基于腦腸菌軸研究電針與穴位埋線對食源性肥胖大鼠腸道菌群及腦腸肽的影響

錢虹宇，頡媛媛，許婧

（成都中醫(yī)藥大學，四川 成都 610075）

自1975年以來，全球肥胖癥發(fā)病率幾乎增加了兩倍，其中歐洲地區(qū)有60%的公民屬于超重或肥胖，亞太地區(qū)有40.9%的成年人患有肥胖癥［1-2］?！吨袊用駹I養(yǎng)與慢性病狀況報告（2020年）》中數(shù)據(jù)顯示，17歲以下青少年兒童的肥胖率高達29.4%，成年居民肥胖率更是超過了50%［3］?！吨袊用穹逝址乐螌＜夜沧R》指出，目前，中國是全球超重和肥胖人數(shù)最多的國家，肥胖已成為危害居民健康的嚴重公共衛(wèi)生問題［4］。因此，使用安全有效的干預措施來治療肥胖癥已成為國內外研究熱點。

近年來，腦腸菌軸（Brain-Gut-Microbiota Axis，BGMA）作為大腦和胃腸道之間雙向調節(jié)的復雜神經-內分泌網絡系統(tǒng)，與肥胖癥之間的聯(lián)系引起了研究者的廣泛關注。研究發(fā)現(xiàn)，肥胖癥的發(fā)生發(fā)展與腸道菌群和BGP中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平密切相關［5］。在前期的研究中，已有大量的研究證實電針與穴位埋線治療肥胖癥均有較好的臨床療效［6-8］。 《肥胖癥中醫(yī)診療方案專家共識》中電針與穴位埋線療法均為A級推薦［9］。電針與穴位埋線治療肥胖癥均安全有效，本研究通過觀察電針與穴位埋線對DIO大鼠體質量、Lee’s指數(shù)、攝食量、腸道菌群及血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平的影響，探討電針與穴位埋線對腸道菌群及腦腸肽的影響，為臨床治療肥胖癥提供更多的理論依據(jù)。

1 實驗材料

1.1 實驗動物

采用4周齡SPF級SD大鼠50只（雌雄各25只），體質量在60-80 g范圍內，實驗動物由成都達碩實驗動物有限公司提供【SCXK（川）2015-030】。飼養(yǎng)于成都中醫(yī)藥大學SPF級實驗動物中心【SYXK（川）2019-049】，喂養(yǎng)條件晝夜節(jié)律與濕度恒定，室溫（23±3）℃。大鼠購入后適應性喂養(yǎng)一周，期間普通飼料喂養(yǎng)，攝食飲水自由。

1.2 主要試劑與儀器

試劑：磁珠法土壤和糞便基因組DNA提取試劑盒 （天根生化科技有限公司，中國，貨號：DP712），Phusion High-Fidelity PCRMaster Mix with GC Buffer（New England Biolabs公司，美國，貨號：M0532S），GeneJET膠回收試劑盒 （Thermo Scientific公司，美國，貨號：K0692），TruSeq DNA PCR-Free Library Preparation Kit建庫試劑盒（Illumina 公 司，美 國，貨 號：FC-121-3001），PYY、GLP-1、GHRH ELISA試劑盒 （Elabscience公司，批號分別是XfiE2sd2HV、DMLFPD4414、TGK1867T8Q；貨號分別是E-EL-R0720c、E-ELR3007、E-EL-R2856c，中國），CCK ELISA試劑盒（酶免實業(yè)有限公司，貨號：MM-0034R1，中國）。

儀器：PCR儀（Bio-rad T100梯度PCR儀）；華佗牌0.25 mm×25 mm的一次性無菌針灸針（蘇州醫(yī)療用品廠有限公司，中國）；SDZ-Ⅴ型電針儀（蘇州醫(yī)療用品廠有限公司，中國）；7號一次性使用埋線針（鎮(zhèn)江高冠醫(yī)療器械有限公司，中國）；材料為PDO的4-0可吸收性外科縫線（杭州愛普醫(yī)療器械股份有限公司，中國）；臺式高速微量離心機（賽洛捷克SCILOGEX公司，型號：D3024，美國）；臺式高速冷凍離心機（賽洛捷克SCILOGEX公司，型號：D3024R，美國）；高速低溫組織研磨儀（武漢賽維爾生物科技有限公司，型號：KZ-III-F，中國）；光譜儀（伯騰BioTek公司，型號：μQuant，美國）。

