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    產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的篩選與體外益生特性評價

    2023-10-08 07:45:22張曉雨韋云路
    現(xiàn)代食品 2023年14期
    關(guān)鍵詞:株菌胞外菌體

    ◎ 李 悅,陳 靜,張曉雨,劉 義,韋云路

    (1.西南科技大學生命科學與工程學院,四川 綿陽 621000;2.貴州食品工程職業(yè)學院,貴州 貴陽 550000)

    胞外多糖(EPS)是乳酸菌向周邊環(huán)境產(chǎn)生的高分子化合物,主要由糖和糖的衍生物組成[1],長期以來一直被安全地用于食品工業(yè)[2]。由于LAB通常被認為是一種安全的食品微生物,純化的LAB和EPS可以直接用于乳品行業(yè),作為商業(yè)乳化劑和增稠劑的替代品,以改善酸奶的黏度、質(zhì)地和風味[3,4]。然而,雖然人們普遍認識到了LAB與EPS的各種好處,但只有少數(shù)產(chǎn)品已經(jīng)商業(yè)化和工業(yè)化生產(chǎn)。

    分離能夠產(chǎn)生活性EPS的天然乳酸菌株,是廣泛使用和應用乳酸菌的先決條件。發(fā)酵食品大多是由乳酸菌發(fā)酵而成,可以作為產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的重要來源[5]。研究者發(fā)現(xiàn)一種土耳其飲料,以植物乳桿菌為主要菌種,并從天然發(fā)酵的青橄欖汁中篩選了17個以上的菌株[6-9]。

    研究表明,產(chǎn)生胞外多糖的乳酸菌和發(fā)酵劑的結(jié)合,可以增加酸奶的黏度和改善口感,而酸奶的黏度主要由形成胞外多糖的數(shù)量及結(jié)構(gòu)決定[10-11]。Helen等[12]人提出,產(chǎn)胞外多糖乳酸菌在提高發(fā)酵乳硬度方面具有一定效果,且EPS產(chǎn)量越高,制品硬度越小。隨著穩(wěn)定劑在歐洲被禁止使用,出現(xiàn)了不使用添加劑的天然食品[13]。

    本研究采用四川特色傳統(tǒng)發(fā)酵食品臘肉與泡菜作為原材料,篩選并鑒定高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌菌株,且對其抗氧化性與自聚集能力進行評價,以期為開展高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的開發(fā)與研究提供理論基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    原料:自然發(fā)酵的泡菜、四川農(nóng)家自制臘肉。

    培養(yǎng)基:MRS固體培養(yǎng)基、MRS液體培養(yǎng)基,北京陸橋技術(shù)公司。

    試劑:胰蛋白酶,北京瑞達恒輝科技發(fā)展有限公司;濃硫酸、二甲苯、酚酞、過氧化氫、無水乙醇,成都金山化學試劑。

    1.2 儀器與設備

    TOMY SX-700立式高壓蒸汽滅菌鍋:櫻美迪生物科技(上海)有限公司;SW-CJ-1F水平流潔凈工作臺:蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;SPX-250-B-Z微生物恒溫培養(yǎng)箱:上海博訊實業(yè)有限公司;UV-5800PC紫外分光光度計:上海元析儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 菌株的分離、純化

    取5 g產(chǎn)品進行處理,利用梯度稀釋將濃度降到10~5。每個梯度于MRS瓊脂上涂覆,置于37 ℃培養(yǎng)24~48 h。從平板上選取具有不同特征的單個菌落,對其展開分離和純化,反復進行以上步驟,直至產(chǎn)生純菌落,然后將所得的單一菌株進行排序,甘油保藏[14]。

    1.3.2 菌株的篩選

    1.3.2.1 菌株自聚集實驗

    參考SON等[15]的方法作適當修改,將乳酸菌菌株5 000 r/min,離心10 min收集,利用PBS緩沖液洗滌菌體2次,PBS緩沖液重懸菌體用測OD600并調(diào)至1.0,于37 ℃培養(yǎng)箱中靜置2 h,取0.1 mL上層懸液加入1.9 mL的PBS中測定OD600。

    1.3.2.2 乳酸菌胞外多糖的提取

    根據(jù)劉滔[16]和陳東[17]的方法做了修改, 3%接種量接種于MRS中, 37 ℃發(fā)酵24 h,離心(5 000 r/min、25 min)取上清液,加入三氯乙酸使其濃度為4 %, 4 ℃靜置過夜,離心(5 000 r/min、20 min)取上清液,加入3倍體積無水乙醇, 4 ℃靜置過夜,離心(5 000 r/min、20 min)去上清液,用蒸餾水使其溶解,在4 ℃下透析2 d,冷凍干燥,稱重量。

