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    骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源外泌體通過(guò)miR-181c對(duì)脊髓損傷的修復(fù)作用研究

    2023-09-13 10:14:24建,郭
    關(guān)鍵詞:外泌體充質(zhì)來(lái)源

    許 建,郭 瑞

    脊髓損傷(spinal cord injury,SCI)是脊柱損傷重要的并發(fā)癥,可造成患者下肢功能障礙,嚴(yán)重影響了患者的生存質(zhì)量,目前尚無(wú)有效的治療方法[1]。 近年來(lái),干細(xì)胞移植治療SCI 顯示出良好效果,其中骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 (bone mesenchymal stem cells,BMSC)是最常用的成體干細(xì)胞[2]。 研究發(fā)現(xiàn),BMSC 主要通過(guò)外泌體發(fā)揮作用,如BMSC 來(lái)源的外泌體可通過(guò)靶向M2 巨噬細(xì)胞,上調(diào)SCI 小鼠脊髓組織中TGF-β 表達(dá)水平,穩(wěn)定微血管,促進(jìn)功能恢復(fù)[3]。 外泌體中攜帶多種活性物質(zhì),如微小RNA(microRNA,miRNA)、基因等;最近研究發(fā)現(xiàn),BMSC 來(lái)源的多種miRNA 可減輕SCI[4~6]。 Li C 等[7]研究發(fā)現(xiàn),BMSC 來(lái)源的miR-544 可減輕脊髓損傷。 另外Jiang Z 等[8]同樣發(fā)現(xiàn),BMSC 來(lái)源的miR-145-5p 可通過(guò)Toll 樣受體4 (Toll-like receptor 4,TLR4)/核轉(zhuǎn)錄因子κB (nuclear factors κB,NF-κB) 通路減輕SCI。 miR-181c 是最近發(fā)現(xiàn)一種miRNA,對(duì)神經(jīng)損傷具有保護(hù)作用,參與多種神經(jīng)系統(tǒng)疾病的發(fā)生、發(fā)展過(guò)程[9],但miR-181c 與SCI 的關(guān)系尚不清楚?;诖耍P者通過(guò)構(gòu)建SCI 動(dòng)物模型,觀察BMSC 來(lái)源的miR-181c 對(duì)SCI 的修復(fù)作用,希望為SCI 的防治提供新的思路。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    8 周齡雄性無(wú)特定病原體(Specific pathogen free,SPF)級(jí)Wistar 裸大鼠30 只,體質(zhì)量200~250 g。 購(gòu)自新疆維吾爾自治區(qū)維吾爾醫(yī)藥研究所,動(dòng)物使用許可證號(hào)碼SYXK(新)2021-0004。 正常進(jìn)食、飲水,夜/晝各12 h。 實(shí)驗(yàn)過(guò)程符合動(dòng)物倫理標(biāo)準(zhǔn)。

    1.1.2 主要試劑與儀器

    達(dá)氏修正伊氏培養(yǎng)液 (Dulbecco’s modification Eagle’s medium,DMEM)/F-12、Trizol(BI 公司,以色列);胎牛血清、雙抗、胰蛋白酶(BI 公司,以色列);引物序列,miR-181c mimics、miR-NC 質(zhì)粒,外泌體提取試劑盒(廣州銳博生物科技有限公司,中國(guó));lip2000( 上海吉?jiǎng)P生物科技有限公司, 中國(guó));DiI、Hoechst33342 及鬼筆環(huán)肽(Phalloidin)(上海碧云天生物有限公司,中國(guó));TUNEL 試劑盒(廣州銳博生物有限公司,中國(guó));腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)酶聯(lián)免疫吸附分析(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(R&D Systems,德國(guó));SeraMir Exosome RNA 提取試劑盒 (System BioSCIences,美國(guó));CD29-APC、CD90-熒光素5-異硫氰酸酯(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)、CD45-FITC 及CD34-藻紅蛋白(phycoerythrin,PE)(BD,美國(guó));兔抗Cleaved半胱胺酸蛋白酶第三型 (cysteine-dependent aspartate-specific proteases,Caspase 3)、Caspase 3、Bcl 關(guān)聯(lián)X 蛋白(Bcl-associated X protein,Bax)及B 細(xì)胞淋巴瘤基因-2 (B cell lymphoma gene-2,Bcl2)(Abcam,美國(guó));CD9、CD63、β-actin(Cell Signaling Technology,美國(guó))多克隆一抗、鼠抗兔單克隆二抗(Sigma 公司,美國(guó));RNA 提取、 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng) (polymerase chain reaction,PCR)試劑盒(Tarkara 公司,日本)。