2 實驗方法

2.1 食源性肥胖模型建立及分組

適應性喂養(yǎng)結束后，將50只（雌雄各25只）SD大鼠隨機分為空白組（B組）和造模組，B組8只（雌雄各4只），造模組42只 （雌雄各21只），分別給予普通飼料、高脂飼料喂養(yǎng)，均自由攝食飲水，建立食源性肥胖（Diet Induced Obesity，DIO）大鼠模型。造模成功標準為造模組大鼠體質量超出同期空白組大鼠平均體質量的20%。6周后，雄性大鼠造模成功12只，8周后，雌性大鼠造模成功12只。共24只大鼠造模成功，隨機平均分為模型組（M組）、電針組（E組）和穴位埋線組（A組），每組8只（雌雄各4只）。

2.2 干預方法

空白組：大鼠固定30 min，使用自制大鼠束縛木架固定，1次/d，連續(xù)6 d，休息1 d，共28 d。其余不做任何其他處理，給予普通飼料喂養(yǎng)。模型組：與空白組操作處理方法相同，給予高脂飼料喂養(yǎng)。電針組：大鼠固定后，參考《實驗針灸學》［10］選取“天樞”穴和“豐隆”穴。將干預穴位2 cm×2 cm面積區(qū)域的毛發(fā)剃除干凈，并使用無菌棉球沾取75.0%的醫(yī)用酒精對“天樞”穴和“豐隆”穴進行消毒。隨后將針灸針刺入3-5 mm，先以平補平瀉法行針約1 min后，連接SDZ-Ⅴ型電針治療儀，選用頻率為3-8 Hz，強度為0.5-1 mA的疏密波，觀察大鼠下肢及針柄變化，以輕微節(jié)律抽搐為度，留針30 min，1 d/次，連續(xù)6 d，休息1 d，共28 d，左右兩側穴位交替使用，給予高脂飼料喂養(yǎng)。穴位埋線組：同樣給予固定30 min，1次/d，連續(xù)6 d，休息1 d，共28 d。大鼠固定后，穴位選取與電針組相同，將治療穴位2 cm×2 cm面積區(qū)域的毛發(fā)剃除干凈，并使用無菌棉球沾取醫(yī)用碘伏兩側對“天樞”穴和“豐隆”穴進行消毒，隨后將7號一次性使用埋線針刺入，邊退針邊將4-0 PDO線推入穴位，使線體完全置于大鼠體內，針體退到皮下時快速出針并用醫(yī)用棉簽按壓針孔，1次/14 d，共28 d，給予高脂飼料喂養(yǎng)。

2.3 評價指標

2.3.1 一般指標

體質量、Lee’s指數(shù)和攝食量。實驗期間，在造模前、造模后和干預后，固定時間測量并記錄大鼠體質量和Lee’s指數(shù)。Lee’s指數(shù)＝/體長×1000，體長（cm）指從大鼠鼻尖到肛門的長度。攝食量每天進行測量，攝食量＝起始量－剩余量。

2.3.2 腸道菌群

比較各組大鼠腸道菌群ASVs分類總體情況，在門、科、屬3個不同水平上腸道菌群的相對豐度，對腸道菌群的Alpha多樣性和Beta多樣性進行比較，并分析組間群落結構差異。

2.3.3 腦腸肽

各組大鼠血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin的含量。

2.4 取材

治療第28 d結束后，搜集所有大鼠新鮮糞便樣品，置于EP管中，－80℃保存?zhèn)溆谩Ｋ写笫蠼巢唤?2 h，第29 d清晨測量并記錄所有大鼠體質量。大鼠麻醉后，腹主動脈采血5 mL，置于一次性負壓采血管內，2000 rpm，離心半徑6 cm，離心10 min，取上層血清，放置于－80℃冰箱避光保存。

2.5 腸道菌群檢測

大鼠糞便樣本采取16S rDNA擴增子測序法對腸道菌群進行檢測。

2.6 ELISA檢測

將放置于－80℃保存的血清取出，嚴格按照ELISA說明書要求檢測血清樣本中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin含量。

