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    微生物菌劑處理增加了生姜土壤中有益微生物的相對(duì)豐度

    2023-08-05 19:53:05張大琪任立瑞杜洪志等
    植物保護(hù) 2023年4期
    關(guān)鍵詞:土壤微生物有益菌

    張大琪 任立瑞 杜洪志等

    關(guān)鍵詞 哈茨木霉; 淡紫擬青霉; 枯草芽胞桿菌; 土壤微生物; 宏基因組學(xué); 有益菌

    中圖分類(lèi)號(hào): S144.1 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼: A DOI: 10.16688/j.zwbh.2022223

    現(xiàn)代農(nóng)業(yè)的高速發(fā)展改變了作物的種植方式,許多高附加值作物的種植規(guī)模也逐漸擴(kuò)大,作物連作的種植模式可提高農(nóng)戶(hù)的經(jīng)濟(jì)收入,但高附加值作物的連年種植會(huì)產(chǎn)生一系列問(wèn)題,如土壤酸化、土壤微生物功能結(jié)構(gòu)劣變等[1]。此外,長(zhǎng)期在同一塊土地種植同一種作物也加劇了土傳病害的發(fā)生和發(fā)展,易造成高附加值作物減產(chǎn)甚至絕收[2]。生姜作為高附加值經(jīng)濟(jì)作物在中國(guó)廣泛種植,2020年中國(guó)生姜種植面積達(dá)59752hm,全國(guó)生姜產(chǎn)量約為6412萬(wàn)t[3]。生姜連作的種植模式在中國(guó)較為常見(jiàn)。生姜種植過(guò)程中常遭遇土傳病害的侵染,其中由青枯雷爾氏菌Ralstonia solanacearum引起的姜瘟病可導(dǎo)致生姜當(dāng)茬絕收,并且其危害可延續(xù)多年,生姜姜瘟病已經(jīng)成為限制生姜發(fā)展的瓶頸[4]。另外,一些病原真菌導(dǎo)致的生姜病害也正阻礙著生姜的健康生長(zhǎng),其中較為嚴(yán)重的是生姜莖基腐病,又稱(chēng)爛脖子病,其主要致病菌為尖鐮孢Fusarium oxys-porum[5]。

    土壤是作物生長(zhǎng)、獲取營(yíng)養(yǎng)元素的大本營(yíng),微生物是土壤中最龐大的群體之一,直接或間接參與土壤介質(zhì)中的一切活動(dòng)。土壤微生物的群落結(jié)構(gòu)和多樣性是評(píng)價(jià)土壤健康的指標(biāo)之一。土壤中有益微生物數(shù)量較多時(shí),土壤質(zhì)量就會(huì)變優(yōu),而大量致病菌占據(jù)土壤空間時(shí),土壤就會(huì)成為“病土”。因此如何長(zhǎng)久有效地調(diào)節(jié)土壤中有益微生物的數(shù)量也成了當(dāng)今農(nóng)業(yè)科研領(lǐng)域亟須解決的問(wèn)題。

