短鏈伯醇氧化酶的研究進(jìn)展

王首豐,叢文杰,曹昕莼,陸婷,王明軒,周化嵐,張建國(guó)

(上海理工大學(xué) 健康科學(xué)與工程學(xué)院,上海,200093)

短鏈伯醇氧化酶(short-chain primary alcohol oxidase,SPAOX,EC 1.1.3.13)是一種依賴(lài)黃素腺嘌呤核苷酸(Flavin adenine dinucleotide,FAD)氧化短鏈伯醇(C1～C8)生成相應(yīng)的醛和過(guò)氧化氫的氧化還原酶。SPAOX最早由JANSSEN等[1]于1968年從Basidiomycete(多孔菌科擔(dān)子菌)的菌絲體中分離出來(lái)。近年來(lái),SPAOX在甲基營(yíng)養(yǎng)型微生物等多種真核生物中被發(fā)現(xiàn)。而且,SPAOX已經(jīng)較為廣泛地應(yīng)用于醇類(lèi)分析、生物轉(zhuǎn)化等場(chǎng)景中。與SPAOX相關(guān)的研究逐漸得到眾多學(xué)者的關(guān)注,取得一定進(jìn)展的同時(shí)具有廣泛的應(yīng)用前景。本文對(duì)比了不同生物來(lái)源的SPAOX,闡述了其催化機(jī)制,總結(jié)了SPAOX性質(zhì)的優(yōu)缺點(diǎn),并對(duì)提高SPAOX穩(wěn)定性的研究進(jìn)行了展望,以期為其進(jìn)一步的應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。

1 SPAOX的來(lái)源和催化機(jī)制

SPAOX已經(jīng)在博乙丁假絲酵母(Candida boidinii)[2]、漢遜酵母(Hansenulapolymorpha[3]、Ogataeaangusta[4])、法夫駒形氏酵母(Komagataellaphaffii)[5-6]、畢赤酵母(Pichiasp.)[7]等甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母中發(fā)現(xiàn),也在土曲霉(Aspergillusterreus)[8-9]、黃孢原毛平革菌(Phanerochaetechrysosporium)[10]等絲狀真菌中存在。利用軟件MEGA7[11]對(duì)SPAOX的基因進(jìn)行進(jìn)化樹(shù)分析(圖1),表明SPAOX有2個(gè)分支;其中上分支第一部分中的SPAOX主要來(lái)源于甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母菌、曲霉以及癌腫病菌(Lachnellulawillkommii)、特異青霉(Penicilliumchrysosporium)、立枯絲核菌(Rhizoctoniasolani)等真菌;上分支第二部分則來(lái)源于褐孢霉(Fulviafulva)、密粘褶菌(Gloeophyllumtrabeum)、朱紅栓菌(Trametescinnabarina)、牛樟芝(Taiwanofunguscamphoratus)、原毛平革菌(Phanerochaetesordida)等真菌。而下分支中的SPAOX主要來(lái)源于短梗霉(Aureobasidiumsp.)、擔(dān)子菌(Basidiomycete)、炭疽病菌(Colletotrichumchlorophyti)、裂褶菌(Schizophyllumcommune)、環(huán)紅酵母(Rhodotorulatoruloides)、炭角菌(Xylariomycetidaesp.)等真菌。兩個(gè)分支中微生物種類(lèi)差異較大。例如,上分支中漢遜酵母、博乙丁假絲酵母、法夫駒形氏酵母等甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母菌中SPAOX序列的分支置信度達(dá)100。其他真菌類(lèi),例如青霉、曲霉、原毛平革菌、牛樟芝、擔(dān)子菌等的置信度則為13～99。

圖1 短鏈伯醇氧化酶基因的進(jìn)化樹(shù)