2.7 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

腸道菌群數(shù)據(jù)分析使用了諾禾云平臺，組間群落結構差異顯著性檢驗運用T-test檢驗。其余數(shù)據(jù)指標均為計量資料，用均平均值±標準差±s）表示，運用SPSS 27.0和Graph Pad Prism9軟件進行數(shù)據(jù)處理和繪制統(tǒng)計圖。造模前后使用獨立樣本t檢驗法，干預后多組比較使用單因素方差分析法，方差齊時，組間比較采用最小顯著性差異法（LSD）；方差不齊時，選擇Hotelling T2檢驗進行組間比較。不屬于正態(tài)分布的數(shù)據(jù)使用非參數(shù)檢驗。P＜0.05表示差異具有顯著性。

3 實驗結果

3.1 造模期間大鼠體質量、Lee’s指數(shù)變化情況

造模前，兩組大鼠之間的體質量與Lee’s指數(shù)均無差異（P＞0.05），分別給予兩組大鼠普通飼料或高脂飼料喂養(yǎng)。造模后，高脂飼料組大鼠的體質量與Lee’s指數(shù)均明顯高于普通飼料組（P＜0.05），表明高脂飼料誘導的DIO大鼠模型造模成功。見表1、表2。

表1 各組大鼠造模前后體質量比較±s，g

表1 各組大鼠造模前后體質量比較±s，g

注：與普通飼料組同時期相比，▲P＜0.05

組別 n體質量造模前造模后雄性 雌性普通飼料組 4 68.07±2.47 70.62±6.31 235.16±8.66 224.68±雄性 雌性29.97高脂飼料組 12 75.22±6.71 72.99±3.73 324.38±26.80▲ 279.69±13.76▲

表2 表2各組大鼠造模前后Lee’s指數(shù)比較±s

注：與普通飼料組同時期相比，▲P＜0.05

Lee’s組別 n 造模前造模后雄性 雌性普通飼料組 4 298.57±3.56 309.33±18.83 281.22±3.80 280.雄性 雌性78±8.78高脂飼料組 12 320.19±19.85 330.22±17.79 300.94±10.32▲ 307.04±12.99▲

3.2 電針與穴位埋線對DIO大鼠體質量、Lee’s指數(shù)的影響

通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組DIO大鼠的體質量均明顯減少（P＜0.05），Lee’s指數(shù)均顯著降低 （P＜0.01）。電針組與穴位埋線組進行比較，兩者對DIO大鼠體質量和Lee’s指數(shù)的影響無明顯差異（P＞0.05）。見圖1、圖2。

圖1 干預后各組大鼠體質量比較

圖2 干預后各組大鼠Lee’s指數(shù)比較

3.3 電針與穴位埋線對DIO大鼠攝食量的影響

通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組DIO大鼠的攝食量均顯著降低（P＜0.01）。電針組與穴位埋線組進行比較，兩者對DIO大鼠攝食量的影響無明顯差異（P＞0.05）（見圖3）。

圖3 干預后各組大鼠攝食量比較

3.4電針與穴位埋線對DIO大鼠腸道菌群的影響

3.4.1 擴增子序列變體（Amplicon Sequence Variants，ASVs）分析

通過韋恩圖（圖4）中的數(shù)據(jù)所示，可得到不同組別大鼠腸道菌群ASVs分類總體情況，空白組、模型組、電針組和穴位埋線組特有的ASVs個數(shù)分別為2553、2904、2636和1082。其中模型組特有的ASVs個數(shù)最多，穴位埋線組特有的ASVs個數(shù)最少。

圖4 不同組別大鼠腸道菌群ASVs分類總體情況韋恩圖

從圖5和圖6可以看出，在門水平上，厚壁菌門（Firmicutes）和擬桿菌門（Bacteroidetes）所占比例最大。其中具體數(shù)值為，空白組中厚壁菌門占29.08%，擬桿菌門占56.65%；模型組中厚壁菌門占56.57%，擬桿菌門占21.72%；電針組中厚壁菌門占35.08%，擬桿菌門占45.74%；穴位埋線組中厚壁菌門占36.65%，擬桿菌門占48.28%。與空白組比較，模型組腸道菌群中厚壁菌門、變形菌門（Proteobacteria）、廣古菌門（Euryarchaeota）、Desulfobacterota、放 線 菌 門 （Actinobacteria）、Campilobacterota和酸桿菌門 （Acidobacteria）相對豐度增加，擬桿菌門 （Bacteroidetes）和Patescibacteria相對豐度減少，厚壁菌門與擬桿菌門的比值（F/B）升高。通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組腸道菌群中厚壁菌門、變形菌門、廣古菌門、Desulfobacterota和放線菌門的相對豐度均減少，擬桿菌門、Patescibacteria和疣微菌門（Verrucomicrobiota）相對豐度均增加，F(xiàn)/B的比值均降低，其相對豐度逐漸趨于空白組。