    微生物菌劑是將有益的活性菌經(jīng)過(guò)特殊的加工工藝制成便于使用的生物制劑或活菌制劑[6]。目前微生物菌劑主要有細(xì)菌類(lèi)菌劑(芽胞桿菌、假單胞菌、根瘤菌)、真菌類(lèi)菌劑(木霉、淡紫擬青霉、菌根真菌)和病毒類(lèi)菌劑(核型多角體病毒)。研究表明,微生物菌劑能夠增加土壤中有機(jī)質(zhì)含量[7],提高作物對(duì)礦物元素的吸收,抑制病原菌的發(fā)生,增強(qiáng)作物對(duì)病害的抵抗力并提高作物的產(chǎn)量[89]。劉麗英等[10]的研究表明,經(jīng)枯草芽胞桿菌SNB-86菌劑處理的土壤種植平邑甜茶幼苗,土壤中細(xì)菌和放線菌的數(shù)量顯著增加,真菌的數(shù)量降低,并且促進(jìn)了幼苗的生長(zhǎng)。Shen等[11]研究表明,生物菌劑可降低香蕉枯萎病的發(fā)病率。張蕾等[12]研究表明,土壤調(diào)理劑配施微生物菌劑(成分:枯草芽胞桿菌、側(cè)孢短芽胞桿菌、植物乳酸菌等高活性有益菌群)處理黃瓜土壤后顯著改善了土壤理化性質(zhì),降低了土壤表層的鹽分含量,增加了土壤中有益菌群的含量,并促進(jìn)了黃瓜的生長(zhǎng)。工業(yè)和信息化部在2015年頒布的《關(guān)于推進(jìn)化肥行業(yè)轉(zhuǎn)型發(fā)展的指導(dǎo)意見(jiàn)》中提出力爭(zhēng)在2020年將我國(guó)新型肥料的使用量提升至化肥總體用量的30%[13]。其中微生物菌劑作為新型肥料的主要產(chǎn)品之一,其研發(fā)力度和使用量不斷加大,具有較大的發(fā)展?jié)摿涂臻g,已成為國(guó)內(nèi)外的研發(fā)熱點(diǎn)。目前,關(guān)于微生物菌劑的研究多集中在設(shè)施蔬菜中,對(duì)于高附加值經(jīng)濟(jì)作物特別是根莖類(lèi)經(jīng)濟(jì)作物的研究較少。

    本試驗(yàn)在生姜連作地塊中澆灌富含哈茨木霉Trucgiderna garzianumTH7、淡紫擬青霉Pur-pureocillium lilacinum PL22以及高效枯草芽胞桿菌Bacillus subtilis的微生物菌劑(商品名:綠地成金),并通過(guò)微生物分離培養(yǎng)和宏基因組測(cè)序技術(shù)探究微生物菌劑處理對(duì)生姜土壤中細(xì)菌和真菌群落組成的影響。哈茨木霉屬于木霉屬Trichoderma spp.,木霉屬是植物內(nèi)生生防菌,適應(yīng)性強(qiáng),繁殖快[14]。常見(jiàn)的木霉有綠色木霉Trichoderma viride、康寧木霉T.koningii、棘孢木霉T.asperel-lum、深綠木霉T.atrpvorode、哈茨木霉、長(zhǎng)枝木霉T.longibrachiatum等。其中哈茨木霉是木霉屬中重要的生防菌資源,其對(duì)植物寄生根結(jié)線蟲(chóng)有較好的防治效果[15]。馬金慧等[16]發(fā)現(xiàn)哈茨木霉TRI2的48h發(fā)酵液對(duì)根結(jié)線蟲(chóng)Meloidogyne spp.防治效果為100%。淡紫擬青霉是植物寄生線蟲(chóng)的天敵,廣泛應(yīng)用于防治根結(jié)線蟲(chóng)、孢囊線蟲(chóng)Heterodera spp.、馬鈴薯白線蟲(chóng)Globodera pullida等重要植物病原線蟲(chóng)[1718]。將淡紫擬青霉與雞糞聯(lián)合使用對(duì)番茄根結(jié)線蟲(chóng)的防治效果可達(dá)到78.3%[19]。枯草芽胞桿菌是一類(lèi)好氧桿狀細(xì)菌,能夠分泌多種酶??莶菅堪麠U菌在植物根際定殖,可有效防治由尖鐮孢、黃枝孢Clados porium fulvum等病原真菌引起的番茄葉霉病、黃瓜枯萎病等病害[20]。本試驗(yàn)擬為擴(kuò)大微生物菌劑的使用范圍及田間應(yīng)用價(jià)值提供有效的理論基礎(chǔ)。