    十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate -polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE) 凝膠電泳及轉(zhuǎn)移裝置 (天津儀器廠,中國(guó));曝光機(jī)(Bio-rad 公司,美國(guó));ABI 7900 PCR 儀(天津儀器廠, 中國(guó));FEI Tecnai G2 F20 透射電子顯微鏡(Thermo,德國(guó));FACSVia 流式細(xì)胞儀(BD 公司,美國(guó))。

    1.2 方法

    1.2.1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染

    取5 只大鼠用于原代BMSC 的分離、 培養(yǎng)和備用。 采用全骨髓貼壁法分離大鼠BMSC。 將大鼠麻醉后消毒,在生物安全柜中取股骨,切開后用無(wú)菌水沖洗骨髓腔收集骨髓細(xì)胞, 離心后用DMEM/F-12 懸浮。培養(yǎng)3 d 后去除未貼壁的細(xì)胞即為BMSC。當(dāng)細(xì)胞鋪滿培養(yǎng)瓶80%左右時(shí)進(jìn)行傳代。 取傳代3 次的細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    使用lip2000 轉(zhuǎn)染試劑盒將miR-181c mimc 質(zhì)粒、miR-NC 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到BMSC, 分別定義為Control組(未處理)、miR-181c 組(轉(zhuǎn)染miR-181c mimc 質(zhì)粒)及miR-NC 組(轉(zhuǎn)染miR-NC 質(zhì)粒)。繼續(xù)培養(yǎng)24 h后提取外泌體。

    1.2.2 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源外泌體的提取

    用不含外泌體的完全DMEM/F-12 培養(yǎng)3 組細(xì)胞24 h,收集上清液,于5 000×g 條件下離心30 min,保留上清液;并于5 000×g 條件下再離心30 min,收集上清液,使用外泌體提取試劑盒提取外泌體。 取4 mL外泌體懸浮液,透射電子顯微鏡下觀察外泌體形態(tài)。

    1.2.3 動(dòng)物分組、建模和處理

    將30 只大鼠均分為5 組(每組5 只):假手術(shù)組(Sham 組)、SCI 組、SCI + 外泌體組、SCI + miR-181c組和SCI+miR-NC 組。

    除Sham 組外,其他4 組均進(jìn)行SCI 建模。 具體步驟如下:使用異氟醚麻醉,背部剪毛、消毒;在第10胸椎處作約2 cm 的切口,切斷椎板、顯露脊髓;用手術(shù)刀切開脊髓,可見脊髓充血水腫,大鼠出現(xiàn)尾部痙攣及右下肢癱瘓,提示建模成功。 依次縫合肌肉和皮膚,術(shù)后給予青霉素預(yù)防感染。Sham 組大鼠僅給予第10 胸椎椎板切除術(shù)。

    造模完成后1 h,SCI+外泌體組大鼠尾靜脈注射10 μg BMSC 來(lái)源的外泌體;SCI + miR-181c 組大鼠尾靜脈注射10 μg 轉(zhuǎn)染miR-181c mimic 的BMSC 來(lái)源的外泌體;SCI+miR-NC 組大鼠尾靜脈注射10 μg轉(zhuǎn)染miR-NC 的BMSC 來(lái)源的外泌體;Sham 組、SCI組大鼠尾靜脈注射等體積的0.9%氯化鈉溶液(生理鹽水)。 2 d 注射1 次,共注射3 次。