圖5 門水平上物種相對豐度柱狀圖

圖6 門水平上物種豐度聚類圖

從圖7和圖8可以看出，在科水平上，與空白組比較，模型組腸道菌群中普雷沃氏菌科（Prevotellaceae）、Muribaculaceae、Saccharimonadaceae和乳桿菌科（Lactobacillaceae）相對豐度減少，毛螺球菌科（Lachnospiraceae）、Oscillospiraceae和擬桿菌科（Bacteroidaceae）相對豐度增加。通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組腸道菌群中普雷沃氏菌科、Muribaculaceae、Saccharimonadacea、Akkermansiaceae和擬桿菌科相對豐度均增加，毛螺球菌科、Oscillospiraceae和乳桿菌科相對豐度均減少，其中乳桿菌科相對豐度在模型組的基礎上進一步減少，并且電針可使琥珀菌科（Succinivibrionaceae）相對豐度增加，穴位埋線可使腸桿菌科（Enterobacteriaceae）相對豐度增加。

圖7 科水平上物種相對豐度柱狀圖

圖8 科水平上物種豐度聚類圖

從圖9和圖10可以看出，在屬水平上，與空白組比較，模型組腸道菌群中普氏菌屬（Prevotella）、Muribaculaceae、擬普雷沃氏菌屬（Alloprevotella）、Candidatus＿Saccharimonas、乳桿菌屬（Lactobacillus）和Prevotellaceae＿UCG-003相對豐度減少，擬 桿 菌 屬 （Bacteroides） 和 假 單 胞 菌 屬（Pseudomonas）相對豐度增加。通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組腸道菌群中普氏菌屬、Muribaculaceae、Candidatus＿Saccharimonas、Akkermansia、Prevotellaceae＿UCG-003和擬桿菌屬相對豐度均增加，假單胞菌屬和乳桿菌屬相對豐度均減少，其中乳桿菌屬相對豐度在模型組的基礎上進一步減少，并且電針可使厭氧螺菌屬（Anaerobiospirillum）相對豐度增加。

圖9 屬水平上物種相對豐度柱狀圖

圖10 屬水平上物種豐度聚類圖

3.4.2 Alpha多樣性分析

通過圖11-圖15，可以看出Dominance、Shannon、Simpson和Goods＿coverage指數(shù)走勢均趨于平坦，表明各組大鼠腸道菌群物種的測序覆蓋度高，數(shù)據(jù)量漸進合理，每組樣本測序數(shù)據(jù)量足夠。Dominance、Shannon和Simpson指數(shù)顯示，模型組物種的多樣性和均勻性均高于空白組，Chao1指數(shù)顯示模型組中所含的物種總數(shù)最高，表明DIO大鼠腸道菌群物種的總數(shù)、多樣性和均勻性均升高。通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組與穴位埋線組DIO大鼠腸道菌群物種的多樣性和均勻性均降低，所含的物種總數(shù)也都降低，并且穴位埋線組降低得更為明顯。表明電針與穴位埋線均能降低DIO大鼠腸道菌群物種的總數(shù)、多樣性和均勻性，并且穴位埋線的效果優(yōu)于電針。

圖11 Dominance稀釋曲線

圖12 Shannon稀釋曲線

圖13 Simpson稀釋曲線

圖14 Goods＿coverage稀釋曲線

3.4.3 Beta多樣性分析

根據(jù)PCoA圖（圖16），可以看出空白組和模型組大鼠腸道菌群結構之間存在較大的差異，有明顯的分離趨勢，電針組和穴位埋線組大鼠的腸道菌群結構逐漸趨向于空白組。表明DIO大鼠腸道菌群的結構與正常大鼠腸道菌群結構之間存在明顯的差異，通過電針與穴位埋線干預后，可使腸道菌群結構得到一定的恢復，趨于正常大鼠。

