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    玉米ZmGST基因的克隆及表達特性分析

    2023-09-02 07:25:16王可欣郭昭陽殷宇航陳勝忠宋希云趙美愛
    華北農(nóng)學(xué)報 2023年4期
    關(guān)鍵詞:谷胱甘肽克隆玉米

    王可欣,郭昭陽,殷宇航,陳勝忠,宋希云,趙美愛,

    (1.青島市主要農(nóng)作物種質(zhì)創(chuàng)新與應(yīng)用重點實驗室,青島農(nóng)業(yè)大學(xué) 農(nóng)學(xué)院,山東 青島 266109;2.青島農(nóng)業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,山東 青島 266109)

    我國作為傳統(tǒng)農(nóng)業(yè)大國,人口基數(shù)大,糧食問題一直備受關(guān)注。玉米(ZeamaysL.)是我國第一大糧食作物,在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)和糧食安全中發(fā)揮重要作用,但在生長過程中經(jīng)常遭遇干旱、鹽堿、高溫、低溫等非生物脅迫,導(dǎo)致減產(chǎn)和品質(zhì)的降低[1],其中鹽堿地土壤所含的鹽分嚴(yán)重影響作物的正常生長。我國鹽堿地的面積約為9 913萬hm2,開發(fā)利用價值巨大,已被開墾利用的鹽堿地還未達到其總面積的五分之一[2]。合理利用鹽堿地不僅可以緩解我國地少人多的局面,還可以在很大程度上緩解糧食供不應(yīng)求的現(xiàn)狀。鹽堿地治理難度較大,進行耐鹽基因的挖掘和耐鹽堿新品種的培育是可行的治理措施之一。

    谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(Glutathione S-transferases,GSTs)是一個古老且具有多種作用的蛋白質(zhì)超家族[3],可以調(diào)控植物的生長發(fā)育并在初生代謝、次生代謝、細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)以及對抗生物和非生物脅迫[3]等生物學(xué)過程中發(fā)揮重要作用[4]。GSTs分為4個主要的蛋白質(zhì)家族,細胞質(zhì)GSTs、線粒體GSTs、微粒體GSTs和細菌磷霉素抗性蛋白,其中細胞質(zhì)GST家族是最豐富的[5]。在植物中,GST可分為6 類,包括Phi(F)、Tau(U)、Lambda(L)、Theta(T)、Zeta(Z)和脫氫抗壞血酸還原酶(Dehydroascorbate reductases,DHARs),其中Phi(F)和Tau(U)是最大植物特異性和高度應(yīng)激誘導(dǎo)的谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶基因種類[6]。根據(jù) GST 蛋白序列構(gòu)建的隱馬爾可夫模型,鑒定出玉米基因組中一共含有37個ZmGST基因,可分為U、F、Z 3種[7]。U型 GST基因的表達與細胞分裂素、生長素等激素有關(guān),對植物的生長發(fā)育起著調(diào)節(jié)作用[8]。

    GST基因在逆境脅迫中扮演著重要角色,包括調(diào)控植物非生物脅迫過程[9]。如AtGSTU17通過作為脅迫介導(dǎo)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的負成分在干旱和鹽脅迫的適應(yīng)性響應(yīng)中發(fā)揮作用[10],在煙草幼苗中過表達GST基因,增加了谷胱甘肽依賴性的過氧化物的清除和谷胱甘肽、抗壞血酸代謝的改變,從而減少了氧化損傷[11]。番茄相關(guān)GST基因LeGSTU2在根和花中表達,進行擬南芥異源驗證獲取的轉(zhuǎn)基因植物對NaCl和甘露醇誘導(dǎo)的鹽和滲透脅迫的抵抗力增強[12]。玉米ZmGST23基因的表達顯著受干旱、鹽、低溫等非生物脅迫的誘導(dǎo)[4]。

    GST的作用是通過與谷胱甘肽的結(jié)合來解除有毒物質(zhì),減輕氧化應(yīng)激反應(yīng)[13-14]。鹽脅迫會導(dǎo)致植物失水使?jié)B透壓改變,體內(nèi)活性氧代謝系統(tǒng)會出現(xiàn)紊亂現(xiàn)象,并產(chǎn)生大量活性氧,從而損傷植物質(zhì)膜和其他細胞組分,進而影響植物的生長發(fā)育[15]。GST基因在植物的抗氧化過程中具有十分重要的作用[16],于是推測鹽脅迫下過量表達玉米ZmGST基因能在一定程度上減緩對植物的損傷。GST基因除了抗逆相關(guān)功能,還有一些其他生物作用,主要包括清除體內(nèi)的毒性代謝產(chǎn)物[17-18]并且參與到信號傳遞中[19]。功能多樣化的GST在研究基因家族進化方面具有重要意義,并為研究其在植物發(fā)育和對環(huán)境信號的響應(yīng)中的作用開辟了途徑[20]。