    1材料與方法

    1.1試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    大田試驗(yàn)于2021年4月-6月在山東省安丘市臨浯鎮(zhèn)的一塊生姜田中進(jìn)行(36°12′N,119°16′E)。試驗(yàn)地土壤銨態(tài)氮、硝態(tài)氮、有效磷和有效鉀含量分別為0.96、25.69、119.92mg/kg和190.83mg/kg,有機(jī)質(zhì)含量13.23g/kg,pH (土∶水=1∶2.5)6.83,電導(dǎo)率235.00μs/cm。該地塊有10年以上的生姜種植歷史。試驗(yàn)選用的生物菌劑(綠地成金)有效活菌數(shù)>5億cfu/g,富含哈茨木霉Trichoderma har-zianum TH7、淡紫擬青霉Pur pureocillium lilaci-num PL22以及高效枯草芽胞桿菌Bacillus subti-lis,由慕恩(廣州)生物科技有限公司提供。根據(jù)微生物菌劑的使用說(shuō)明,在生姜播種、大培土、小培土、苗期進(jìn)行微生物菌劑兌水(稀釋?zhuān)担氨叮补嗵幚?,試?yàn)小區(qū)用水量為700mL/m(記為microbialagent,MA)。并設(shè)置未經(jīng)微生物菌劑處理小區(qū)為對(duì)照組(記為control),每處理設(shè)置3個(gè)重復(fù)。試驗(yàn)小區(qū)長(zhǎng)為30m,寬為1.5m,處理組和對(duì)照組之間設(shè)有0.5m的緩沖帶。

    1.2土樣采集與指標(biāo)測(cè)試

    生姜成熟期(最后1次菌劑處理后90d),在田間每個(gè)處理小區(qū)中間部位隨機(jī)采集3份5~20cm土層土壤樣本200g置于自封袋內(nèi),立即送往實(shí)驗(yàn)室。同一小區(qū)的土壤樣品充分混勻后,均分為2份。一份土樣在4℃下保存,用于后續(xù)微生物分離試驗(yàn)。另一份土樣保存于-80℃冰箱,用于測(cè)定土壤微生物群落結(jié)構(gòu)組成。

    1.2.1土壤中細(xì)菌和真菌分離

    采用稀釋涂布法分離土壤中的細(xì)菌和真菌。稱(chēng)取3g土于滅菌的50mL離心管中并加入27mL無(wú)菌生理鹽水,得到稀釋?zhuān)保氨兜耐寥缿腋∫?。梯度稀釋土壤懸浮液,分離真菌的土壤懸浮液濃度為10-2~10,分離細(xì)菌的土壤懸浮液濃度為10~10。

    分別吸?。保担唉蹋掏寥缿腋∫杭尤朊霞永t瓊脂培養(yǎng)基(RBM)[21]、馬鈴薯葡萄糖培養(yǎng)基(PDA)、氯硝胺18%甘油瓊脂培養(yǎng)基(DG18)[22]等真菌分離培養(yǎng)基和大豆酪蛋白瓊脂培養(yǎng)基(TSA)、R2A[23]、PS[24]等細(xì)菌分離培養(yǎng)基中,用滅菌玻璃珠搖晃平板將其涂抹均勻,用封口膜密封培養(yǎng)皿。待培養(yǎng)基表面干燥后,將其倒置于25℃培養(yǎng)箱中黑暗培養(yǎng)。待有菌落產(chǎn)生,按照菌落形態(tài)和顏色特征歸類(lèi),并記錄培養(yǎng)基中菌落的數(shù)量,用于分離頻率的計(jì)算。用接種環(huán)挑取單個(gè)菌落進(jìn)行分離純化鑒定。細(xì)菌菌株采用16SrDNA序列,真菌菌株采用ITS序列進(jìn)行分子鑒定。