圖16 不同組別大鼠腸道菌群結構PCoA圖

3.4.4 組間群落結構差異分析

通過T-test分析可找出在門水平上不同組別之間具有顯著差異性的物種。圖17-圖20顯示，模型組與空白組、電針組和穴位埋線組之間腸道菌群結構最具有顯著差異的是厚壁菌門和擬桿菌門（P＜0.05）。模型組與空白組比較，厚壁菌門顯著增加，擬桿菌門顯著減少（P＜0.01）。電針組和穴位埋線組與模型組比較，均表現(xiàn)為擬桿菌門顯著增加（P＜0.01），電針組厚壁菌門明顯減少（P＜0.05），穴位埋線組厚壁菌門顯著減少（P＜0.01）。與空白組比較，穴位埋線組中藍細菌（Cyanobacteria）明顯減少（P＜0.05）。

圖17 模型組與空白組的T-test圖

圖18 模型組與電針組的T-test圖

圖19 模型組與穴位埋線組的T-test圖

圖20 空白組與穴位埋線組的T-test圖

3.5 電針與穴位埋線對DIO大鼠血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin的影響

圖21-圖24顯示，與空白組比較，模型組血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平均顯著下降（P＜0.01），表明DIO大鼠血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平均顯著低于正常大鼠。通過電針與穴位埋線干預后，與模型組比較，電針組和穴位埋線組血清中PYY、CCK和Ghrelin水平均顯著升高（P＜0.01），GLP-1水平明顯升高（P＜0.05）。與電針組比較，穴位埋線組血清中PYY和Ghrelin水平顯著升高（P＜0.01），血清中CCK和GLP-1水平無明顯差異（P＞0.05）。由此可見，電針與穴位埋線均能使DIO大鼠血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平升高，電針與穴位埋線對DIO大鼠血清中CCK和GLP-1水平影響無明顯差異，但在對DIO大鼠血清中PYY和Ghrelin水平影響方面，穴位埋線優(yōu)于電針，其中穴位埋線對升高DIO大鼠血清中Ghrelin水平尤為顯著。

圖21 干預后各組大鼠血清中PYY水平比較

圖22 干預后各組大鼠血清中CCK水平比較

圖23 干預后各組大鼠血清中GLP-1水平比較

圖24 干預后各組大鼠血清中Ghrelin水平比較

4 討論

中醫(yī)認為肥胖與飲食不節(jié)、先天稟賦和勞逸失度等諸多因素相關，其主要病機為“陽氣虛衰、痰濕偏盛”，病位主要在脾胃。從古至今，歷代醫(yī)家均認為痰飲與水濕是肥胖癥發(fā)生與發(fā)展的關鍵，元代朱丹溪首次提出了“肥白人多痰濕”的觀點，清代傅青主所著《傅青主女科》中寫到“婦人體質肥盛，恣食厚昧，痰濕內生”，現(xiàn)代名老中醫(yī)蒲輔周先生也認為“若食少而肥者，非強也，乃病痰也”?！疤鞓小毖ê汀柏S隆”穴均屬足陽明胃經，“天樞”穴是大腸的募穴，“豐隆”穴是胃經的絡穴，屬陽而絡陰，“一絡而通二經”可通脾胃兩經之氣血，并且“豐隆”穴還為化痰奇穴。通過分析電針與穴位埋線在臨床上治療肥胖癥所使用的穴位， “天樞”穴和 “豐隆”穴均為常用穴位［11-12］。故本實驗選用“天樞”穴和“豐隆”穴作為干預穴位。