    1.3.3 菌株的鑒定

    (1)乳酸菌的16S rDNA 基因序列測定

    由專業(yè)公司測序,將測序后獲得的16S rDNA基因序列遞交美國國家生物技術(shù)信息中心(NCBI)數(shù)據(jù)庫;使用搜索工具(BLAST)進行同源性比對,對序列一致性分析[18]。

    (2)乳酸菌細胞形態(tài)觀察

    將篩選出的3株乳酸菌培養(yǎng)24 h,隨后用革蘭氏染色法對目標細菌的形態(tài)進行觀察。

    1.3.4 菌株的體外益生特性

    1.3.4.1 DPPH自由基清除率的測定

    吸取不同發(fā)酵時段的發(fā)酵上清液2 mL于10 mL試管中,每支試管加入2 mL 、2×10-4mol·L-1的DPPH溶液,將其振蕩均勻,在黑暗處放置30 min,取上清液,測定波長為517 nm的吸光度。實驗設空白組、對照組、實驗組[19-20]。

    式中,A1是DPPH溶液與被測定的液體的吸光度;A2是無水酒精與被測定的溶液的吸光度;A0為DPPH溶液與無水酒精的吸光度值。

    1.3.4.2 乳酸菌細胞表面疏水性的測定

    利用BATH測定細胞表面疏水性:取菌液5 mL于離心管,離心(3 000 r/min 、10 min)收集菌體。用5 mL的PBS緩沖液清洗兩次,以 PBS緩沖液作空白對照,用其調(diào)節(jié)OD600為1.00 nm,取4 mL于離心管內(nèi),添加二甲苯0.8 mL,對照組未添加,震蕩30 s后放置10 s,再次震蕩30 s,靜置10 min待分層。測水相測定OD600nm值[21]。

    式中,A0是與二甲苯混合前菌液OD值;A是與二甲苯混勻后菌液 OD值。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 分離結(jié)果

    從四川傳統(tǒng)的發(fā)酵食品樣品中,分離純化出大約40株的乳酸菌單菌落,其固體培養(yǎng)基的形態(tài),菌株均為白色,形狀為圓形,且表面濕潤和凸起,可以明顯分辨為乳酸菌單個菌落。其中,由泡菜篩選的菌株編號為P1-25,臘肉編號為L1-15,分離到的乳酸菌均采用甘油進行菌株保藏,以備后續(xù)試驗。

    2.2 菌株的篩選及鑒定

    2.2.1 菌株的篩選

    2.2.1.1 自聚集能力

    采用整群隨機抽樣的方法,從某省某高校二年級學生中選取120名非英語專業(yè)大學生為調(diào)查對象。其中男生57名,女生63名。

    對篩選的乳酸菌進行培養(yǎng),形成單菌落,初步觀察其菌落形態(tài)后,選取菌落較大、黏稠的菌株,并進行自聚集能力測定,測定結(jié)果顯示自聚集率最高的10株乳酸菌,分別為P2、P6、P10、P12、P15、P16、P18、P19、L2、L6(如表1所示)。

    表1 菌株自聚集能力表

    2.2.1.2 高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌的篩選

    將2.2.1.1中所得的10株菌進行培養(yǎng)并提取胞外多糖后經(jīng)真空冷凍干燥,獲得的乳酸菌胞外多糖樣品顏色為淡黃色或乳白色,結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)疏松多孔的形態(tài);對每株菌產(chǎn)生的EPS進行稱重,篩選出來的3株高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌菌株分別是P2、P6、P19(如表2所示)。

    表2 菌株多糖產(chǎn)量表

    2.2.2 菌株的鑒定

    2.2.2.1 乳酸菌的16S rDNA 基因序列

    將從四川傳統(tǒng)發(fā)酵食品中獲得的高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌送公司鑒定,結(jié)果如表3所示,分別為P2(Leuconostoc mesenteroides)、P6(Lactobacillus sakei)、P9(Weissella viridescens)。

    表3 菌株16S rDNA的測序結(jié)果表

    對3株高產(chǎn)胞外多糖的乳酸菌進行革蘭氏染色,結(jié)果見圖1,所有的細菌都是革蘭氏陽性,并且細胞形態(tài)呈現(xiàn)長杄、短杄、棒狀、球狀、細長形,無分枝。