    1.2.4 流式細(xì)胞術(shù)鑒定

    取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的BMSC 用胰酶消化,制備單細(xì)胞懸液 (1 × 106/mL), 分別加入CD29-APC、CD90-FITC、CD45-FITC 及CD34-PE 單克隆抗體,4 ℃環(huán)境下避光孵育30 min;同樣取BMSC 的外泌體,加入上述抗體和孵育條件;然后用磷酸鹽緩沖溶液洗滌3 次后再次重懸,上機(jī)檢測(cè)。

    1.2.5 脊髓神經(jīng)細(xì)胞攝取外泌體檢測(cè)

    首先使用紅色熒光染料Dil 標(biāo)記外泌體, 于1×106×g 條件下離心1 h。 無(wú)菌條件下取尾靜脈注射外泌體大鼠的脊髓組織,制備5 μm 冰凍切片,用4%多聚甲醛溶液固定15 min, 再用Hoechst33342 室溫染細(xì)胞核,鬼筆環(huán)肽(Phalloidin)室溫復(fù)染細(xì)胞骨架,用磷酸鹽緩沖溶液洗3 次,封片。 共聚焦顯微鏡觀察。

    1.2.6 脊髓損傷的行為學(xué)評(píng)分

    對(duì)5 組大鼠處理后第1 天、 第3 天、 第7 天、第14 天及第28 天進(jìn)行行為學(xué)巴索-比蒂-布雷納漢(Basso-Beattie-Bresnahan,BBB)評(píng)分。 將每組大鼠放在空曠的地方,觀察5 min,記錄SCI 的BBB 評(píng)分分值。 BBB 評(píng)分總分21 分,0 分代表肢體無(wú)運(yùn)動(dòng),21分代表肢體正常,分值越高說(shuō)明下肢運(yùn)動(dòng)功能越好。

    1.2.7 TUNEL 染色檢測(cè)細(xì)胞凋亡

    使用4 %多聚甲醛溶液固定的脊髓組織, 制備5 μm 石蠟切片,二甲苯脫蠟,乙醇梯度脫水,檸檬酸修復(fù)抗原, 根據(jù)TUNEL 試劑盒說(shuō)明書染色,3,3'-二氨基聯(lián)苯胺四鹽酸鹽(diaminobenzidine,DAB)顯色,凋亡細(xì)胞的細(xì)胞核呈現(xiàn)棕褐色或棕黃色。光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)選取5 個(gè)視野,計(jì)算每個(gè)視野陽(yáng)性細(xì)胞(細(xì)胞呈綠色)數(shù)量,取平均值。 細(xì)胞凋亡率(%)= 陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%。

    1.2.8 Western blot

    檢測(cè)脊髓組織中Cleaved Caspase 3、Caspase 3、Bax 及Bcl2 蛋白,BMSC、 外泌體中CD9、CD63 表達(dá)水平。 收集5 組脊髓組織、BMSC 及外泌體,加入細(xì)胞裂解溶液提取總蛋白,將蛋白樣品于100 ℃煮5 min。分別制備10%分離膠及5%濃縮膠,每孔中加入30 μg蛋白,將蛋白轉(zhuǎn)移到聚偏二氟乙烯(polyvinylidene difluoride,PVDF)膜上,用5%無(wú)脂牛奶室溫下封閉1 h,加入Cleaved Caspase 3(1:1 000)、Caspase 3(1:1 000)、Bax(1:1 000)、Bcl2(1:1 000)、CD9(1:1 000)、CD63(1:1 000)、β-actin(1:1 000)于4 ℃條件下過(guò)夜。 次日PVDF 膜與二抗室溫下孵育1 h, 加入發(fā)光液,曝光, 用ImageJ 軟件分析灰度值, 采用目標(biāo)蛋白/βactin 表示蛋白相對(duì)表達(dá)量。

