蔡少鵬,鄭麗莎,蔡惠連,封杰妮,朱嫻瓊,高曉露,范巧明,楊慶依,季兵
(1.廣州中醫(yī)藥大學(xué),廣東廣州 510006;2.廣東祈福醫(yī)院,廣東廣州 511400)
糖尿?。╠iabetic mellitus,DM)發(fā)病率正逐年提高,一項全國性橫斷面研究結(jié)果表明,45 歲以上人群糖尿病患病率高達13.21%,其中,90%以上為2 型糖尿病(type 2 diabetic mellitus,T2DM)患者,且患病率隨年齡增長而增加[1]。T2DM 與酮癥酸中毒、心血管疾病等急慢性疾病高度相關(guān),已成為威脅我國居民健康的重大公共衛(wèi)生問題。然而,臨床上口服的降糖藥如雙胍類、促胰島素分泌劑、α-糖苷酶抑制劑多因胃腸道反應(yīng)、營養(yǎng)與代謝障礙、過敏反應(yīng)、肝功能損害等副作用而存在臨床局限性[2-4]。相對而言,中醫(yī)藥具有毒副作用小、綜合治療作用、可延緩并發(fā)癥等優(yōu)點,隨著中醫(yī)藥現(xiàn)代化研究進程的加快,對抗T2DM 中藥復(fù)方的研究也愈加受到關(guān)注。有研究報道,中醫(yī)藥在抑制β細胞凋亡、修復(fù)β細胞功能等方面展現(xiàn)出光明前景[5-7]。本課題組前期臨床研究發(fā)現(xiàn),補腎健脾方(淫羊藿、鹿角膠、黃精、沙苑子、制首烏、黃芪、山藥、葛根、丹參、制大黃)具有降低T2DM 患者空腹血糖[7]、糖化血紅蛋白[8-9]、穩(wěn)態(tài)模型評估的胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR)[10]等臨床療效,但其具體作用機制尚未明確。因此,本研究旨在通過聯(lián)合網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)、生物信息學(xué)、分子對接分析潛在的作用機制,并通過動物實驗驗證,以期進一步為臨床應(yīng)用補腎健脾方治療T2DM 提供參考,現(xiàn)將研究結(jié)果報道如下。
1.1 網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)研究
1.1.1 補腎健脾方化合物與相關(guān)靶點 通過中藥系統(tǒng)藥理學(xué)數(shù)據(jù)庫與分析平臺(TCMSP,https://tcmsp-e.com/tcmsp.php)獲取補腎健脾方中藥成分及對應(yīng)的作用靶點,根據(jù)藥物動力學(xué)參數(shù),以口服生物利用度(OB)≥30%、類藥性(DL)≥0.18 進行初篩;同時,通過BATMAN-TCM 數(shù)據(jù)庫(http://bionet.ncpsb.org.cn/batman-tcm/index.php/Home/Index/index)補充中藥成分及靶點,以默認參數(shù)進行篩選。通過UniProt 數(shù)據(jù)庫(https://www.uniprot.org/)對靶點名稱進行標(biāo)準(zhǔn)化,轉(zhuǎn)化為gene symbol格式。
1.1.2 基因表達矩陣獲取 通過GEO 數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi)獲取基因表達矩陣:數(shù)據(jù)集GSE18732 基于GPL9486 平臺,包括118 個樣本,其中,T2DM 樣本45例,糖耐量異常(IGT)樣本26例,正常樣本47例;數(shù)據(jù)集GSE95849 基于GPL22448 平臺,包括18 個樣本,其中,T2DM 樣本6例,正常樣本6例,糖尿病神經(jīng)病變樣本6例。為保證樣本的可對比性,本研究剔除了糖尿病神經(jīng)病變樣本,僅12 例樣本被納入研究。通過GEOquery 包獲取基因集信息,并進行標(biāo)準(zhǔn)化處理。