因?yàn)镾PAOX在甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母中參與甲醇代謝,將甲醇氧化成甲醛和過(guò)氧化氫,所以很多關(guān)于SPAOX的研究以甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母中的SPAOX作為研究對(duì)象來(lái)開(kāi)展[12-13]。甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母新生成的SPAOX依靠其過(guò)氧化物酶體靶向信號(hào)(peroxisome targeting signal,PTS),被運(yùn)輸?shù)竭^(guò)氧化物酶體中發(fā)揮作用。SPAOX單亞基的分子質(zhì)量約為65 k～80 kDa,SPAOX的活性功能體是含有8個(gè)FAD輔因子和8個(gè)亞基的同源八聚體,分子質(zhì)量約500～700 kDa。SPAOX屬于葡萄糖-甲醇-膽堿(glucose-methanol-choline,GMC)家族氧化還原酶,由FAD結(jié)合域和底物結(jié)合域組成。GMC家族氧化還原酶的FAD結(jié)合域的氨基酸序列保守,而由于不同酶的最適底物不同,使得底物結(jié)合域的氨基酸序列差異較大[14]。因?yàn)镚MC氧化還原酶的催化活性中心(組氨酸/組氨酸或組氨酸/天冬酰胺)高度保守,所以其催化機(jī)制相似[15]。SPAOX的催化過(guò)程分為還原半反應(yīng)(還原FAD,以及醇類(lèi)電子供體底物的氧化)和氧化半反應(yīng)(FADH2被氧化形成H2O2)[16]。其中催化活性中心進(jìn)行還原半反應(yīng),H567與醇底物結(jié)合并在催化過(guò)程中攜帶正電荷,由N616催化醇底物并穩(wěn)定醇鹽的負(fù)電荷[17]。結(jié)合口袋的W566和F98的芳香族側(cè)鏈限制了底物分子的可用空間,使其最適底物為短鏈伯醇[3,18]。還原半反應(yīng)中底物的氫轉(zhuǎn)移到FAD的異四氧嘧啶上,FAD被還原成FADH2。另一部分氧化半反應(yīng)的FAD結(jié)合域E38與FAD的腺嘌呤基團(tuán)結(jié)合,N97與黃素連接環(huán)相互作用,FADH2被氧重新氧化成FAD,并釋放H2O2[5, 17]。不同于乙醇脫氫酶(alcohol dehydrogenase,ADH,EC 1.1.1.1)在催化反應(yīng)中不斷消耗輔酶煙酰胺腺嘌呤二核苷酸,SPAOX循環(huán)利用FAD是一大優(yōu)勢(shì)[19]。

表1總結(jié)了GMC氧化還原酶家族常見(jiàn)酶的單體分子質(zhì)量、結(jié)構(gòu)、底物結(jié)合口袋等性質(zhì)。其中,只有SPAOX是八聚體,其他家族中的酶都是單體或二聚體。單體大小除了膽固醇氧化酶(cholesterol oxidase)為36 kDa相對(duì)較小,其他都在60 k～80 kDa附近。底物結(jié)合口袋中都有H/H或H/N作為底物催化活性中心,而限制底物分子可用空間的氨基酸有所不同。例如SPAOX中的F98在膽堿氧化酶(choline oxidase)中為S101,W566為V464,而F98在芳香醇氧化酶(aryl-alcohol oxidase)中為Y92,在膽固醇氧化酶中為G66,而絲氨酸、纈氨酸、甘氨酸等氨基酸的殘基都較小,使得這些氧化酶可催化諸如膽堿、膽固醇等較大醇類(lèi)底物[5, 17]。

表1 GMC氧化還原酶家族結(jié)構(gòu)的比較

SPAOX在過(guò)氧化物酶體中組裝成八聚體,得益于外界條件的影響,促使亞基相互接觸[17]。由于八聚體結(jié)構(gòu)組裝較困難,因此SPAOX的穩(wěn)定性較差,容易受到環(huán)境的影響而降解。