    1.2.9 酶聯(lián)免疫吸附分析法

    用ELISA 檢測(cè)大鼠血清炎性因子TNF-α、IL-1β表達(dá)水平。 采用摘眼球方法取外周血,于1 000×g 條件下離心保留血清, 采用TNF-α、IL-1β ELISA 試劑盒檢測(cè)血清TNF-α、IL-1β 含量。

    1.2.10 實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)

    用實(shí)時(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)脊髓組織、 外泌體中miR-181c, 脊髓組織中TNF-α、IL-1β mRNA 水平。向脊髓組織中加入1 mL Trizol 試劑提取總RNA,利用SeraMir Exosome RNA 提取試劑盒提取外泌體中總RNA。 逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。 然后以cDNA 為模板進(jìn)行PCR,反應(yīng)體系(20 μL):2×SYBR Mix 10 μL,上下游引物各0.5 μL,10×cDNA 1 μL,ddH2O 8 μL。 循環(huán)條件:95 ℃15 s,55 ℃20 s,68 ℃35 s, 共40 個(gè)循環(huán),內(nèi)參為U6。 相對(duì)表達(dá)量用2-△△Ct法計(jì)算。

    miR-181c 上、 下游引物:5'-ATGGTTCGTGCGAACATTCAACCTGTCGG-3',5'-GCAGGGTCCGAGGTATTC-3'。 TNF-α 上、下游引物:5'-ATACACTGGCCCGAGGCAAC-3',5'-CCACATCTCGGATCATGCTTTC-3'。 IL-1β 上、 下游引物:5'-CCCTGAACTCAACTGTGAAATAGCA-3',5'-CCCAAGTCAA-GGGCTTGGAA-3'。 U6 上、 下游引物:5'-GCTTCGGCAGCACATATAC TAAAAT-3',5'-CGCTTCACGAATTTGCGTGTCAT-3'。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    研究數(shù)據(jù)錄入Prism 8.0 軟件。 計(jì)量資料采用均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間采用獨(dú)立樣本t 檢驗(yàn),兩組間比較采用配對(duì)樣本t 檢驗(yàn)。 P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的鑒定

    光學(xué)顯微鏡下觀察,BMSC 培養(yǎng)第1 天主要以圓形或梭形為主;培養(yǎng)第3 天,可見貼壁細(xì)胞形態(tài)較為一致,呈漩渦狀排列,逐漸融合成片;培養(yǎng)第6 天細(xì)胞形態(tài)為梭形,形態(tài)均一,呈旋渦狀。流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn),CD29、CD90、CD34 及CD45 陽(yáng)性率分別為96.21%、97.76%、0.80%及0.87%。 見圖1。

    圖1 不同培養(yǎng)時(shí)間BMSC 形態(tài)變化光學(xué)顯微鏡圖(A)和流式細(xì)胞術(shù)圖(B)Fig.1 Optical microscope(A)and flow cytometry(B)of morphological changes of BMSC at different culture time

    2.2 外泌體鑒定

    透射電子顯微鏡下觀察,BMSC 來(lái)源的外泌體呈類圓形, 直徑約50 ~100 nm。 與BMSC 表達(dá)CD9、CD63(0.11±0.01、0.16±0.02)比較,BMSC 來(lái)源的外泌體高表達(dá)CD9、CD63 (0.85 ± 0.05、0.95 ± 0.03),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=39.950、25.140,P<0.05)。 見圖2、3。

    圖2 透射電子顯微鏡下BMSC 來(lái)源的外泌體形態(tài)Fig.2 Morphology of BMSC-derived exosomes under transmission electron microscope

    圖3 BMSC 來(lái)源的外泌體表達(dá)CD9、CD63 與BMSC 比較電泳圖Fig. 3 Electrophoresis of BMSC-derived exosomes expressed CD9,CD63 and BMSC

    2.3 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源的外泌體在脊髓損傷大鼠的定位

    熒光顯微鏡發(fā)現(xiàn),經(jīng)尾靜脈注射Dil 標(biāo)記的外泌體后, 有大量發(fā)光外泌體位于神經(jīng)元的細(xì)胞核周圍,提示脊髓神經(jīng)元細(xì)胞可攝取外泌體。 見圖4。