    1.2.2宏基因組學(xué)測(cè)序技術(shù)分析土壤中微生物群落結(jié)構(gòu)組成

    ?。埃玻担缭冢福啊姹4娴耐寥罉悠酚冢停泄苤校冢停袆驖{儀(FastPrep-245G,USA)中均漿,利用FastDNA-SpinKitforSoil(MPBiomedicals)提取土壤基因組總DNA,使用0.8%瓊脂糖凝膠電泳和酶標(biāo)儀檢測(cè)DNA 濃度及純度。將DNA 樣品送至北京諾禾致源生物技術(shù)有限公司進(jìn)行細(xì)菌16SrD-NA 的V5-V7區(qū)(引物為799F:5′-AACMGGATT-AGATACCCKG-3′ 和1193R:5′ACGTCATC-CCCACCTTCC-3′)和真菌ITSrDNA 的I區(qū)(引物為ITS1F:5′-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′和ITS1R:5′-GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3′)的PCR 擴(kuò)增及文庫(kù)構(gòu)建,最后利用IlluminaHiSeq2500高通量測(cè)序平臺(tái)進(jìn)行PE250測(cè)序。采用豐富度指數(shù)(Chaoindex)[25]、Shannon 多樣性指數(shù)[25]和系統(tǒng)發(fā)育多樣性[26]評(píng)價(jià)土壤中細(xì)菌群落的多樣性。

    1.3數(shù)據(jù)分析

    微生物總菌落數(shù)=培養(yǎng)皿中微生物菌落數(shù)×稀釋倍數(shù);

    采用SPSS19.0(IBM,USA)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,對(duì)微生物菌劑處理組和對(duì)照組中土壤細(xì)菌和真菌平均菌落數(shù)、相對(duì)豐度等數(shù)據(jù)采用單因素方差分析(ANOVA)和最小顯著性差異法(LSD)進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)(α=0.05)。采用Origin2018和Microsoftword2003分別繪制圖表。

    2結(jié)果與分析

    2.1稀釋涂布法培養(yǎng)土壤中細(xì)菌和真菌

    采用稀釋涂布平板法在不同培養(yǎng)基中培養(yǎng)得到的細(xì)菌和真菌的菌落情況見(jiàn)圖1。由表1可知微生物菌劑處理后的土壤中細(xì)菌和真菌的平均菌落形成單位均顯著低于對(duì)照組。與對(duì)照相比,微生物菌劑處理土壤中真菌和細(xì)菌的平均菌落形成單位分別減少了36.11%和50.00%。

    2.2菌株鑒定

    2.2.1細(xì)菌和真菌物種的鑒定

    基于細(xì)菌和真菌的分離培養(yǎng),從對(duì)照組土壤中成功鑒定21株細(xì)菌菌株和33株真菌菌株,從微生物菌劑處理土壤中成功鑒定42株細(xì)菌菌株和24株真菌菌株。物種分布見(jiàn)表2。

    在屬水平上,對(duì)照組土壤中分離頻率最高的細(xì)菌屬為假單胞菌屬Pseudomonas,菌落形成單位為3×10cfu/g,分離頻率為9.83%。其次為壤霉菌屬Agromyces、北里胞菌屬Kitasatospora、污泥單胞菌屬Pelomonas、Piscinibacter,分離頻率均為3.92%(圖2a)。對(duì)照組土壤中分離頻率最高的真菌屬為Gibellulopsis,菌落形成單位為2×10cfu/g,分離頻率為24.42%。其次為絲胞菌屬Scedosporium、微結(jié)節(jié)菌屬M(fèi)icrodochium、Musidium、Linneman-nia,分離頻率分別為:13.32%、7.66%、7.25%、4.66%(圖3a)。微生物菌劑處理土壤中分離頻率最高的細(xì)菌屬為根瘤菌屬Rhizobium,菌落形成單位為4×10cfu/g,分離頻率為17.34%。其次為假單胞菌屬、柄桿菌屬Caulobacter、污物假節(jié)桿菌屬Pseudarthrobacter、雷夫松氏菌屬Leifsonia,分離頻率分別為:10.84%、8.67%、5.13%、4.34% (圖2b)。微生物菌劑處理土壤中分離頻率最高的真菌屬為Musidium,菌落形成單位為5×10cfu/g,分離頻率為13.91%。其次為Gibellulopsis、小不整球殼屬Plectosphaerella、被孢霉屬M(fèi)ortierella、Lep-tobacillium、Parasarocladium,分離頻率分別為:12.97%、10.38%、9.52%、9.43%、9.43%(圖3b)。