2 SPAOX的性質(zhì)

2.1 底物特異性

SPAOX的底物主要為甲醇、乙醇、正丙醇、正丁醇。隨著醇類(lèi)底物碳鏈的增長(zhǎng),SPAOX的Km值逐漸變大,活力也逐漸下降(表2)。甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母中多形漢遜酵母(HansenulapolymorphaDL-1)SPAOX的Km值最小,為0.23 mmol/L。其他類(lèi)型真菌中只有茯苓(Poriacontigua)SPAOX的Km為0.2 mmol/L,小于甲基營(yíng)養(yǎng)型酵母SPAOX的Km值。而且,茯苓SPAOX的最大反應(yīng)速率為12.8 μmol/(min·nmol),高于目前報(bào)道的其他SPAOX的最大反應(yīng)速率[24]。對(duì)SPAOX進(jìn)行突變可以改變其催化底物的性質(zhì)。SPAOX對(duì)甲醇和乙醇表現(xiàn)出良好的催化活性,對(duì)其他底物的低活性限制了SPAOX的進(jìn)一步應(yīng)用。SPAOX的蛋白質(zhì)工程改造使其適配多種底物,將拓寬SPAOX的應(yīng)用范圍。DMYTRUK等[25]對(duì)多形漢遜酵母SPAOX進(jìn)行突變,得到對(duì)甲醇Km值從0.62 mmol/L提高到1.1～2.48 mmol/L,拓寬了多形漢遜酵母SPAOX突變體的應(yīng)用范圍。雖然大部分SPAOX也展現(xiàn)出較弱的氧化甲醛的活力(表2),但是KJELLANDER等[26]將畢赤酵母SPAOX固定到納米多孔氧化鋁膜后,固定化SPAOX對(duì)甲醛表現(xiàn)出與游離酶對(duì)甲醇的102%相對(duì)活力,說(shuō)明固定化技術(shù)為保護(hù)SPAOX不受甲醛的損傷提供了有力保障。

表2 不同SPAOX的底物特異性比較

2.2 SPAOX活力

由于SPAOX的八聚體結(jié)構(gòu),易受到環(huán)境因素的影響,因此,很多學(xué)者對(duì)多種SPAOX的影響因素pH、溫度、化合物等進(jìn)行考察。

2.2.1 環(huán)境的影響

表3匯總了pH和溫度分別對(duì)不同SPAOX活力的影響。SPAOX的最適pH可以低至5,也可以高達(dá)9。部分菌株來(lái)源的SPAOX具有相同的最適pH,例如Candida25-A和Komagataellapastoris的最適pH為7.5。Ogataeaangusta、Aspergillusterreus和PenicilliumpurpurescensAIU 063的最適pH為8.5。Phanerochaetechrysosporium、Pichiasp.、Phanerochaetechrysosporium和Ogataeathermomethanolica的最適pH為9。相比pH性質(zhì)的較為相似性,不同SPAOX的最適溫度差異較大。例如Aspergillusochraceus[34]、Candidamethanosorbosa[27]、Thermoascusaurantiacus[30]、Ogataeaangusta[4]、Phanerochaetechrysosporium[10]、Ogataeathermomethanolica[28]的SPAOX均有較好的熱穩(wěn)定性,最適溫度為45～55 ℃左右;而其他SPAOX的最適溫度均為25～40 ℃左右。環(huán)境因素除了pH和溫度,靜水壓力也會(huì)影響SPAOX的活力[35-36]。高靜水壓力會(huì)穩(wěn)定SPAOX的熱失活,尤其是酶的不穩(wěn)定組分,使得結(jié)構(gòu)更加穩(wěn)定。高靜水壓力可以使SPAOX在高溫下保持活性并獲得更快的反應(yīng)速度。

表3 不同SPAOX性質(zhì)的比較

2.2.2 化合物的影響

SPAOX溶液中有機(jī)、無(wú)機(jī)化合物、金屬離子等物質(zhì)會(huì)影響SPAOX活性(表4、表5)。其中聯(lián)吡啶對(duì)SPAOX活性沒(méi)有顯著影響。羥基喹啉、氨基脲、Cu2+等因?yàn)轸驶饔脤?duì)SPAOX活性有一定的抑制[33]。羰基試劑諸如苯肼、羥胺以及肼等也對(duì)SPAOX活性有顯著抑制作用[32,34]。Cd2+、Hg2+等金屬離子對(duì)Candida、Ogataeapolymorpha、Paecilomycesvariotii的SPAOX活性有顯著抑制作用,而其他金屬離子對(duì)SPAOX活性無(wú)顯著影響[7,29-30,34,39-40]。這也使得金屬螯合劑乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid, EDTA)、鄰菲咯啉對(duì)SPAOX活性也無(wú)顯著抑制作用[39]。疊氮化鈉是甲醇的可逆競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑,結(jié)合位點(diǎn)位于SPAOX的活性中心區(qū)域,與FAD作用,從而改變SPAOX二級(jí)結(jié)構(gòu)[18]。此外,SPAOX在環(huán)丙酮中20 ℃、pH 7.5條件下孵育2 h后完全失去活性[41]。但是在隔絕氧氣情況下能有效抑制失活。由于SPAOX活性位點(diǎn)附近有巰基,因此,對(duì)氯苯甲酸汞(p-chloromercuribenzoate,PCMB)、Cu2+、Hg2+等對(duì)巰基有封閉作用的化合物對(duì)SPAOX有顯著抑制作用。這表明SPAOX中半胱氨酸殘基對(duì)于維持結(jié)構(gòu)的作用必不可少[24,27,32]。此外,可以通過(guò)在Hg2+處理后的SPAOX中添加硫醇或在Cu2+處理后的SPAOX中添加EDTA進(jìn)行去抑制[40]。過(guò)量的β-巰基乙酸可恢復(fù)由PCMB引起的失活,表明抑制由有機(jī)汞與巰基結(jié)合而引起[40]。因此,巰基的抑制作用是可逆競(jìng)爭(zhēng)性抑制。