    本試驗對ZmGST進行克隆和生物信息學(xué)分析。通過實時熒光定量PCR探究ZmGST組織特異性表達以及干旱和鹽脅迫下的基因表達量。ZmGST轉(zhuǎn)入原核載體pET28a并通過pET28a-ZmGST大腸桿菌研究該基因?qū)}脅迫、干旱非生物脅迫的作用,為該基因轉(zhuǎn)入真核表達載體提供參考。

    1 材料和方法

    1.1 試驗材料

    本試驗使用的玉米自交系CA66由玉米分子育種實驗室提供。選取飽滿的玉米種子種植于營養(yǎng)土中,三葉期時取樣。

    脅迫處理:使用0.2 mol/L的NaCl以及20% PEG6000處理CA66三葉期玉米,并對根進行分時段取樣,分別是0,12,24,36 h,于-80 ℃保存。每個試驗組3個重復(fù)。

    1.2 試驗方法

    1.2.1ZmGST的克隆和原核表達載體構(gòu)建 根據(jù)NCBI(National Center for Biotechnology Information (nih.gov))中參考序列的CDS全長進行特異性引物設(shè)計,見表1引物1。以根的cDNA作為模板進行PCR擴增后連接中間載體pMD19-T,將菌液PCR以及雙酶切驗證后檢測得到的陽性克隆送青島擎科生物公司測序,測序正確的菌液提取質(zhì)粒pMD19-T-ZmGST后存于-80 ℃。pET28a菌株由本實驗室保存,使用pMD19-T-ZmGST質(zhì)粒作為模板進行PCR擴增,引物見表1引物2,使用T4連接酶配置pET28a-ZmGST連接體系。將菌液PCR驗證后檢測得到的陽性克隆送青島擎科生物公司測序。具體步驟參照參考文獻[21]。

    表1 玉米ZmGST基因所用引物

    1.2.2 ZmGST蛋白特性分析 通過NCBI網(wǎng)站的Blast功能,分析該基因的CD-Search保守區(qū)。ProtParam軟件進行生物信息學(xué)分析,ProtScale在線軟件對蛋白質(zhì)序列進行親水性、疏水性的預(yù)測分析,TMHMM 2.0對蛋白質(zhì)序列跨膜結(jié)構(gòu)預(yù)測分析,NetPhos 3.1軟件分析ZmGST蛋白的磷酸化位點,SingalP 4.1預(yù)測信號肽,Psort Prediction進行亞細胞定位預(yù)測,SoPMA分析ZmGST蛋白二級結(jié)構(gòu),SWISS-MODEL分析三級結(jié)構(gòu),PlantCARE分析啟動子區(qū)域元件。

    1.2.3ZmGST基因的組織特異性表達分析 玉米自交系CA66正常生長至三葉期,取根、莖、葉樣品至液氮中保存,根據(jù)TaKaRa試劑盒提取RNA,利用超微量分光光度計檢測RNA濃度。反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,通過實時熒光定量PCR(qRT-PCR)進行組織特異性表達分析。引物設(shè)計見表1引物3,以玉米Actin作為內(nèi)參基因,基因號為LOC100282267。

    1.2.4 實時熒光定量PCR 將0.2 mol/L的NaCl以及20% PEG6000處理后的玉米取樣后進行實時熒光定量PCR。反應(yīng)程序為:預(yù)變性95 ℃ 3 min;變性95 ℃ 10 s,退火55 ℃ 30 s,延伸72 ℃ 30 s,循環(huán)數(shù)35。釆用2-ΔΔCt相對定量的分析方法進行數(shù)據(jù)分析,使用SPSS軟件進行數(shù)據(jù)差異性分析。