    在種水平上,對(duì)照組土壤中分離頻率較高的細(xì)菌種為油菜假單胞菌屬Pseudomonas brassi-cacearum,菌落形成單位為1×10cfu/g,分離頻率為17.44%。其次為莫爾氏假單胞菌Pseudomonas umsongensis、Pseudomonas kilonensis、Streptomyces panaciradicis、杰氏假單胞菌Pseudomonas jessenii,分離頻率分別為:5.49%、3.49%、3.49%、3.05% (圖4a)。對(duì)照組土壤中分離頻率較高的真菌種為變黑輪枝菌Gibellulopsis nigrescens,菌落形成單位為2×10cfu/g,分離頻率為17.86%。其次為Penicillium me-nonorum、尖端賽多孢子菌Scedosporium apiosper-mum、Scedosporium dehoogii、Linnemannia elongata分離頻率分別為:9.74%、9.74%、9.74%、6.49%(圖5a)。微生物菌劑處理土壤中分離頻率較高的細(xì)菌種是溫哥華假單胞菌Pseudomonas vancouverensis,菌落形成單位為4×10cfu/g,分離頻率為11.61%,其次為斯凱爾涅維采根瘤菌Rhizobium skierniewi-cense、米氏假單胞菌Pseudomonas migulae、惰性柄桿菌Caulobacter segnis、莫爾氏假單胞菌P.um-songensis,分離頻率分別為:10.72%、5.58%、5.36%、3.83%(圖4b)。微生物菌劑處理土壤中分離頻率較高的真菌種為Musidium stromaticum,菌落形成單位為5×10cfu/g,分離頻率為12.14%,其次為變黑輪枝菌Gibellulopsis nigrescens、Plecto-sphaerella oligotrophica、高山被孢霉Mortierella alpina、Leptobacillium symbioticum,分離頻率分別為:11.31%、9.46%、8.30%、8.23%(圖5b)。

    2.2.2有益物種和有害物種的分離、鑒定

    在屬水平上,對(duì)照組土壤中分離、純化出5個(gè)有益細(xì)菌屬,14個(gè)種,其中包含芽胞桿菌屬Bacillus7個(gè)種,間皮芽胞桿菌屬M(fèi)esobacillus 1個(gè)種,新桿菌屬Neobacillus 2個(gè)種,類(lèi)芽胞桿菌屬Paenibacillus 3個(gè)種,嗜冷芽胞桿菌屬Psychrobacillus 1個(gè)種(表3)。在這些種中,東洋芽胞桿菌Bacillus toyonensis和解木聚糖類(lèi)芽胞桿菌Paenibacillus xylanilyticus具有較高的分離頻率(均為1.74%)和菌落形成單位(均為1.4×10cfu/g)。微生物菌劑處理土壤中共分離、純化出7個(gè)有益細(xì)菌屬,21個(gè)種,其中包含芽胞桿菌屬Bacillus8?jìng)€(gè)種,銹色房屋芽胞桿菌屬Domibacillus1個(gè)種,間皮芽胞桿菌屬M(fèi)esobacillus1個(gè)種,新桿菌屬Neobacillus3個(gè)種,類(lèi)芽胞桿菌屬Paenibacillus6個(gè)種,嗜冷芽胞桿菌屬Psychrobacillus1個(gè)種,水原拉梅爾芽胞桿菌屬Rummeliibacillus1個(gè)種(表4)。在這些種中,阿氏芽胞桿菌Bacillus ary-abhattai具有較高的分離頻率和菌落形成單位,分別為2.01%和7.9×10cfu/g。

    對(duì)于有害物種,本試驗(yàn)僅從對(duì)照處理土壤中分離出導(dǎo)致生姜莖基腐病的病原菌尖鐮孢Fusarium oxysporum和腐皮鐮孢Fusarium solani,純化株數(shù)均為2株,分離頻率分別為0.81%和0.49%。

