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    不同血清學(xué)檢測(cè)方法在人布魯氏菌病診斷中應(yīng)用價(jià)值比較

    2022-12-27 11:31:58張亞楠張亞慧楊佳欣高志祥王占黎
    大醫(yī)生 2022年24期
    關(guān)鍵詞:布魯膠體金布魯氏菌

    張亞楠,張亞慧,楊佳欣,高志祥,王占黎*

    (1.包頭醫(yī)學(xué)院研究生院,內(nèi)蒙古包頭 014040;2.鄂爾多斯生態(tài)環(huán)境職業(yè)學(xué)院外語(yǔ)學(xué)院,內(nèi)蒙古鄂爾多斯017010;3.內(nèi)蒙古自治區(qū)綜合疾病預(yù)防控制中心,內(nèi)蒙古呼和浩特 010031;4.內(nèi)蒙古自治區(qū)疾病相關(guān)生物標(biāo)志物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,內(nèi)蒙古包頭 014040)

    布魯氏菌?。ê?jiǎn)稱(chēng)布?。且环N人、畜共患性全身傳染性疾病,其病原菌是布魯氏桿菌。布魯氏桿菌的毒力或致病力很強(qiáng),人類(lèi)接觸患病動(dòng)物后,細(xì)菌可通過(guò)口、皮膚黏膜和呼吸道進(jìn)入人體,產(chǎn)生的內(nèi)毒素是主要的致病因子,可引起菌血癥和毒血癥[1]。布魯氏桿菌進(jìn)入人體后可侵襲到各個(gè)器官,包括脊柱、髖關(guān)節(jié)、膝關(guān)節(jié)、肩關(guān)節(jié)等部位。臨床癥狀主要表現(xiàn)為波狀熱、多汗、乏力、關(guān)節(jié)疼痛。布魯氏桿菌生存能力頑強(qiáng),在干燥、低溫的環(huán)境中均能存活,并且具有很強(qiáng)的抗滅活能力。因此,采取科學(xué)、合理檢驗(yàn)方法有效防控布病,做到早發(fā)現(xiàn)早治療尤為重要。本研究旨在探討膠體金試紙條法、虎紅平板凝集試驗(yàn)(RBPT)、試管凝集試驗(yàn)(SAT)和IgG/IgM酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)IgG/IgM法(ELISA IgG/IgM法)檢測(cè)布魯氏桿菌IgG抗體在布魯氏菌病診斷中應(yīng)用價(jià)值,現(xiàn)報(bào)道如下。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料 收集2021年12月19日就診于內(nèi)蒙古自治區(qū)綜合疾病預(yù)防控制中心門(mén)診的58例患者。納入標(biāo)準(zhǔn):因發(fā)熱、多汗、關(guān)節(jié)痛、腰痛、咳嗽而就診,具有流行病學(xué)接觸史(與牛羊有所接觸),疑似布病。神志清醒。排除標(biāo)準(zhǔn):合并血液系統(tǒng)疾病及其他傳染病。根據(jù)中國(guó)布魯氏菌病診斷標(biāo)準(zhǔn),SAT最低抗體滴度為1∶100,WHO和美國(guó)CDC將抗體滴度定為1∶160,結(jié)合我國(guó)具體國(guó)情和WHO診斷標(biāo)準(zhǔn)[1],實(shí)驗(yàn)室初篩中加入了膠體金試紙條、ELISA IgG/IgM法等試驗(yàn)。

    1.2 檢驗(yàn)方法

    1.2.1 膠體金試紙條法 取10 μL血清于膠體金試紙條加樣孔中,滴加3滴稀釋液,20 min后觀察結(jié)果,如果檢測(cè)線(xiàn)和質(zhì)控線(xiàn)均出現(xiàn)條帶,即為陽(yáng)性;如果質(zhì)控線(xiàn)出現(xiàn)條帶,檢測(cè)線(xiàn)沒(méi)有出現(xiàn)條帶,即為陰性;如果質(zhì)控線(xiàn)沒(méi)有出現(xiàn)條帶,檢測(cè)線(xiàn)出現(xiàn)條帶或檢測(cè)線(xiàn)和質(zhì)控線(xiàn)均沒(méi)有出現(xiàn)條帶,即為無(wú)效樣本。