表4 化合物對(duì)SPAOX活力的影響

表5 金屬離子對(duì)SPAOX活力的影響

此外,碘乙酸可以使SPAOX可逆失活[40]。炔醇底物使SPAOX不可逆失活,炔醇氧化后產(chǎn)物醛的羥基再與SPAOX的活性中心發(fā)生親電結(jié)合,使底物醇不能與SPAOX結(jié)合,所以炔醇底物是自殺性底物[2]。此外,底物和產(chǎn)物對(duì)SPAOX的穩(wěn)定性也有影響。在沒(méi)有過(guò)氧化氫酶存在的情況下,SPAOX會(huì)被大量產(chǎn)生的過(guò)氧化氫可逆抑制[4]。過(guò)氧化氫將SPAOX活性中心的巰基可逆氧化。加入巰基乙醇或二硫蘇糖醇等還原劑可使SPAOX活性恢復(fù)[42]。

2.3 SPAOX的穩(wěn)定性

SPAOX穩(wěn)定性的相關(guān)研究一直受到廣泛關(guān)注。將SPAOX儲(chǔ)存于4 ℃可保持活性數(shù)周至數(shù)月[8],儲(chǔ)存于-20或-80 ℃可保持活性數(shù)年[24]。雖然低溫保存對(duì)活性的影響較小,但反復(fù)凍融會(huì)使SPAOX快速失活[29]。Basidiomycota的SPAOX可在0.05 mol/L的磷酸緩沖液中保持至少5個(gè)月活性[1]。添加500 g/L蔗糖可使Pichiaputida的SPAOX的穩(wěn)定性提高10倍,在300～500 g/L蔗糖、-20或-80 ℃下SPAOX活性可保持?jǐn)?shù)年[43]。固定化技術(shù)可顯著提高SPAOX的活性范圍,有利于酶保持穩(wěn)定性。ZHAO等[44]將SPAOX固定在靜電紡絲纖維上后,由于纖維表面的生物相容性和親水性使得最適溫度提高至50 ℃,最適pH范圍擴(kuò)大至6.5～7.5,在40 ℃孵育2 h后SPAOX活性?xún)H降低10%。CHUNG等[45]將SPAOX固定在活性纖維素載體上,SPAOX的最適溫度提高至65 ℃,在80 ℃仍有25%活性,pH范圍擴(kuò)大至4～10,并在25 ℃下保持穩(wěn)定10周以上。KJELLANDER等[26]將SPAOX固定在多孔納米氧化鋁上后,室溫下反應(yīng)50 h后仍能保持50%以上的活性。穩(wěn)定性在SPAOX作為傳感器元件中也發(fā)揮了重要作用,固定在含有聚中性紅(poly neutral red,PNR)介質(zhì)的碳膜電極上的SPAOX作為傳感器,使用2周后傳感器的靈敏度下降0.8%,在pH 7、0.1 mol/L磷酸緩沖液中4 ℃保存6周后,傳感器的靈敏度僅下降12%[46]。

3 SPAOX的應(yīng)用

SPAOX的底物廣泛、反應(yīng)的不可逆性和輔因子循環(huán)使用的優(yōu)勢(shì)使得SPAOX已經(jīng)在多個(gè)方面成功應(yīng)用。圖2從SPAOX的催化機(jī)制出發(fā)總結(jié)了SPAOX的主要應(yīng)用場(chǎng)景,例如基于固定化SPAOX構(gòu)建的生物反應(yīng)器用于醇醛類(lèi)物質(zhì)分析檢測(cè)、醇醛物質(zhì)的生物轉(zhuǎn)化、生物修復(fù)方面的醛類(lèi)物質(zhì)降解等。