    1.2.5 pET28a-ZmGST重組大腸桿菌的鹽、干旱脅迫處理 鹽脅迫:配置NaCl濃度為0.6,0.8,1.0 mol/L的LB液體培養(yǎng)基并在高溫滅菌后,將pET28a空載和pET28a-ZmGST的大腸桿菌分別在超凈工作臺中接種至上述3種濃度的NaCl培養(yǎng)基中,37 ℃搖床中200 r/min振蕩培養(yǎng),每隔1 h取樣測定吸光度并進行處理與分析。

    干旱脅迫:本試驗使用PEG6000模擬植物干旱條件,配置PEG6000濃度為5%,10%,15%的LB液體培養(yǎng)基,后續(xù)試驗步驟同鹽脅迫。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶ZmGST的克隆

    以玉米CA66根、莖、葉cDNA為模板進行PCR擴增可知,ZmGST在根、莖、葉中均能擴增(圖1-A),條帶大小為384 bp。連接PMD19-T載體后進行菌液PCR鑒定(圖1-B),菌液擴增片段大小為384 bp,雙酶切驗證在指定位置出現(xiàn)線性化DNA條帶(圖1-C)。測序結(jié)果與已公布B73序列堿基相似性為99.65%,氨基酸序列相似度為98.43%。pMD19-T-ZmGST連接pET28a原核表達載體進行菌液PCR驗證得到正確條帶(圖1-D),測序與克隆序列比對相似度為100%。

    2.2 ZmGST蛋白質(zhì)特性分析

    2.2.1 ZmGST蛋白質(zhì)的理化特性ZmGST堿基序列以及蛋白質(zhì)如圖2-A所示,編碼384 個核苷酸,127 個氨基酸。使用ProtParam軟件進行生物信息學(xué)預(yù)測分析,表明ZmGST編碼的蛋白質(zhì)分子式為C654H1003N175O189S4,相對分子量為14.47 ku,理論等電點5.06,總負電荷殘基數(shù)(Asp+Glu)為20,正電荷殘基總數(shù)(Arg+Lys)為16,不穩(wěn)定指數(shù)為46.75,屬于不穩(wěn)定蛋白質(zhì)。通過NCBI網(wǎng)站的Blast功能,進行該基因的CD-Search保守區(qū)分析(圖2-B),發(fā)現(xiàn)克隆的CDS蛋白內(nèi)存在一個GST_C結(jié)構(gòu)域,屬于Tau(U)這一分支,是植物抗氧化系統(tǒng)的重要成員,可能在逆境響應(yīng)等生物學(xué)過程中發(fā)揮重要作用[3],該基因包含2個外顯子(圖2-C)。

    A.核苷酸及氨基酸序列;B.保守域分析;C.ZmGST基因結(jié)構(gòu)分析。

    利用 ProtScale在線軟件對ZmGST蛋白質(zhì)序列進行親水性、疏水性預(yù)測分析,親水性蛋白多于疏水性蛋白,該蛋白屬于親水性蛋白(圖3-A)。TMHMM 2.0對蛋白質(zhì)序列跨膜結(jié)構(gòu)預(yù)測分析,其氨基酸序列中不存在跨膜結(jié)構(gòu)(圖3-B),可直接進行原核表達的驗證。采用NetPhos 3.1修飾位點進行分析發(fā)現(xiàn),ZmGST存在12 個磷酸化修飾位點(圖3-C),其中Thr(蘇氨酸)有4 個、Ser(絲氨酸)4 個、Tyr(酪氨酸)4 個,磷酸化修飾位點較為均等,可能與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、生長發(fā)育等有關(guān)。使用SignalP 4.1對ZmGST蛋白進行信號肽預(yù)測分析(圖3-D),未發(fā)現(xiàn)有信號肽,為非分泌型蛋白。Psort Prediction進行亞細胞定位預(yù)測,定位在細胞核里的可能性最大為34.8%,胞質(zhì)為30.4%,線粒體為21.7%,最小的是細胞外(包括細胞壁)是4.3%。

    A.疏水親水分析;B.跨膜結(jié)構(gòu)分析;C.磷酸化預(yù)測;D.信號肽預(yù)測。

    2.2.2 ZmGST蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測 通過SoPMA分析ZmGST蛋白二級結(jié)構(gòu),如圖4-A所示,二級結(jié)構(gòu)依次為α螺旋(藍色)占62.2%、β-折疊(綠色)占7.09%、無規(guī)則卷曲(紫色)占17.32%和延伸鏈(紅色)占13.39%。再通過SWISS-MODEL進一步分析三級結(jié)構(gòu)如圖4-B所示,發(fā)現(xiàn)同樣存在多個α螺旋與無規(guī)則卷曲,與二級結(jié)構(gòu)分析一致,α螺旋為主要元件。