1.1.3 Mfuzz分析 基因通常不是以“開-關(guān)”的方式進行調(diào)控,而是以漸進的方式,這樣可以對基因功能進行更精細的控制[11]。T2DM 是由正常血糖發(fā)展到IGT后再進一步轉(zhuǎn)變而來,因此,存在漸進性進展的改變過程[12]。與傳統(tǒng)硬聚類不同,Mfuzz 提供了一種軟聚類算法,通過區(qū)分一個基因的聚類程度來反映漸進性的變化規(guī)律。本研究以GSE18732 數(shù)據(jù)集樣本臨床信息為依據(jù),根據(jù)“正常-IGT-T2DM”的轉(zhuǎn)變規(guī)律進行Mfuzz分析,獲取與T2DM 轉(zhuǎn)變過程同步變化的聚類,提取聚類基因用于后續(xù)分析。
1.1.4 差異分析 通過limma 包提取GSE95849 數(shù)據(jù)集,根據(jù)發(fā)病狀態(tài)進行差異分析,以|logFC|≥1且P<0.05 為條件進行篩選,獲取T2DM 與正常樣本存在差異的基因。
1.1.5 藥物作用靶點獲取 分別提取“1.1.1”“1.1.3”“1.1.4”項中補腎健脾方的作用靶點及T2DM 發(fā)展過程同步變化的差異靶點,獲取交集靶點作為補腎健脾方的作用靶點,通過Cytoscape 3.7.1軟件進行可視化。
1.1.6 GO富集與KEGG 通路 提取“1.1.5”項中補腎健脾方的作用靶點,通過clusterProfiler、org.Hs.eg.db 包進行富集分析,分別提取P<0.05 的分子生物功能(MF)、生物過程(BP)、細胞組分(CC)和KEGG通路,預(yù)測補腎健脾方的作用機制。
1.1.7 核心靶點篩選 提取“1.1.5”項中的作用靶點,導(dǎo)入STRING數(shù)據(jù)庫(https://string-db.org/)獲取靶點的交互作用,隨后導(dǎo)入Cytoscape 軟件,通過MCODE 插件進行網(wǎng)絡(luò)分析,計算靶點的Degree、Betweenness、Closeness等信息,分別提取每個指標(biāo)排前10 位的靶點,獲取交集靶點作為核心靶點,該靶點在網(wǎng)絡(luò)中具有優(yōu)秀的核心影響作用。
1.1.8 分子對接 提取度(Degree)值最高的活性成分,與FOS、NOTCH1 進行分子對接。從Protein Data Bank(PDB)(https://www.rcsb.org/)數(shù)據(jù)庫下載核心靶點蛋白FOS(PDB ID:1A02)、NOTCH1(PDB ID:5L0R)的PDB格式(遵循:人源蛋白,分辨率及具有原始配體)。從TCMSP 數(shù)據(jù)庫、ZINC數(shù)據(jù)庫下載活性成分的mol2 格式。使用PyMOL 2.6.0 對靶點蛋白進行去水、去小分子配體,采用AutoDockTools 1.5.7 對靶點蛋白、活性分子加全氫后進行分子對接,通過PyMOL 對分子對接結(jié)果進行可視化處理。
1.2 實驗驗證
1.2.1 動物 4 周齡、體質(zhì)量約20 g 的雄性db/db陽性小鼠8只,均購自江蘇集萃藥康生物科技有限公司,動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(蘇)2018-0008。本動物實驗通過廣州銳格生物科技有限公司倫理委員會批準(zhǔn),倫理號:20220301-121。
1.2.2 藥物、試劑與儀器 補腎健脾方由淫羊藿12 g、鹿角膠15 g、黃精12 g、沙苑子15 g、制首烏15 g、黃芪30 g、山藥30 g、葛根30 g、丹參30 g、制大黃10 g組成,以上中藥飲片均購自廣東祈福醫(yī)院中藥房,加工成凍干粉。胰島素酶聯(lián)免疫吸附分析(ELISA)試劑盒(武漢基因美科技有限公司);線粒體超氧化物歧化酶(SOD)ELISA 試劑盒(廣州博輝生物科技有限公司);丙二醛(MDA)ELISA 試劑盒(上海酶研生物科技有限公司);Bax抗體、Bcl-2 抗體、Caspase-3 抗體、山羊抗兔IgG二抗(北京中杉金橋公司);FOS 抗體、NOTCH1抗體(美國Cell Signaling Technology 公司)。酶標(biāo)儀(深圳雷杜生命科學(xué)股份有限公司);電熱恒溫培養(yǎng)箱(上海一恒科技有限公司);RM2016 切片機(上海徠卡儀器有限公司);DM500 光學(xué)顯微鏡(德國Leica 公司);電泳及轉(zhuǎn)膜裝置(美國Bio-Rad公司)。
