的顏色由黑色變?yōu)榧t褐色,說明其完全被氧化;而Fe3O4@NH2NPs仍為黑色,未發(fā)生氧化。故氨基修飾能有效保護Fe3O4NPs不被氧化。

    2.1.2 Fe3O4NPs活化時間的確定

    制備的Fe3O4NPs表面只有極少量的-OH,經TMAOH活化后可在其表面形成更多的-OH,而-OH的含量影響后續(xù)的氨基修飾過程[16]。根據文獻[17]的方法測定了Fe3O4@NH2NPs表面氨基含量,即取20 mg Fe3O4@NH2NPs,加入10 mL 0.1 mol/L的HCl標準溶液,超聲振蕩均勻,用0.1 mol/L的NaOH溶液滴定,記錄滴定終點時消耗NaOH的體積,計算Fe3O4@NH2NPs表面氨基的含量?;罨瘯r間對Fe3O4@NH2NPs表面氨基含量的影響如圖1所示。

    圖1 活化不同時間制備的Fe3O4@NH2NPs表面氨基含量Fig.1 Amino content of Fe3O4@NH2NPs synthesized after different times of activation

    結果表明,Fe3O4NPs活化2 h后制備的Fe3O4@NH2NPs,其表面氨基含量為0.122 5 mmol/g,已達平衡,相對于未經活化制備的Fe3O4@NH2NPs的表面氨基含量(0.068 3 mmol/g)增加了約79%,故Fe3O4NPs的活化時間為2 h。

    2.2 MMIPs NPs的制備

    2.2.1 檢測波長的確定

    圖2為Fe3O4@NH2NPs、NOR、DA和NaOH的紫外光譜圖。Fe3O4@NH2NPs和NaOH無明顯紫外吸收。DA在285 nm處有吸收峰,而NOR在285、323、335 nm處均出現了明顯的吸收峰,且323 nm處的吸收峰比335 nm更強。故NOR的檢測波長選擇323 nm。

    圖2 NOR、DA、Fe3O4@NH2NPs及NaOH的紫外光譜Fig.2 UV spectra of NOR,DA,Fe3O4@NH2NPs and NaOH

    2.2.2 MMIPs NPs對NOR吸附效率的計算

    配置0.004 mg/mL~0.1 mg/mL的NOR標準溶液,在323nm處檢測其吸光度值,建立NOR標準曲線,見圖3。

    圖3 不同濃度NOR的紫外光譜Fig.3 UV spectra of different concentrations of NOR

    取MMIPsNPs富集分離NOR后的上清液,在323nm處測其吸光度值,根據標準曲線計算上清液殘留的NOR濃度,即可計算MMIPs NPs對NOR的吸附效率,公式如下:

    式中:C0為吸附前NOR的初始濃度,mg/mL;C為吸附后上清液中殘留的NOR濃度,mg/mL。

    2.2.3 NOR洗脫液的確定

    4種洗脫方式洗脫的20 mg MMIPs NPs,吸附1 mL 0.1 mg/mL NOR標準溶液2 h的吸附效率見圖4。

    圖44 種洗脫方式下的MMIPs NPs對NOR的吸附效率Fig.4 Adsorption efficiency of MMIPs NPs to NOR after 4 different elution methods

    由圖4可知,采用體積比為97∶3的乙醇-乙酸溶液作為洗脫液,其吸附效率最高,為88.79%,用體積比為97∶3的乙醇-乙酸溶液與1 mmol/L NaOH交替洗脫,其吸附效率為85.37%,1 mol/L NaOH的洗脫效果最差,為39.38%。故優(yōu)選體積比為97∶3的乙醇-乙酸溶液作為模板分子的洗脫液。

    2.2.4 模板分子與功能單體物質的量比的確定

    模板分子與功能單體不同物質的量比制備的MMIPs NPs,對NOR的吸附效率見圖5。

    圖5 不同模板分子與功能單體物質的量比制備的MMIPs NPs對NOR的吸附效率Fig.5 Adsorption efficiency of MMIPs NPs synthesized by different amount of substance ratios of NOR and DA on NOR

    由圖5可知,隨著DA的量逐漸增大,吸附效率逐漸增加,這可能是由于DA的增加,形成的分子印跡孔穴的數量增加。當NOR和DA的物質的量比為1∶15時,吸附效率最大,為99.17%,相對標準偏差為1.03%。當NOR和DA的物質的量比為1∶20時,吸附效率減小至96.91%,這可能是因為DA的用量過多導致分子印跡層變厚,掩蓋了部分分子印跡孔穴[18-19]。故模板分子與功能單體的最佳物質的量比為1∶15。