    2.3宏基因組測(cè)序分析微生物菌劑對(duì)土壤中細(xì)菌和真菌結(jié)構(gòu)多樣性的影響

    由表5可知,微生物處理后,土壤中細(xì)菌和真菌群落結(jié)構(gòu)豐富度指數(shù)(Chao指數(shù))、真菌Shannon多樣性指數(shù)和真菌系統(tǒng)發(fā)育多樣性均低于對(duì)照處理,其中真菌Chao指數(shù)和系統(tǒng)發(fā)育多樣性達(dá)到顯著水平。這表明,微生物菌劑處理降低了土壤中細(xì)菌和真菌群落結(jié)構(gòu)多樣性。并且微生物菌劑處理土壤中細(xì)菌的多樣性指數(shù)均高于真菌的多樣性指數(shù),這表明,微生物菌劑對(duì)土壤中真菌多樣性的影響大于對(duì)細(xì)菌多樣性的影響。

    微生物菌劑和對(duì)照處理土壤中細(xì)菌屬數(shù)量(678/645)大于真菌屬數(shù)量(72/101)。微生物菌劑處理土壤中特有細(xì)菌和真菌屬數(shù)量分別為203個(gè)和20個(gè),與對(duì)照相比,細(xì)菌特有屬增加了19.41%,而真菌特有屬減少了59.18%。

    對(duì)照處理和微生物菌劑處理土壤中細(xì)菌和真菌屬水平相對(duì)豐度結(jié)果見(jiàn)圖6。與對(duì)照處理相比,微生物菌劑處理顯著增加了根瘤菌屬、柄桿菌屬Caulobucter、污物假節(jié)桿菌屬Pseudarthrobacter、芽胞桿菌屬、雷夫松氏菌屬、紅細(xì)菌屬Rhodanobacter、農(nóng)桿菌屬Agrobacterium等細(xì)菌屬的相對(duì)豐度,另外,假單胞菌屬、Bosea、Massilia、中間根瘤菌屬M(fèi)eso-rhizobium等細(xì)菌屬的相對(duì)豐度也有所增加,微生物菌劑處理減少了Kitasatospora的相對(duì)豐度(圖6a)。與對(duì)照相比,微生物菌劑處理顯著增加了Musidium、被孢霉屬、Parasarocladium、albifimbria和枝孢屬Cladosporium等真菌屬的相對(duì)豐度,減少了Gibellulopsis、微結(jié)節(jié)菌屬M(fèi)icrodochium等屬的相對(duì)豐度(圖6b)。

    3討論

    土壤微生物是土壤重要組成成分,是土壤中細(xì)菌、真菌、放線菌、藻類(lèi)等的總稱(chēng),承擔(dān)著土壤中物質(zhì)運(yùn)輸與能量傳遞的功能,對(duì)土壤生態(tài)系統(tǒng)具有重要的意義。有些土壤微生物可參與碳、氮循環(huán),增加土壤中有機(jī)質(zhì)的含量,并為植物提供可吸收利用的氮化合物;有些土壤微生物可通過(guò)寄生或分泌抗生素等物質(zhì)來(lái)抑制病原菌的生長(zhǎng)[27],通常這種微生物可被加工成微生物菌劑在農(nóng)業(yè)中應(yīng)用。土壤微生物功能的失衡是導(dǎo)致健康土壤成為“病土”的原因之一,病土的特征主要表現(xiàn)在有益微生物數(shù)量下降,有害病原菌大量積累,土壤由“細(xì)菌型”轉(zhuǎn)變?yōu)椤罢婢汀保郏玻福玻梗荨N⑸锞鷦┌罅坑幸嫖⑸?,采用微生物菌劑處理土壤是直接向土壤中補(bǔ)充有益微生物,搶占土壤空間,抑制病原菌的生長(zhǎng),從而達(dá)到控制病害的目的[30]??莶菅堪麠U菌可通過(guò)與植物根系中的鐵載體結(jié)合搶占在根系的定殖位點(diǎn),抑制病原菌在根際的定殖[20]。木霉可通過(guò)分泌多種細(xì)胞壁降解酶如幾丁質(zhì)酶、纖維素酶、木聚糖酶、葡聚糖酶等對(duì)病原菌產(chǎn)生拮抗作用[31]。淡紫擬青霉可通過(guò)寄生作用防治禾谷孢囊線蟲(chóng)Heterodera avenae[32]。