    1.2.2 RBPT 于檢查當(dāng)天清晨采集就診患者空腹靜脈血液5 mL,置于含分離膠的金黃色頭蓋真空采血管內(nèi),待血液凝固,3 000 r/min離心20 min,取血清備用。具體操作:用蠟筆在載玻片上劃分方格,取30 μL血清樣本于方格內(nèi),滴加等量布魯氏桿菌病虎紅平板抗原,用牙簽混勻,室溫靜置持續(xù)觀察結(jié)果5 min,如果血清出現(xiàn)凝集反應(yīng)(渾濁、顆粒狀或塊狀物質(zhì)),即為陽(yáng)性。

    1.2.3 SAT 取5支試管備用。第1支試管加2.3 mL濃度的0.5%石碳酸生理鹽水,第2支試管為空白對(duì)照管,不加生理鹽水;第3、4、5支試管加0.5 mL 0.5%石碳酸生理鹽水。向第1支試管中加0.2 mL血清樣本,混勻后分別取0.5 mL血清稀釋液于第2、3支試管中;將第3支試管中的混合液混勻后取0.5 mL加到第4支試管中,混勻后再?gòu)牡?支試管中取0.5 mL混合液加到第5支試管中;最后從第5支試管中取0.5 mL混合液棄去。用0.5%石碳酸生理鹽水稀釋抗原,稀釋比例1∶10,再分別將0.5 mL稀釋后的抗原加到第2~5支中(稀釋比例分別為1∶25,1∶50,1∶100,1∶200)。將5支試管充分震蕩后,放到37℃恒溫培養(yǎng)箱中20~22 h。取出試管后室溫下冷卻,觀察試管的沉淀及清亮程度,并與比濁管比對(duì)?!?”無(wú)凝集,為均勻粉紅色;“++”出現(xiàn)明顯卷邊,凝集塊間液體稍清亮;“+++”凝集反應(yīng)較強(qiáng);“++++”凝集塊呈菌叢狀,凝集塊間液體清亮明顯。比濁管的配置,見(jiàn)表1。

    表1 比濁管的配置

    1.2.4 ELISA IgG/IgM法 加100 μL標(biāo)準(zhǔn)品和已稀釋樣本于相應(yīng)反應(yīng)孔中,封板后室溫溫育60 min。移去封板紙,棄去孔中液體,用300 μL洗滌液洗板3次,在吸水紙上拍干,在每1微孔中加入100 μL酶聯(lián)物。封板后室溫溫育30 min。移去封板紙,棄去孔中液體,再次用300 μL洗滌液洗板3次。每孔加TMB底物液100 μL,室溫避光溫育20 min。之后在每一微孔中加入100 μLTMB終止液以終止底物反應(yīng)。輕輕搖動(dòng)微孔板以使試劑混合均勻。加終止液后60 min內(nèi)在450 nm處測(cè)OD值。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件完成數(shù)據(jù)分析。一致性采用Kappa檢驗(yàn)(Kappa>0.75表明一致性極好,Kappa在0.4~0.75內(nèi)表明一致性較為理想,Kappa<0.4表明一致性差);受試者工作特征(ROC)曲線(xiàn)計(jì)算每種方法的敏感度、特異度。

    2 結(jié)果

    2.1 4種方法檢測(cè)58例患者血清結(jié)果 膠體金試劑條、RBPT、SAT、ELISA IgG/IgM法檢測(cè)58例患者血清,結(jié)果顯示,膠體金試紙條法檢測(cè)布魯氏桿菌IgG抗體呈陽(yáng)性12例(20.69%),RBPT檢測(cè)出16例陽(yáng)性(27.59%),SAT檢測(cè)出11例陽(yáng)性(18.97%),ELISA IgG/IgM法檢測(cè)布魯氏桿菌呈陽(yáng)性12例(20.69%),見(jiàn)表2。