    圖4 BMSC 來(lái)源的外泌體在SCI 大鼠定位Fig.4 Localization images of BMSC-derived exosomes in SCI rats

    2.4 外泌體及脊髓組織中miR-181c 表達(dá)水平

    Control 組與miR-NC 組外泌體中miR-181c 表達(dá)水平差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(0.33±0.05 vs 0.34±0.04)(t=0.297,P>0.05)。 與miR-NC 組比較,miR-181c組外泌體miR-181c 表達(dá)水平升高 (1.03±0.21)(t=7.813,P<0.05)。

    與Sham 組比較,SCI 組脊髓組織miR-181c 表達(dá)水平降低(0.69±0.05 vs 0.23±0.03)(t=19.100,P<0.05)。 與SCI 組比較,SCI+外泌體組脊髓組織miR-181c 表達(dá)水平升高 (0.42 ± 0.06)(t = 9.500,P <0.05)。 與SCI+miR-NC 組比較,SCI+miR-181c 組脊髓組織miR-181c 表達(dá)水平升高 (0.22 ± 0.03 vs 1.32±0.13)(t=18.440,P<0.05)。

    2.5 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源的外泌體對(duì)大鼠運(yùn)動(dòng)能力的影響

    與Sham 組比較,SCI 組大鼠第3 天、第7 天、第14天及第28 天的BBB 評(píng)分降低(P<0.05);與SCI 組比較,SCI+外泌體組大鼠第3 天、第7 天、第14 天及第28天的BBB 評(píng)分升高(P<0.05),但SCI+miR-NC 組大鼠BBB 評(píng)分基本無(wú)變化(P>0.05);與SCI+miR-NC組比較,SCI+miR-181c 組大鼠第3 天、 第7 天、第14 天及第28 天的BBB 評(píng)分升高(P<0.05)。 見表1。

    表1 5 組大鼠BBB 評(píng)分比較分Tab.1 Comparison of BBB scores of rats in 5 groupssores

    2.6 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞來(lái)源的外泌體對(duì)大鼠脊髓神經(jīng)元凋亡的影響

    與Sham 組比較,SCI 組大鼠脊髓組織中Cleaved Caspase 3/Caspase 3、Bax 表達(dá)水平升高 (0.62 ± 0.11 vs 0.11 ± 0.01,0.79 ± 0.08 vs 0.47 ± 0.02),Bcl2 表達(dá)水平降低 (0.11±0.01 vs 0.24±0.02), 脊髓組織凋亡率升高 (14.83% ±2.01% vs 4.73% ±0.12%)(t = 16.130、6.950、13.000、11.200,P < 0.05); 與SCI組比較,SCI + 外泌體組大鼠脊髓組織中Cleaved Caspase 3/Caspase 3、Bax 表達(dá)水平降低 (0.19 ± 0.06 vs 0.62±0.11,0.48±0.07 vs 0.79±0.08),Bcl2 表達(dá)水平升高(0.18±0.02),脊髓組織凋亡率降低(8.43%±1.01 %)(t = 9.045、6.080、7.000、6.326,P < 0.05)。 與SCI + miR-NC 組比較,SCI + miR-181c 組大鼠脊髓組織中Cleaved Caspase 3/Caspase 3、Bax 表達(dá)水平降低 (0.17 ± 0.03 vs 0.51 ± 0.06,0.17 ± 0.03 vs 0.75 ±0.08),Bcl2 表達(dá)水平升高(0.1±0.02 vs 0.05±0.01),脊髓組織凋亡率降低 (5.77%±0.63%vs 14.92%±1.93 %)(t = 10.540、15.180、5.000、10.080,P < 0.05)。見圖5。

    圖5 TUNEL 染色觀察各組神經(jīng)元凋亡情況(呈綠色熒光,×200)Fig.5 TUNEL staining images of neuronal apoptosis in each group(green fluorescence,×200)