1.2.3 分組與給藥 將db/db 陽性小鼠隨機分為治療組和對照組,每組4只,適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周。治療組給予補腎健脾方凍干粉溶液9.95 g/kg 灌胃,對照組給予等體積生理鹽水灌胃,每日2次,連續(xù)給藥4 周。小鼠灌胃劑量計算方法:中藥按20%出粉率計算,補腎健脾方凍干粉人體用量為0.796 g·kg-1·d-1,按小鼠用藥量為人體用藥量25倍計算小鼠用藥量為19.9 g·kg-1·d-1。
1.2.4 觀察指標(biāo)與方法
1.2.4.1 胰島功能及氧化應(yīng)激指標(biāo)檢測 灌胃4 周后,禁食不禁水6 h,斷頸處死小鼠。腹主動脈取血,血糖試紙檢測空腹血糖水平,按試劑盒說明書采用ELISA 法檢測空腹胰島素,并計算穩(wěn)態(tài)模型評估的胰島素抵抗指數(shù)(HOMA-IR):HOMA-IR=空腹胰島素×空腹血糖/22.5[13]。按試劑盒說明書采用ELISA法檢測SOD、MDA含量。
1.2.4.2 Western Blot法檢測小鼠胰腺組織內(nèi)蛋白表達 取胰腺組織,裂解、離心,收集上清液。取10 μg 蛋白添加到聚丙烯酰胺凝膠中電泳分離轉(zhuǎn)移到PVDF 膜上后封閉,分別加入一抗FOS 和NOTCH1 4 ℃孵育過夜,用TBST 洗滌3 次后加入二抗孵育,用ImageJ 軟件定量分析蛋白條帶的光密度洗膜,顯影。
1.2.4.3 免疫組織化學(xué)法觀察小鼠胰腺凋亡相關(guān)蛋白表達 取胰腺組織石蠟切片,脫蠟和水化,抗原修復(fù),消除內(nèi)源性過氧化物酶活性,封閉。分別與一抗Bax、Bcl-2、Caspase-3 于37 ℃孵育1~ 2 h,與二抗37 ℃孵育0.5~ 2 h,顯色后拍照。用ImageJ 軟件分析Bax、Bcl-2、Caspase-3 陽性面積百分比。Bax、Bcl-2 在細胞漿表達,Caspase-3在細胞漿和細胞核均有表達,呈棕黃色或棕褐色顆粒。
1.2.5 統(tǒng)計方法 運用R 4.1.3 軟件進行數(shù)據(jù)處理分析,計量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,組間差異對于符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)采用t檢驗,不符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)采用Wilcoxon 秩和檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 Mfuzz 分析隨著正常樣本從IGT 轉(zhuǎn)變?yōu)門2DM,聚類2、5 呈同步反向變化,聚類7 呈同步正向變化,見圖1。提取上述3個聚類共3 593個基因,其表達量與T2DM 的進展有同步變化關(guān)系,提示其可能為T2DM的關(guān)鍵生物標(biāo)志物。
圖1 Mfuzz分析Figure 1 Mfuzz analysis
2.2 差異分析以|logFC| ≥1、P<0.05 為條件進行差異分析,篩選得到差異基因2 997個,其中,上調(diào)基因2 834個、下調(diào)基因163個,見圖2。通過繪制韋恩圖,獲取與Mfuzz 分析結(jié)果的交集基因576個,見圖3。
圖2 火山圖Figure 2 Volcano plot
圖3 韋恩圖Figure 3 Venn diagram