    表2 4種方法檢測(cè)58例患者血清結(jié)果

    2.2 4種方法診斷結(jié)果及效能分析 以4種方法檢查結(jié)果為基礎(chǔ),進(jìn)行診斷效能的計(jì)算,結(jié)果顯示:RBPT檢測(cè)出敏感度100.00%、特異度89.36%、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值68.75%、陰性預(yù)測(cè)值100%;膠體金試紙條法檢測(cè)出敏感度81.82%、特異度93.62%、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值75.00%、陰性預(yù)測(cè)值95.65%;ELISA IgG/IgM法檢測(cè)出敏感度100.00%、特異度97.87%、陽(yáng)性預(yù)測(cè)值91.67%、陰性預(yù)測(cè)值100.00%,見(jiàn)表3、表4。

    表3 4種方法檢查結(jié)果

    表4 4種方法診斷效能(%)

    2.3 ROC曲線(xiàn) 膠體金試紙條ROC曲線(xiàn)下漸進(jìn)95%置信區(qū)間為[0.737,1.000],RBPT試驗(yàn)ROC曲線(xiàn)下漸進(jìn)95%置信區(qū)間為[0.891,1.000],ELISA IgG/IgM法試驗(yàn)ROC曲線(xiàn)下漸進(jìn)95%置信區(qū)間為[0.965,1.000],見(jiàn)圖1。

    圖1 ROC曲線(xiàn)

    2.4 4種方法可靠性及項(xiàng)間相關(guān)性分析 4種方法一致性分析采用Fleiss Kappa,且Fleiss Kappa值為0.934。各項(xiàng)之間相關(guān)性分析結(jié)果顯示,膠體金試紙條法與SAT之間的相關(guān)性為0.730,RBT與SAT之間的相關(guān)性為0.784,ELISA IgG/IgM法與SAT之間的相關(guān)性為0.947,見(jiàn)表5。

    表5 4種方法可靠性及項(xiàng)間相關(guān)性分析

    3 討論

    布魯氏菌病是國(guó)家二類(lèi)動(dòng)物疫病,也是人畜共患疾病,對(duì)養(yǎng)殖業(yè)和人類(lèi)健康的危害特別大[2]。每年的第1季度末、第2季度初期和第3季度是布魯氏菌傳播的高峰期,應(yīng)嚴(yán)格對(duì)動(dòng)物進(jìn)行檢疫工作、疫苗接種,定期抽檢調(diào)查動(dòng)物及養(yǎng)殖場(chǎng)內(nèi)的環(huán)境質(zhì)量[3]。檢疫工作一般選擇細(xì)菌學(xué)診斷、全乳環(huán)狀實(shí)驗(yàn)和血清凝集試驗(yàn)[4]。檢疫工作時(shí)如若發(fā)現(xiàn)可疑目標(biāo),立即采取隔離觀察或無(wú)害化處理,及時(shí)有效阻斷布魯氏桿菌的傳播。因此,采用科學(xué)有效的實(shí)驗(yàn)室檢查方法檢測(cè)布魯氏桿菌十分必要。

    本文采用膠體金試紙條、RBPT、ELISA IgG/IgM法和SAT檢測(cè)布魯氏桿菌,結(jié)果表明:膠體金試紙條快速檢測(cè)試驗(yàn)和RBPT為定性試驗(yàn),準(zhǔn)確度略低,易出現(xiàn)假陽(yáng)性,但是檢測(cè)速度快,可做大批量篩查;SAT和ELISA(IgG/IgM)法為定量試驗(yàn),準(zhǔn)確度高,但是SAT檢測(cè)時(shí)間長(zhǎng),ELISA IgG/IgM法價(jià)格比較貴。4種方法有各自的優(yōu)缺點(diǎn),分析原因如下:膠體金試紙條法假陽(yáng)性常見(jiàn)原因主要包括布魯氏桿菌抗原間交叉反應(yīng)、血清中的內(nèi)、外源性物質(zhì)干擾等。文獻(xiàn)報(bào)道內(nèi)源性干擾物質(zhì)包括類(lèi)風(fēng)濕因子、嗜異性抗體、人抗動(dòng)物抗體等,容易造成膠體金假陽(yáng)性[5]。外源性干擾物質(zhì)包括標(biāo)本凝固不全便開(kāi)始離心,血清中殘留的纖維蛋白原黏附在硝酸纖維素膜上造成假陽(yáng)性;此外試劑本身質(zhì)量問(wèn)題、溶血、乳糜血等原因均可對(duì)膠體金檢測(cè)結(jié)果造成干擾[6]。膠體金雙抗原夾心法、免疫層析法則容易產(chǎn)生假陰性。