圖2 SPAOX的應(yīng)用

3.1 醇類(lèi)物質(zhì)的分析檢測(cè)

固定化的SPAOX常被用于食品中短鏈醇、醛的檢測(cè)。根據(jù)檢測(cè)技術(shù)分類(lèi),可分為光學(xué)方法和電化學(xué)方法。

光學(xué)分析方法基于SPAOX和辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)耦合,氧化顯色物質(zhì)發(fā)生顯色反應(yīng),進(jìn)而測(cè)定吸光度的變化分析目的物的含量。例如SPAOX、HRP和顯色劑混合于兩層濾紙之間構(gòu)成酒精檢測(cè)試紙,可以快速檢測(cè)血液或唾液乙醇,其檢測(cè)范圍達(dá)10～1 200 mg/L[47]。將二茂鐵包埋的SPAOX和包覆HRP的溶膠-凝膠殼聚糖膜逐層固定在多壁碳納米管(Multi-walled carbon nanotube,MWCNT)修飾的玻碳電極上,制成檢測(cè)乙醇的生物傳感器[48],其檢測(cè)范圍達(dá)5～3 000 μmol/L。此外,AHMAD等[49]報(bào)道了將SPAOX包埋在含有尼羅藍(lán)(Nile blue chromoionophore,NBCM)的聚丙烯酸酯薄膜上,用于甲醛檢測(cè)。其原理為SPAOX與甲醛反應(yīng)的產(chǎn)物甲酸提供的氫離子與NBCM發(fā)生離子轉(zhuǎn)移反應(yīng),生成深藍(lán)色絡(luò)合物HNBCM+,進(jìn)而通過(guò)吸光度的變化分析甲醛的含量,其檢測(cè)范圍達(dá)10-3～103mmol/L?；陲@色分析的方法操作簡(jiǎn)單、高效,線(xiàn)性的準(zhǔn)確度高,但存在重復(fù)性較差的缺點(diǎn)。

電化學(xué)分析基于溶解氧含量的測(cè)定。例如將SPAOX與納米金顆粒結(jié)合,氧化醇生成的H2O2將苯胺氧化聚合成聚苯胺(polyaniline,PANI),再將PANI包裹的SPAOX-AuNPs組裝在玻碳電極上,所制備的生物傳感器可用于醇的分析檢測(cè),檢測(cè)范圍達(dá)10～4 700 μmmol/L[50]。此外,電化學(xué)分析方法也可以測(cè)定H2O2分解而產(chǎn)生的電流。例如,將SPAOX固定在以氯化高鐵血紅素和金納米粒子(CF-H-Au)修飾的碳微纖維而制備成納米酶,其對(duì)H2O2的親和力比溶液中的氯化血紅素高2.6倍,對(duì)乙醇的檢出限為5 μmol/L,檢測(cè)范圍達(dá)0.01～0.15 mmol/L[51]。HOODA等[52]將SPAOX共價(jià)固定在聚氯乙烯燒杯上,同時(shí)將HRP、Nafion、MWCNT、殼聚糖和金納米顆粒固定在電極上,檢測(cè)乙醇的范圍為0.01～42 mmol/L。采用電化學(xué)分析方法,檢測(cè)靈敏度高,重復(fù)性好,然而生物傳感器的搭建較為復(fù)雜。

此外,還可以通過(guò)氣體壓力變化檢測(cè)氧氣。ZHANG等[53]將兩親性氣凝膠結(jié)合Pd @ Pt核殼納米顆粒,形成密封設(shè)備,乙醇經(jīng)SPAOX和過(guò)氧化氫酶得到終產(chǎn)物氧氣,通過(guò)便攜式壓力傳感器來(lái)定量乙醇含量,檢出限為0.5 mmol/L。該方法的樣品制備和檢測(cè)反應(yīng)時(shí)間短,且不受醇類(lèi)的干擾,也為乙醇檢測(cè)提供了一種新的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑。