    2.7 來(lái)源的外泌體對(duì)大鼠炎癥反應(yīng)的影響

    與Sham 組比較,SCI 組大鼠血清TNF-α、IL-1β含量升高(800.82 pg/mL±49.82 pg/mL vs 82.34 pg/mL ±10.24 pg/mL,594.24 pg/mL±40.72 pg/mL vs 77.24 pg/mL±5.33 pg/mL), 脊髓組織中TNF-α mRNA、IL-1β mRNA 表達(dá)水平升高 (2.89±0.23 vs 0.98±0.11,3.01±0.38 vs 1.01±0.09)(t=31.590、28.150、16.750、11.450,P<0.05); 與SCI 組比較,SCI + 外泌體組大鼠血清TNF-α、IL-1β 含量降低(400.82 pg/mL±21.00 pg/mL、273.03 pg/mL±42.93 pg/mL),脊髓組織中TNF-α mRNA、IL-1β mRNA 表達(dá)水平降低 (2.01 ± 0.24、2.01 ±0.22)(t = 16.620、12.140、5.920、5.093,P < 0.05)。 與SCI + miR-NC 組比較,SCI + miR-181c 組大鼠血清TNF-α、IL-1β 含量降低(164.22 pg/mL±26.03 pg/mL vs 806.92 pg/mL±46.92 pg/mL,110.34 pg/mL±20.91 pg/mL vs 602.84 pg/mL ± 39.84 pg/mL), 脊髓組織中TNF-α mRNA、IL-1β mRNA 表達(dá)水平降低 (1.36 ±0.38 vs 2.91 ± 0.32,1.67 ± 0.11 vs 2.99 ± 0.26)(t =26.780、24.480、6.977、10.460,P<0.05)。

    3 討論

    近年來(lái), 隨著交通事故的頻發(fā),SCI 的發(fā)病率也隨之升高,該疾病具有較高致殘率,給患者家庭造成巨大負(fù)擔(dān),因此盡早修復(fù)SCI 至關(guān)重要。 近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),神經(jīng)元細(xì)胞炎性反應(yīng)、凋亡在SCI 中發(fā)揮至關(guān)重要的作用[10,11]。 因此,如何減輕脊髓炎癥反應(yīng)、抑制神經(jīng)元的凋亡成為治療的關(guān)鍵。

    BMSC 是一種多潛能干細(xì)胞, 具有采集簡(jiǎn)單、排斥反應(yīng)小及多向分化的優(yōu)點(diǎn),已經(jīng)廣泛應(yīng)用于治療神經(jīng)損傷疾病[12]。 Jia Y 等[13]研究發(fā)現(xiàn),將BMSC 移植到SCI 部位,可減輕局部炎癥反應(yīng)、減輕組織水腫、抑制神經(jīng)元細(xì)胞凋亡。Khodabandeh Z 等[14]動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,SCI 模型移植BMSC 后可增加局部神經(jīng)元數(shù)量,減少壞死空洞面積。上述研究表明BMSC 可促進(jìn)損傷的脊髓修復(fù),但具體機(jī)制尚不清楚。 外泌體是由細(xì)胞分泌的直徑大約20~120 nm 的細(xì)胞外囊泡,在細(xì)胞間信號(hào)傳遞中發(fā)揮重要作用[15]。普遍認(rèn)為,BMSC 來(lái)源外泌體可代替BMSC 發(fā)揮其治療功能,同時(shí)外泌體安全性更高、免疫排斥作用更低。 筆者研究從BMSC 中提取了外泌體, 投射電子顯微鏡觀察到外泌體直徑在20 ~ 120 nm, 高表達(dá)外泌體特定的標(biāo)志物CD63、CD9,提示成功提取了BMSC 中的外泌體。