    本試驗(yàn)采用微生物菌劑對(duì)大田生姜進(jìn)行澆灌處理,采集最后一次微生物菌劑處理后90d的土壤樣本進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果表明,微生物菌劑對(duì)土壤中的細(xì)菌和真菌數(shù)量具有一定的抑制作用。Shen等[11]在氨熏蒸的土壤中澆灌生物菌肥發(fā)現(xiàn)土壤中的細(xì)菌和真菌的多樣性在90d后仍低于未澆灌生物菌肥處理,本研究的結(jié)果與此一致。在屬、種水平上,與對(duì)照相比,微生物菌劑處理土壤中分離、純化的細(xì)菌物種數(shù)量較高,而真菌物種數(shù)量較低。微生物菌劑處理土壤分離頻率較高的屬是根瘤菌屬Rhizobium,根瘤菌具有很強(qiáng)的固氮作用,可在生姜生長(zhǎng)過(guò)程中提高生姜對(duì)氮素的吸收和利用。微生物菌劑處理土壤中假單胞菌屬的分離頻率為10.84%。路兆軍等[33]研究表明,分離自蘋(píng)果樹(shù)根際的假單胞菌PL-21對(duì)蘋(píng)果褐斑病菌Murssonina coronarias、蘋(píng)果圓斑病菌Phyllositic solitaria有較好的防治作用。婁海博等[34]發(fā)現(xiàn),熒光假單胞菌PseudomonasSN15-2對(duì)番茄青枯病的防效效果為46.6%。

    有益微生物的分離結(jié)果顯示,微生物菌劑能夠提高土壤中有益微生物的數(shù)量。對(duì)照土壤中分離、純化出14種有益微生物,而微生物菌劑處理土壤中分離、純化出21種有益微生物。其中分離、純化較多的屬為芽胞桿菌屬。目前,芽胞桿菌屬已開(kāi)發(fā)成為成熟的微生物制劑。Huang等[35]研究表明芽胞桿菌屬可抑制草莓枯萎病的發(fā)生。

    宏基因組測(cè)序結(jié)果表明,微生物菌劑處理降低了土壤中細(xì)菌和真菌群落結(jié)構(gòu)豐富度指數(shù)Chao指數(shù)、真菌Shannon多樣性指數(shù),說(shuō)明此微生物菌劑對(duì)土壤中細(xì)菌和真菌具有抑制作用,這與稀釋涂布平板法得到的結(jié)果相一致。物種屬水平相對(duì)豐度結(jié)果顯示,微生物菌劑增加了根瘤菌屬、芽胞桿菌屬等細(xì)菌屬的相對(duì)豐度,以及小不整球殼屬、Musidium、被孢霉屬等真菌屬的相對(duì)豐度。根瘤菌屬、芽胞桿菌屬中的某些種已被證明是有益的土壤細(xì)菌微生物。小不整球殼屬是植物內(nèi)生真菌,具有分解纖維素的能力[3637]。Musidium屬于子囊菌門(mén),子囊菌在植物根部形成菌根,提高植物吸收養(yǎng)分的能力,促進(jìn)植物生長(zhǎng)[38]。被孢霉屬屬于接合菌門(mén),某些特定的被孢霉屬菌株具有促進(jìn)土壤養(yǎng)分轉(zhuǎn)化的作用,例如被孢霉Mortierella sp.具有在不同土壤中分泌有機(jī)酸溶解土壤磷的能力[39],另外被孢霉與從枝菌根真菌聯(lián)合使用能提高土壤中磷酸酶活性,有利于植物生長(zhǎng)[40]。將被孢霉添加到果園土壤中,土壤中有效磷、速效鉀以及鈣、鎂、硼等的含量顯著增加[41]。