2.3 “中藥-成分-靶點”網(wǎng)絡(luò)將補腎健脾方活性成分及其靶點與576 個T2DM 靶點取得交集基因77個,包括PROS1、FDXR、PYCR2、FOS等,提取交集基因相關(guān)的中藥成分信息導(dǎo)入Cytoscape 軟件構(gòu)建網(wǎng)絡(luò)圖,見圖4。該網(wǎng)絡(luò)包括253 個節(jié)點和841條邊,根據(jù)Degree值篩選的核心成分主要有黃體酮(Progesterone)、γ-谷甾醇(Gamma-Sitosterol)、2-甲基腰果二酚(2-Methyl Cardol)、十五烷酸(Pentadecanoic Acid)。
2.4 GO 富集與KEGG 通路77 個基因用于GO 富集及KEGG 通路富集分析,提取P<0.05 的富集結(jié)果。MF 主要富集于氧化還原酶的活性、輔酶結(jié)合等;CC主要富集于細胞-細胞接觸區(qū)、線粒體基質(zhì)等;BP 主要富集于缺氧及其響應(yīng)。KEGG 通路主要富集于T2DM、FoxO 通路、cAMP 通路等??梢园l(fā)現(xiàn),77個基因與氧化應(yīng)激關(guān)系密切。見圖5。
圖5 GO富集與KEGG通路富集Figure 5 GO enrichment versus KEGG pathway enrichment
2.5 核心靶點篩選將77個基因?qū)隨TRING數(shù)據(jù)庫,去除無連接節(jié)點,其余參數(shù)默認,構(gòu)建了一個63 個節(jié)點和117 條邊的網(wǎng)絡(luò),通過MCODE 模塊分別計算節(jié)點的Degree、Closeness、Betweenness、MNC、MCC、EPC、EcCentricity和DMNC指標(biāo),分別提取前10個節(jié)點獲取共同交集靶點2個:FOS和NOTCH1。見圖6。通過對比可以發(fā)現(xiàn),F(xiàn)OS 和NOTCH1 在T2DM 樣本中表達水平顯著高于正常樣本,見圖7。
圖6 花瓣圖Figure 6 Petal diagram
圖7 云雨圖Figure 7 Cloud and rain map
2.6 分子對接根據(jù)“2.5”項Degree 值排序,篩選了黃體酮(Progesterone)、γ-谷甾醇(Gamma-Sitosterol)、2-甲基腰果二酚(2-Methyl Cardol)、十五烷酸(Pentadecanoic Acid)作為主要活性成分,隨后將活性成分和核心靶點FOS(PDB ID:1A02)、NOTCH1(PDB ID:5L0R)進行分子對接,結(jié)合能見表1。結(jié)合能小于0,表明受體分子與配體分子能自發(fā)結(jié)合;結(jié)合能小于-1.2 kcal·mol-1,表明對接能力較強,對接后分子的穩(wěn)定性較高。本研究對接結(jié)果顯示結(jié)合能均小于-1.2 kcal·mol-1,表明活性成分與核心靶點蛋白均能較穩(wěn)定地結(jié)合。分子對接的可視化結(jié)果見圖8。
表1 結(jié)合能Table 1 Binding energy
圖8 分子對接的可視化結(jié)果Figure 8 Visualisation of molecular docking results
2.7 各組小鼠胰島功能比較干預(yù)后,治療組小鼠的空腹血糖、空腹胰島素水平、HOMA-IR 水平均顯著低于對照組(P<0.05),結(jié)果見表2。
表2 各組小鼠空腹血糖、空腹胰島素、HOMA-IR水平比較Table 2 Comparison of fasting blood glucose,fasting insulin and HOMA-IR levels among each group of mice ()
表2 各組小鼠空腹血糖、空腹胰島素、HOMA-IR水平比較Table 2 Comparison of fasting blood glucose,fasting insulin and HOMA-IR levels among each group of mice ()