    目前BMSC 來(lái)源的外泌體已經(jīng)應(yīng)用于多種疾病的治療,其對(duì)SCI 的保護(hù)作用也得到了普遍認(rèn)可。 研究發(fā)現(xiàn),BMSC 可抑制損傷脊髓組織中神經(jīng)元的凋亡,減輕炎癥反應(yīng)[16]。 Fan L 等[17]研究結(jié)果表明,BMSC來(lái)源的外泌體可通過(guò)TLR4/MyD88/NF-κB 通路抑制神經(jīng)元細(xì)胞凋亡、減輕炎癥反應(yīng)。 筆者研究通過(guò)尾靜脈將BMSC 來(lái)源的外泌體注射到SCI 模型大鼠體內(nèi),可在脊髓神經(jīng)元內(nèi)檢測(cè)到熒光標(biāo)記的外泌體,說(shuō)明神經(jīng)元是BMSC 來(lái)源的外泌體的主要靶細(xì)胞。筆者進(jìn)一步觀察了BMSC 來(lái)源的外泌體對(duì)SCI 的修復(fù)作用,結(jié)果表明, 移植外泌體的SCI 大鼠BBB 評(píng)分高于SCI模型大鼠,提示BMSC 來(lái)源的外泌體可改善大鼠的下肢運(yùn)動(dòng)功能障礙。 進(jìn)一步研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),外泌體移植的大鼠脊髓組織中凋亡細(xì)胞更少,降低了凋亡相關(guān)蛋白的表達(dá), 同時(shí)還可以降低炎性因子TNF-α、IL-1β的表達(dá),提示BMSC 來(lái)源的外泌體可抑制神經(jīng)元細(xì)胞凋亡,降低炎癥反應(yīng)。 上述結(jié)果與其他人研究結(jié)果基本一致[18],再次驗(yàn)證了BMSC 來(lái)源的外泌體可通過(guò)抑制凋亡、減輕炎癥反應(yīng)發(fā)揮修復(fù)脊髓的作用。

    在觀察到BMSC 來(lái)源的外泌體對(duì)SCI 的修復(fù)作用后, 筆者試圖探索外泌體中的何種物質(zhì)發(fā)揮作用。外泌體中包含多種活性成分,有學(xué)者在BMSC 來(lái)源的外泌體中分離出多種miRNAs[19,20]。 外泌體中的miRNAs 可被細(xì)胞吸收發(fā)揮轉(zhuǎn)移和介導(dǎo)細(xì)胞間通信的媒介。 近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn),多種miRNAs 參與了SCI 的修復(fù)過(guò)程,如miR-181c[21,22]。 研究發(fā)現(xiàn),miR-181c 在多種退行性疾病腦海馬組織中低表達(dá), 提示低表達(dá)miR-181c 可導(dǎo)致神經(jīng)元損傷[23]。在細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中,miR-181c 過(guò)表達(dá)可抑制氧-糖剝奪的BV2 小膠質(zhì)細(xì)胞炎性因子IL-1β、TNF-α 的表達(dá)[24]。 此外,miR-181c 可抑制局灶性腦缺血再灌注損傷小鼠皮層神經(jīng)細(xì)胞的凋亡[25]。但外泌體中miR-181c 是否參與了SCI 的神經(jīng)元凋亡、炎癥反應(yīng)尚不清楚。 筆者研究對(duì)此進(jìn)行了觀察,結(jié)果發(fā)現(xiàn),SCI 模型大鼠脊髓組織中低表達(dá)miR-181c,在注射過(guò)表達(dá)miR-181c 的BMSC 外泌體后大鼠的BBB 評(píng)分升高,炎性因子水平降低,且脊髓神經(jīng)細(xì)胞凋亡降低, 提示BMSC 來(lái)源的外泌體可能通過(guò)miR-181c 實(shí)現(xiàn)對(duì)脊髓的修復(fù)作用。

    但筆者研究存在一定的局限性。 首先,miR-181c在SCI 中的作用有待臨床樣本中驗(yàn)證。 其次,miR-181c 修復(fù)SCI 的機(jī)制需要細(xì)胞實(shí)驗(yàn)探索。

    總之,BMSC 來(lái)源的外泌體攜帶的高水平miR-181c 可修復(fù)SCI,減少脊髓炎癥反應(yīng),抑制神經(jīng)元凋亡。

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