3.2 醇醛物質(zhì)的生物轉(zhuǎn)化

SPAOX可用于生產(chǎn)甲醛、H2O2、復(fù)雜有機(jī)物的中間產(chǎn)物[54]。例如,DIENYS等[55]將SPAOX固定在戊二醛活化后的大孔纖維素載體上,用于合成雜環(huán)化合物。SPAOX固定在納米多孔氧化鋁膜上,生產(chǎn)H2O2的生產(chǎn)效率遠(yuǎn)高于葡萄糖氧化酶[26]。為了克服SPAOX穩(wěn)定性差的問(wèn)題,MANGKORN等[56]將SPAOX固定在鋇鐵氧體磁性微粒(BaFe12O19)上不僅提高了SPAOX的熱穩(wěn)定性和催化效率,并且可以固定化SPAOX,在合成醛方面具有良好的工業(yè)應(yīng)用前景。

3.3 環(huán)境修復(fù)

SPAOX固定于海藻酸鈣凝膠中,開(kāi)發(fā)了用于檢測(cè)或生物修復(fù)空氣中甲醛的連續(xù)生物反應(yīng)器,能清除90%以上甲醛[57]。DAS等[58]將SPAOX用于燃料電池,鏈接漆酶,從甲醇基質(zhì)中發(fā)電,用于環(huán)境修復(fù)中。SPAOX以新穎的生物發(fā)電的方式用于環(huán)境修復(fù)中,開(kāi)發(fā)了SPAOX更大的應(yīng)用價(jià)值。

4 展望

SPAOX的結(jié)構(gòu)和催化原理已經(jīng)明晰。SPAOX也被成功固定化和應(yīng)用。但是相對(duì)較低的底物親和力和較差的穩(wěn)定性限制了SPAOX的應(yīng)用。未來(lái)可以從3個(gè)方面克服SPAOX的不足,提高SPAOX在應(yīng)用中的催化效率和便捷性:

(1)提高SPAOX對(duì)特定底物的親和力。SPAOX氨基酸序列的突變是提高其底物親和力的有效措施[25]。部分SPAOX由于來(lái)自特定物種或是經(jīng)過(guò)改造可以有不同的最適底物,如甘油[10]。著重研究SPAOX的序列及結(jié)構(gòu),尤其針對(duì)底物結(jié)合口袋,找到改變底物特異性的關(guān)鍵殘基,有利于改變底物結(jié)合口袋,控制SPAOX的最適底物,有助于檢測(cè)應(yīng)用和特定化合物的生產(chǎn)。

(2)提高SPAOX的環(huán)境穩(wěn)定性。來(lái)自O(shè).angusta、A.ochraceus、T.aurantiacusNBRC 31693的SPAOX有較好的pH和熱穩(wěn)定性[4,30,34]。對(duì)這些SPAOX的序列進(jìn)行研究,有利于在后續(xù)進(jìn)一步提高SPAOX的穩(wěn)定性,使SPAOX在實(shí)際檢測(cè)應(yīng)用中的損耗更低,重復(fù)性更高。研究不同環(huán)境條件對(duì)SPAOX活性的影響,從氨基酸序列和蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)2方面分析環(huán)境對(duì)SPAOX影響的原因,找到更加合適的反應(yīng)條件,提高SPAOX的反應(yīng)速率,使其在生產(chǎn)應(yīng)用中的生物轉(zhuǎn)化效率更高,產(chǎn)量更大。

(3)開(kāi)發(fā)不同的定量方法,以及將生物轉(zhuǎn)化應(yīng)用于更多領(lǐng)域。優(yōu)化傳統(tǒng)的光學(xué)或電化學(xué)分析檢測(cè)定量方法,并開(kāi)發(fā)諸如氣體壓力檢測(cè)等非傳統(tǒng)的定量方法,使SPAOX可以在不同應(yīng)用場(chǎng)景中對(duì)短鏈伯醇類(lèi)物質(zhì)進(jìn)行檢測(cè)。SPAOX循環(huán)利用輔酶FAD的特點(diǎn),可以在各種場(chǎng)景中隨時(shí)、長(zhǎng)時(shí)間反應(yīng),使其不僅可以用于生產(chǎn),還可用于環(huán)境修復(fù)、生物發(fā)電等更多領(lǐng)域,提高了SPAOX的應(yīng)用價(jià)值。