    圖4 ZmGST蛋白二級結(jié)構(gòu)直觀圖與空間結(jié)構(gòu)

    2.2.3ZmGST以及玉米GST家族系統(tǒng)進化樹 為了解ZmGST蛋白與不同物種的親緣關(guān)系,將獲得的氨基酸序列在NCBI上進行Protein Blast,得到的序列進行系統(tǒng)進化樹分析(圖5),該基因ZmGST與高粱(Sorghumbicolor)的親緣關(guān)系最近。對玉米GST基因家族進行系統(tǒng)進化樹分析,利用李曉玉等[7]對玉米GST家族的建立隱馬爾可夫模型(Hidden markov model,HMM)的方法分析,將玉米GST基因根據(jù)序列相似性分為U型(藍色區(qū)域)、F型(紫色區(qū)域)、Z型(橙色區(qū)域)三類(圖6)。利用DNAMAN與這些序列對比發(fā)現(xiàn)ZmGSTU14與克隆的ZmGST基因的全長氨基酸相似度最高為82.46%(紅色),屬于U型。

    圖5 ZmGST的系統(tǒng)進化樹

    圖6 玉米GST家族系統(tǒng)進化樹

    2.2.4ZmGST基因啟動子分析 利用PlantCARE對啟動子區(qū)域進行元件分析,ZmGST基因啟動子區(qū)(圖7)含有多個響應(yīng)逆境及植物激素的作用元件,包括LTR參與低溫反應(yīng)原件、TC-rich repeats參與防御和應(yīng)激反應(yīng)元件、ABRE與脫落酸反應(yīng)相關(guān)元件以及G-box光響應(yīng)元件,推測基因被鹽脅迫誘導(dǎo)可能與TC-rich repeats元件相關(guān)。

    圖7 ZmGST啟動子元件分析

    2.3 ZmGST的組織特異性表達分析

    實時熒光定量PCR對玉米不同組織(根、莖、葉)中的基因表達特異性分析結(jié)果顯示,ZmGST在不同組織中均有表達,相對表達量在根中最高,其次為葉和莖(圖8-A)。根部表達量約為莖的5 倍,葉的2.5倍,說明ZmGST主要在根中發(fā)揮作用。脅迫處理后的相對表達量結(jié)果顯示(圖8-B),在模擬干旱條件下ZmGST基因下調(diào)表達,12~36 h表達量降低,在24 h最低。鹽處理后該基因的表達量呈上升趨勢,在24 h的基因表達量是0 h的3倍。因此,推測ZmGST在干旱脅迫時受到抑制,在鹽脅迫處理時被誘導(dǎo),表明該基因可能對這兩個逆境脅迫存在不同作用。

    A.ZmGST的組織特異性分析;B.ZmGST 受到脅迫后的表達量分析(0,12,24,36 h)。不同小寫字母表示顯著差異(P<0.05)。

    2.4 ZmGST基因耐鹽功能分析

    成功構(gòu)建重組大腸桿菌DH5α(pET28a-ZmGST)后,對pET28a-ZmGST以及pET28a進行不同濃度鹽脅迫,測得平均OD600如圖9所示,轉(zhuǎn)入了重組質(zhì)粒pET28a-ZmGST的菌體生長情況高于轉(zhuǎn)入空載體pET28a的菌體,說明對照菌體pET28a在0.6,0.8,1.0 mol/L鹽濃度培養(yǎng)基中菌體的生長明顯受到了抑制,而轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒pET28a-ZmGST的大腸桿菌菌體在0.6,0.8,1.0 mol/L鹽濃度的培養(yǎng)基中均能正常生長,ZmGST基因在原核水平內(nèi)可能對鹽脅迫有一定的抗性,與鹽脅迫玉米后該基因上調(diào)表達結(jié)果一致。