    圖1 顯微鏡下菌株細胞形態(tài)圖

    2.3 乳酸菌益生特性

    2.3.1 乳酸菌DPPH自由基清除能力

    用 DPPH自由基清除速率來評估乳桿菌的抗氧化性。如圖2所示,乳桿菌發(fā)酵液具有一定的抗氧化活性,數(shù)據(jù)顯示,在乳酸菌的發(fā)酵過程中,3株菌的DPPH自由基清除率均隨著時間的延長而增長,30 h后,P2和P6有降低趨勢,清除率最低的是P2;18 h前,P19的清除能力最強;18h后,P19和P6對DPPH自由基的清除能力相當。

    圖2 乳酸菌DPPH自由基清除能力圖

    2.3.2 乳酸菌菌株的表面疏水性

    在益生菌的體外篩選過程中,菌體的疏水度反應了菌體在生物體內(nèi)的定殖能力。本研究分別對篩選到的乳酸菌菌株P(guān)2、P6、P19的表面疏水性進行測定,結(jié)果由表4可知,各種類型的乳酸菌對二甲苯具有不同的吸附量。其中,P19的疏水率大于90 %,對二甲苯有較好的吸附性;P2、P6兩種材料的疏水性均低于50%,對二甲苯的吸附性比較差。

    表4 菌株表面疏水性測定結(jié)果表

    3 討論

    本研究從四川傳統(tǒng)的發(fā)酵食物泡菜和臘肉中分離出乳酸菌,并且進行篩選,篩選出的乳酸菌單菌落形狀與陳東[17]等篩選出的乳酸菌菌落特征一致,初步認定為乳酸菌。在此基礎上,本研究對所獲取的17株通過自聚集進行篩選,結(jié)果表明,這17株乳酸菌的自聚集能力較強,均在90 %以上,說明所篩選的乳酸菌可快速繁殖、自行聚集成團,這一結(jié)果與陳孝勇[22]等在牦牛酸乳中選擇出的乳酸菌結(jié)果相似。隨后,本研究對自聚集能力較強的菌株進行胞外多糖產(chǎn)量的測定,得到P2、P6、P19菌株,并運用16S rDNA鑒定菌株,二者16S rDNA序列同源性均大于97.5%,表明二者為同種,這與陳明霞[23]等的研究結(jié)果相似。本研究最終篩選出的3株菌在NCBI數(shù)據(jù)庫中進行BLAST相似性對比。其中,P2為Leuconostoc mesenteroides、P6為Lactobacillus sakei、P19為Weissella viridescens。隨后將這3株乳酸菌進行革蘭氏染色并在顯微鏡下觀察,可以看見明顯的紫色,為革蘭氏陽性菌,形態(tài)觀察與16S rDNA鑒定結(jié)果一致。

    乳酸菌的抗氧化能力能夠幫助機體維持相對穩(wěn)定的狀態(tài),本研究表明,3株菌株的自由基清除能力均隨著發(fā)酵時間增加而增強,30 h后P2和P6有降低趨勢。由此可見,選擇適當?shù)陌l(fā)酵時間,對于提高乳酸菌的抗氧化能力具有重要作用。

    菌體的疏水度反應了菌體在生物體內(nèi)的定殖能力,本研究中,P19的疏水率大于90 %,P2、P6兩種材料的疏水性均低于50%。國內(nèi)學者從四川傳統(tǒng)干酪中篩選得到乳酸菌菌株N-4的疏水性達21.37%,篩選的降膽固醇乳酸菌 ZG2YLu05疏水性為 46.82%[25-26]。與上述研究結(jié)果相比,3株菌的優(yōu)勢明顯,可見其具有明顯的腸道定殖潛力。

    4 結(jié)語

    本研究從四川傳統(tǒng)發(fā)酵食品中共分離篩選出3株高產(chǎn)胞外多糖乳酸菌,分別是P2、P6、P19,其產(chǎn)量分別為0.140、0.124、0.128 g/L,鑒定為Leuconostoc mesenteroides、Lactobacillus sakei、Weissella viridescens。在益生特性評價中,P2的抗氧化能力較弱,但對DPPH自由基的清除能力最弱;P19和P6抗氧化能力較強,對DPPH自由基的清除能力18 h后相當,18 h前P19的清除能力最強。此外,3株菌的表面疏水性有所不同,其中,P19的疏水率高于90%,這表明3株菌有在腸道定殖的潛力。因此,本研究結(jié)果表明,3株菌均有開展益生性能與胞外多糖研究的價值,可以為后續(xù)探究奠定基礎。

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