注:①P<0.05,與對照組比較
2.8 各組小鼠血清SOD、MDA 比較經(jīng)干預(yù)后,治療組小鼠的SOD水平明顯高于對照組(P<0.05),而MDA水平則低于對照組(P<0.01),結(jié)果見表3。
表3 各組小鼠血清SOD、MDA水平比較Table 3 Comparison of serum SOD and MDA levels among each group of mice()
表3 各組小鼠血清SOD、MDA水平比較Table 3 Comparison of serum SOD and MDA levels among each group of mice()
注:①P<0.05,②P<0.01,與對照組比較
2.9 各組小鼠胰腺組織FOS、NOTCH1表達比較干預(yù)后,治療組小鼠胰腺中FOS、NOTCH1 表達量低于對照組(P<0.05或P<0.01),結(jié)果見圖9。
圖9 各組小鼠胰腺組織FOS、NOTCH1表達比較Figure 9 Comparison of FOS and NOTCH1 expressions in pancreatic tissue among each group of mice
2.10 各組小鼠胰腺凋亡相關(guān)蛋白表達比較干預(yù)后,與對照組比較,治療組小鼠胰腺Bax、Caspase-3 陽性面積百分比降低(P<0.05),Bcl-2陽性面積百分比升高(P<0.05),結(jié)果見表4、圖10~圖12。
表4 各組小鼠胰腺凋亡相關(guān)蛋白表達比較Table 4 Comparison of the expressions of apoptosisrelated proteins in the pancreas among each group of mice(,%)
表4 各組小鼠胰腺凋亡相關(guān)蛋白表達比較Table 4 Comparison of the expressions of apoptosisrelated proteins in the pancreas among each group of mice(,%)
注:①P<0.05,與對照組比較
圖10 Bax 的免疫組織化學(xué)染色圖(×100)Figure 10 Immunohistochemical staining of Bax(×100)
圖11 Bcl-2的免疫組織化學(xué)染色圖(×100)Figure 11 Immunohistochemical staining of Bcl-2(×100)
圖12 Caspase-3的免疫組織化學(xué)染色圖(×100)Figure 12 Immunohistochemical staining of Caspase-3(×100)
2 型糖尿?。═2DM)的發(fā)病機制中,胰島素抵抗和胰島β細胞功能衰竭是兩個關(guān)鍵環(huán)節(jié)。在確診糖尿病時,糖尿病患者的胰島β細胞功能已下降至正常人的一半,而在糖尿病診斷前10~12年,β細胞數(shù)量已經(jīng)顯著減少,并在此后逐年走向衰竭,正常的胰島β細胞則難以補償胰島素抵抗或不能再發(fā)揮這種補償機制,明顯加速了T2DM 病程[14-15]。有學(xué)者認為,胰島β 細胞衰竭源于凋亡異常增加[16],抑制β 細胞凋亡對維持β 細胞數(shù)量及功能具有重要意義[17-18]。