    2.2.5 Fe3O4@NH2NPs添加量的確定

    不同Fe3O4@NH2NPs添加量制備的MMIPs NPs,對NOR的吸附效率見圖6。

    圖6 不同Fe3O4@NH2NPs添加量制備的MMIPs NPs對NOR的吸附效率Fig.6 Adsorption efficiency of MMIPs NPs synthesized on NOR based on different addition amount of Fe3O4@NH2NPs

    由圖6可知,分別取4、10、15 mg的MMIPs NPs進行吸附時,Fe3O4@NH2的添加量為500 mg制備的MMIPs NPs的吸附效率分別為55.24%、94.23%、99.17%,而Fe3O4@NH2NPs的添加量為250 mg和750 mg制備的MMIPs NPs均沒有Fe3O4@NH2的添加量為500 mg制備的MMIPs NPs的吸附效率高,可能原因是250 mg的Fe3O4@NH2NPs的添加量過少,導致形成的分子印跡層較厚,從而掩蓋了部分分子印跡孔穴,最終使得吸附效率下降。而750 mg的Fe3O4@NH2NPs的添加量過多,部分Fe3O4@NH2NPs表面沒有完全形成分子印跡層,使得吸附效率下降。故Fe3O4@NH2NPs的最佳添加量為500 mg。

    2.2.6 MMIPs NPs的最佳制備方法

    稱取500 mg Fe3O4@NH2NPs加入100 mL體積比為 1∶1的乙醇-水溶液(含 10 mmol/L Tris-HCl,pH8.5)超聲溶解10 min后加入15 mg NOR攪拌10 min,再加入134 mg DA(稍過量)混合。25℃水浴,300 r/min機械攪拌反應2 h。反應停止后,靜置2 h。用磁鐵對其進行富集分離后,用水和體積比為97∶3的乙醇-乙酸溶液洗滌后真空干燥,得到MMIPs NPs。磁性非分子印跡納米粒子(MNIPs NPs)的制備除不添加模板分子外,其他條件與MMIPs NPs制備方法一致。

    2.3 吸附時間對吸附效率的影響

    4 mg的MMIPs NPs和MNIPs NPs分別對1 mL 0.02 mg/mL NOR吸附效率隨時間的變化如圖7所示。

    圖7 吸附時間對吸附效率的影響Fig.7 Influence of adsorption time on adsorption efficiency

    由圖7可知,相同條件下,隨著吸附時間的增加,吸附效率不斷上升,在60 min時基本達到平衡,此時的吸附效率為94.61%,是MNIPs NPs(43.39%)的2.18倍,說明制備的MMIPs NPs具有能結合NOR的分子印跡孔穴。

    2.4 MMIPs NPs用量對吸附效率的影響

    不同MMIPs NPs用量對0.1 mg NOR的吸附效率如圖8所示。

    圖8 MMIPs NPs用量對吸附效率的影響Fig.8 Effect of MMIPs NPs dosage on adsorption efficiency

    由圖8可知,在吸附相同時間的情況下,吸附效率隨著MMIPs NPs用量的增加而上升,在用量為15 mg時基本達到平衡,此時吸附效率為99.17%,相對標準偏差為1.03%,基本已完全吸附。說明吸附相同質量的NOR,MMIPs NPs的用量越大,吸附效率越高。

    3 結論

    MMIPs NPs因其能夠特異性識別和吸附樣品中的目標物,并在外加磁場作用下可快速與基質分離,在分析檢測領域得到了廣泛地應用[12,20-21]。本研究首先采用化學共沉淀法制備了Fe3O4NPs,并發(fā)現用7%TMAOH對其活化2 h,再進行氨基修飾能夠使Fe3O4NPs表面氨基含量大大增加。然后以Fe3O4@NH2NPs為磁性載體、NOR為模板分子、DA為功能單體和交聯(lián)劑,成功制備了NOR的MMIPs NPs。所制備的4 mg MMIPs NPs吸附 1 mL 0.02 mg/mL的 NOR 60 min,其吸附效率可達94.61%,是相同條件下MNIPs NPs的2.18倍。15 mg MMIPs NPs吸附1 mL 0.1 mg/mL的NOR 60 min,其吸附效率可達99.17%,相對標準偏差為1.03%,說明可通過調整MMIPs NPs用量實現對NOR的完全吸附。該制備方法簡單、成本低廉,可快速有效富集分離NOR,且能重復利用,對簡化樣品前處理步驟、提升前處理效率、提高分析結果的準確性和重現性具有重要的實際意義。

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