    圖9 鹽處理后pET28a-ZmGST菌株、pET28a菌株生長曲線圖

    2.5 ZmGST基因耐旱功能分析

    成功構(gòu)建重組大腸桿菌DH5α(pET28a-ZmGST)后,對pET28a-ZmGST以及pET28a進行PEG6000的不同濃度干旱脅迫,測得平均OD600如圖10所示,轉(zhuǎn)入了重組質(zhì)粒pET28a-ZmGST的菌體在5%,10%中與空載體pET28a的菌體生長情況一致,均明顯受到抑制,在15%PEG6000中高于空載菌體生長狀況,但趨勢較為相似,推測該基因?qū)Ω珊得舾小?/p>

    圖10 干旱處理后的pET28a-ZmGST菌株、pET28a菌株生長曲線圖

    3 結(jié)論與討論

    谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶家族成員眾多,存在于各種植物中,在擬南芥[10]、水稻[22]、小麥[23]、玉米[24]等均有研究。在GST家族中,植物特有的是Phi、Tau、Lambda和DHAR類,其中U型是二聚體的,可以催化各種生物的結(jié)合,在除草劑中具有選擇性解毒的作用[25]。U型是玉米谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶成員最多的一類。同樣地,本試驗克隆了U型的玉米GST類基因中的一種,通過生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),ZmGST蛋白相對分子量是14.47 ku,為不穩(wěn)定的親水蛋白,未發(fā)現(xiàn)信號肽,不存在跨膜結(jié)構(gòu)域,同樣符合該基因在細胞核的預(yù)測。通過分析其表達量,利用ePlant網(wǎng)站得到該基因在根中表達水平最大值約是在葉中表達水平最大值的100 倍且表達最大值在根毛附近,無根毛區(qū)域表達量較根毛區(qū)域表達量相差較大。表達差異結(jié)果與實時熒光定量結(jié)果相符,在根中表達量最大。系統(tǒng)進化樹分析與高粱的親緣關(guān)系最近,在玉米GST家族中與ZmGSTU14相似度最高。

    U類GST基因在逆境脅迫中發(fā)揮作用。水稻GST基因OsGSTU3和OsGSTU4編碼Tau類谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶,響應(yīng)水稻根系缺氧脅迫誘導(dǎo)以及鹽脅迫[16]。GST還通過在各種生物或非生物脅迫下過量表達,來增強植物對逆境的抵抗力,是抗氧化防御系統(tǒng)中重要的酶系[26-28]。如大豆GmGSTU2是Tau類谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶家族基因,通過增強谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶的活性介導(dǎo)活性氧和谷胱甘肽的清除,從而增強植物對鹽脅迫的耐受性[29]。柳樹ThGSTZ1的過表達通過增強清除活性氧的能力來改善干旱和耐鹽性[30]。這些與ZmGST響應(yīng)鹽脅迫的功能類似,但是其作用機理仍需探究,可見GST基因研究具有重要意義。

    玉米在生長過程經(jīng)常會遇到干旱、鹽、低溫等非生物脅迫,可引起玉米不同程度的脫水,從而引起滲透脅迫,使得ABA濃度急劇上升,從而誘發(fā)大量的活性氧(ROS)的生成。ROS還可以起到誘導(dǎo)植物抵抗逆境的作用,但過量的ROS會使生物大分子如膜脂、核酸、蛋白質(zhì)等發(fā)生一定損傷,從而引起二次脅迫[31]。GST的主要功能是通過促進親電性底物與GSH發(fā)生反應(yīng),從而實現(xiàn)對活性氧和外來物質(zhì)的清除,谷胱甘肽硫轉(zhuǎn)酶能使GSH的巰基與某些親電子性化合物相結(jié)合,對DNA和某些蛋白的損害有一定的保護作用,GST能將疏水性較強的外源性與內(nèi)源性的代謝物進行代謝并提高它們的極性,最后排出體外[27],從而保證植物正常的生長發(fā)育。因此推斷GST作為一類與活性氧有關(guān)的酶,可能與ROS相關(guān)。

    為了研究ZmGST基因是否對脅迫產(chǎn)生響應(yīng),熒光定量結(jié)果顯示在鹽脅迫條件下該基因表達上調(diào)。通過原核表達試驗證明,重組質(zhì)粒pET28a-ZmGST的大腸桿菌菌體在不同鹽濃度的培養(yǎng)基中均能正常生長,因此,推測該基因可能與耐鹽作用相關(guān),也可能與ROS相關(guān)。進一步探究干旱敏感作用機理對于深入研究ZmGST基因功能和真核生物中的作用具有參考價值,同時也揭示了該基因在玉米逆境脅迫下反應(yīng)機制至關(guān)重要。

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