胰島素抵抗?fàn)顟B(tài)與糖尿病前期相關(guān),糖尿病前期被認為是轉(zhuǎn)化為糖尿病的高風(fēng)險狀態(tài),在此期間活性氧(ROS)生成增加,增加的氧化應(yīng)激誘導(dǎo)T2DM 及血管功能障礙等并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展[19]。氧化應(yīng)激導(dǎo)致肌肉和脂肪細胞的葡萄糖攝取受損,并減少β 細胞的胰島素分泌[20]。Furukawa 等[21]通過使用煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶抑制劑減少全身氧化應(yīng)激,改善了肥胖小鼠模型中的葡萄糖代謝。Meigs 等[22]研究的數(shù)據(jù)顯示,胰島素抵抗的患病率與氧化應(yīng)激標(biāo)志物8-epi-PGF2α濃度呈正相關(guān),這表明胰島素抵抗與非糖尿病患者和糖尿病風(fēng)險升高的亞組如肥胖或空腹血糖受損(IFG)中的氧化應(yīng)激相關(guān)。此外,在IFG 受試者中,與空腹血糖正常受試者相比,這種相關(guān)性更高[23-24]。可見,氧化應(yīng)激誘導(dǎo)β 細胞功能障礙是誘導(dǎo)胰島素抵抗、促進IGT 與T2DM 的關(guān)鍵過程。然而,目前臨床抗T2DM 的治療藥物發(fā)揮降糖療效的同時,對受損的β細胞進一步刺激受損,缺乏促進β 細胞修復(fù)的功能,難以控制日漸衰退的β 細胞數(shù)量及功能[25-26]。相對而言,中藥“多靶點”治療優(yōu)勢在改善糖尿病癥狀的同時對β細胞的保護展現(xiàn)出良好的應(yīng)用前景,并逐漸受到臨床的廣泛關(guān)注。
T2DM 歸屬于中醫(yī)學(xué)“消渴”的范疇。“脾腎虛于內(nèi),標(biāo)實于外”是T2DM 的發(fā)病進展原因。由于久坐、熬夜等不良生活方式及肥胖發(fā)病率的增長,目前臨床上以“三多一少”為典型表現(xiàn)的T2DM 患者越來越少,相反,以疲倦乏力、形體肥胖、脘腹脹滿、腰膝酸軟、舌淡胖有齒痕,苔薄白,脈沉細無力等脾腎虧虛證候居多?!鹅`樞·本臟》言:“腎脆則善病消癉易傷?!薄妒颐劁洝?nèi)傷門》言:“消渴之證,雖分上、中、下而以腎虛致渴,而無不同也?!蹦I為元陰元陽之臟,腎陰虧虛,無以上濟,虛火內(nèi)生,精血化生失源,脈道不充,久病累及腎陽,不能溫養(yǎng)脾陽,加之飲食不節(jié),脾陽受損,日久脾腎虧虛。《素問·經(jīng)脈別論》言:“飲入于胃,游溢精氣,上輸于脾,脾氣散精,上歸于肺……水津四布,五經(jīng)并行。”氣血依賴于脾胃納運相得,因脾胃功能失常,水谷精微無法轉(zhuǎn)化為氣血輸布,食滯生痰、生熱、生瘀,進一步阻滯陽氣宣通,而病邪蓄積體內(nèi)表現(xiàn)為血糖、血脂等升高。因此,血糖的升高是病邪“標(biāo)實”的體現(xiàn),脾腎耗竭是發(fā)病的根本,降糖等祛邪手段在短期內(nèi)起效顯著,實則加重了“本虛”,如一線用藥二甲雙胍,其臨床療效受到普遍認可的時候,卻因其藥性寒涼,會出現(xiàn)腹瀉等脾陽受損加重的表現(xiàn)[27-28];而磺脲類藥物降糖起效快且效果顯著,卻因過度耗損β 細胞,動搖了根本,導(dǎo)致本虛無以抗邪出現(xiàn)繼發(fā)性失效。因此,補腎健脾為治療T2DM的要點。
本研究綜合生物信息學(xué)及網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué),篩選出77 個補腎健脾方的作用靶點,通過富集分析,77 個靶點與氧化應(yīng)激過程關(guān)系密切,并進一步篩選出2 個核心靶點FOS、NOTCH1,通過分子對接證明了補腎健脾方的主要活性成分與核心靶點結(jié)合穩(wěn)定。最后,通過動物實驗證明了補腎健脾方可有效降低胰腺FOS、NOTCH1 表達,并降低脂質(zhì)過氧化指標(biāo)MDA,提高抗氧化指標(biāo)SOD 活性,抑制凋亡蛋白Bax、Caspase-3 表達,促進凋亡抑制蛋白Bcl-2 表達,同時升高HOMA-IR。表明補腎健脾方通過降低胰腺FOS、NOTCH1 表達來緩解氧化應(yīng)激,降低胰島細胞凋亡,改善胰島素抵抗以延緩T2DM的進展。
綜上所述,補腎健脾方可通過胰腺FOS、NOTCH1等發(fā)揮抗氧化應(yīng)激改善胰島細胞凋亡,達到延緩T2DM 進展的目的,為其對T2DM 的防治提供了證據(jù)支持。