    另外,在本試驗(yàn)中,我們注意到微生物菌劑處理后90d的土壤樣本中分離頻率較高的屬為芽胞桿菌屬。多項(xiàng)土壤微生物多樣性研究結(jié)果表明,芽胞桿菌屬在土壤中具有較高的相對(duì)豐度[4243]。微生物菌劑施入土壤中后,由于純化的有益微生物的數(shù)量龐大,可快速搶占土壤空間,在一定程度上抑制其他微生物(包括病原菌)的生長(zhǎng)。隨著使用時(shí)間的延長(zhǎng),土壤中的非致病土著微生物(包括有益菌)的數(shù)量會(huì)得到恢復(fù),但病原菌在有益微生物搶占定殖位點(diǎn)、寄生、重拮抗等的作用機(jī)制下以及非致病微生物搶占土壤空間的作用下,數(shù)量難以快速恢復(fù),從而達(dá)到控制病害的目的。但微生物菌劑貨架期短、土壤環(huán)境條件不同等因素可能導(dǎo)致微生物菌劑不能很好地適應(yīng)土壤環(huán)境,難以快速繁殖,在生態(tài)位的競(jìng)爭(zhēng)中難與土著微生物抗衡[44],這可能是導(dǎo)致微生物菌劑在使用后期不再是優(yōu)勢(shì)物種的原因之一。

    雖然微生物菌劑具有較好的應(yīng)用效果,但微生物菌劑在使用中仍然面臨諸多挑戰(zhàn):1)微生物菌劑的活性低及貨架期短:與化學(xué)農(nóng)藥相比,微生物菌劑在加工成各種劑型及長(zhǎng)時(shí)間保存的過(guò)程中其活性會(huì)受到影響,導(dǎo)致微生物菌劑的持效期變短。Wu等[43]比較了土壤中分離、純化的哈茨木霉菌株T267與哈茨木霉制劑在土壤中的活性,并對(duì)處理后6周的土壤中的哈茨木霉菌株進(jìn)行定量分析,結(jié)果表明T267在土壤中的基因拷貝數(shù)顯著高于制劑的基因拷貝數(shù)。2)施藥次數(shù)多:田間土壤環(huán)境復(fù)雜,微生物菌劑并不能完全適應(yīng)土壤環(huán)境并快速、長(zhǎng)期定殖,在作物生長(zhǎng)過(guò)程中,至少需要4~5次的灌根處理。因此未來(lái)微生物菌劑應(yīng)加大對(duì)高效、實(shí)用、適應(yīng)性強(qiáng)的功能菌株的開(kāi)發(fā)、利用,減少施藥次數(shù),提高微生物菌劑的認(rèn)可度。另一方面,對(duì)現(xiàn)有的微生物菌劑有必要結(jié)合基因工程改造技術(shù),培育出能適應(yīng)多種大田環(huán)境的高效菌株。

    4結(jié)論

    本試驗(yàn)結(jié)果表明,與對(duì)照相比,微生物菌劑處理雖然降低了土壤中細(xì)菌和真菌物種的菌落數(shù)以及細(xì)菌和真菌群落結(jié)構(gòu)豐富度指數(shù)(Chao指數(shù))、真菌Shannon多樣性指數(shù),但提高了土壤中根瘤菌屬、假單胞菌屬、芽胞桿菌屬等細(xì)菌屬及小不整球殼屬、Musidium、被孢霉屬等真菌屬的相對(duì)豐度,并且與對(duì)照相比這些屬的分離頻率較高。綜上,微生物菌劑(綠地成金)處理土壤后能夠改善土壤微生物群落結(jié)構(gòu),增加與有益菌相關(guān)的屬或種的相對(duì)豐度。

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