現(xiàn)代醫(yī)學將BGMA定義為大腦和腸道細菌群落之間雙向調節(jié)的復雜神經-內分泌網絡系統(tǒng)，并參與胃腸道生理和病理過程［13］。在神經-內分泌網絡系統(tǒng)中，大腦與腸道菌群之間的相互作用可通過神經元、免疫系統(tǒng)和化學遞質的間接或直接信號通路來進行［14］。BGMA在維持中樞神經系統(tǒng)和胃腸系統(tǒng)的穩(wěn)態(tài)方面具有重要作用，腸道菌群及其代謝物所產生的信號經傳入神經元上行傳導至中樞神經系統(tǒng)，而中樞神經系統(tǒng)的信號又可以通過下行通路傳遞到胃腸，并對其生理功能產生了一定的影響，這種雙向傳導主要是通過中樞神經系統(tǒng)（Central Nervous System，CNS）、腸道神經系統(tǒng)（Enteric Nervous System，ENS）和自主神經系統(tǒng)（Autonomic Nervous System，ANS）［14］，腸道菌群及代謝產物能使ENS直接或間接的作出反應。下丘腦被稱為“飽腹感中心”或“進食中心”，主要負責調節(jié)食物攝入和能量平衡［15］。人體中最大的內分泌器官是胃腸道，它所分泌的激素能對機體的體質量產生較大的影響［16］。下丘腦與胃腸道可通過BGMA廣泛而復雜的雙向網絡系統(tǒng)，對機體的體質量起到調節(jié)作用，因此，肥胖癥與BGMA之間有著密切的相關性。

腸道菌群中F/B的比值升高，能讓人體更充分地吸收食物中的熱量，并且更容易將熱量轉化為脂肪存積于皮下［17］。Gordon教授及其團隊第一次提出腸道菌群可對脂肪儲存進行調節(jié)，并發(fā)現(xiàn)肥胖癥患者腸道菌群F/B的比值升高［17］。Turnbaugh等［18］通過研究發(fā)現(xiàn)，在成年無菌小鼠腸道中定植“肥胖微生物群”比定植“瘦微生物群”的小鼠體脂百分比和F/B的比值均顯著升高。當肥胖小鼠F/B的比值升高時，其腸道菌群酵解碳水化合物的能力也會增強，從食中獲取更多的能量。本實驗結果顯示DIO大鼠F/B的比值升高，與上述研究結果一致。本實驗結果還顯示DIO大鼠腸道菌群所含的物種總數(shù)、多樣性和均勻性均升高，與何珂［19］的研究一致，但Chatelier等［20］人的研究結果卻表明肥胖癥患者菌群豐度明顯降低，這可能與地域、檢測方法不同或樣本量不足等諸多因素有關。BGP分布于下丘腦和胃腸道，具有激素和神經遞質的雙重性質。PYY、CCK和GLP-1屬于抑食欲肽，Ghrelin屬于促食欲肽。本實驗結果顯示DIO大鼠血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平均顯著低于正常大鼠，這與之前的研究結果具有一致性［5，21-22］。血清中Ghrelin水平下降，可能與胰島素抵抗所導致的肥胖癥相關，由于肥胖增加了空腹胰島素水平，胰島素對Ghrelin分泌產生了抑制作用。有研究表明在人類血清中，Ghrelin水平與胰島素抵抗和體質量增加成反比，肥胖癥患者體內較低的Ghrelin水平可能反映了一種補償性適應機制［23］。但也有研究顯示肥胖大鼠血清中Ghrelin水平高于正常體質量大鼠［16］，關于Ghrelin水平變化還需進一步深入研究。

本次實驗結果顯示，電針與穴位埋線干預后，DIO大鼠的體質量均明顯減少（P＜0.05），Lee’s指數(shù)均顯著降低（P＜0.01），由此可見電針與穴位埋線均對肥胖癥有較好的治療效果，兩者之間無明顯差異。電針與穴位埋線均對紊亂的腸道菌群有良性調節(jié)作用，使DIO大鼠厚壁菌門相對豐度均減少，擬桿菌門相對豐度均增加，F(xiàn)/B的比降低，與司原成［24］和宋愛群［25］的研究結果一致，并且兩者之間無明顯差異。與此同時，電針與穴位埋線均能使血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平升高，這與前期的研究結果一致［22，26-28］，并且穴位埋線對DIO大鼠血清中PYY和Ghrelin水平的影響優(yōu)于電針。最終體現(xiàn)在DIO大鼠的攝食量上，電針與穴位埋線均能使DIO大鼠的攝食量顯著降低（P＜0.01），這與劉凱琪［29］和彭若軒［30］研究結果一致。

綜上所述，電針與穴位埋線均可有效降低DIO大鼠的體質量、Lee’s指數(shù)和攝食量，可能是通過對紊亂腸道菌群的良性調節(jié)，升高血清中PYY、CCK、GLP-1和Ghrelin水平，從而減少能量的攝入和吸收，達到治療肥胖癥的目的。