    RBPT主要檢測(cè)項(xiàng)目是IgG抗體,具有較高的敏感度,且有操作簡(jiǎn)便、成本低廉、出結(jié)果快的優(yōu)點(diǎn),可用于大規(guī)模普查[7]。但是該方法易出現(xiàn)假陽(yáng)性,會(huì)造成不必要的經(jīng)濟(jì)損失,并且加大工作人員的工作量[8]。相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道,布魯氏桿菌細(xì)胞壁脂多糖上的O-鏈抗原作為RBPT檢測(cè)的診斷靶點(diǎn),與大腸桿菌O157、沙門(mén)氏桿菌等O-鏈抗原具有高度相似性,容易發(fā)生交叉凝集反應(yīng)導(dǎo)致假陽(yáng)性[9]。抗原質(zhì)量是影響RBPT結(jié)果的關(guān)鍵因素。此外,反應(yīng)溫度、時(shí)間、抗凝劑、纖維蛋白原和藥物易對(duì)RBPT產(chǎn)生假陽(yáng)性。根據(jù)布魯氏菌病診斷標(biāo)準(zhǔn)(WS 269-2007)[10]要求反應(yīng)在30 ℃、5 min后判斷結(jié)果。有研究證明,虎紅平板表面溫度會(huì)對(duì)試驗(yàn)結(jié)果造成影響。商品化的紙質(zhì)反應(yīng)板難以控制溫度,可通過(guò)加熱玻璃反應(yīng)板消除溫度對(duì)實(shí)驗(yàn)造成的影響[11]。每次試驗(yàn)時(shí)須設(shè)立陰、陽(yáng)性對(duì)照,在規(guī)定的時(shí)間范圍內(nèi)完成檢測(cè)。血清樣本放置的時(shí)間越長(zhǎng)、溫度越低,假陽(yáng)性率越高??鼓难獫{中含有纖維蛋白原,帶有正電荷的纖維蛋白原與帶有負(fù)電荷的虎紅發(fā)生靜電結(jié)合,形成肉眼可見(jiàn)的超分子反應(yīng)[12]。相比之下,SAT不受樣本類(lèi)型的影響,血清和血漿樣本的檢測(cè)結(jié)果一致。因此,RBPT試驗(yàn)采血時(shí)必須使用促凝管,要求血清樣本新鮮透亮、無(wú)細(xì)菌污染和溶血,在規(guī)定溫度和時(shí)間下進(jìn)行檢測(cè)。

    ELISA相對(duì)RBPT和膠體金試紙條法敏感度和特異度更高,可避免人工操作帶來(lái)的誤差。該方法通過(guò)檢測(cè)血清中的IgG、IgM,可有效鑒別急性、慢性布魯氏菌病。但是,布魯氏菌和小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌0∶9的脂多糖在ELISA試驗(yàn)上可發(fā)生抗原交叉反應(yīng),常規(guī)上使用ELISA抑制試驗(yàn)測(cè)定布魯氏菌屬和耶爾森氏菌屬抗體的特異度,并且該方法成本高,不適用于現(xiàn)場(chǎng)檢查[13]。

    SAT作為國(guó)際上推薦使用的檢測(cè)方法,被當(dāng)作布魯氏菌病的確證試驗(yàn)。該方法不易受到非特異度抗體的干擾,假陰性檢出率低,具有較高的敏感度和特異度,適用于布魯氏桿菌臨床診斷[14]。但是,SAT主要檢測(cè)IgM類(lèi)抗體,其維持時(shí)間較IgG抗體短,所以SAT陽(yáng)性檢出率低于RBPT。此外,SAT易受到人為因素的干擾,操作時(shí)間長(zhǎng),耗時(shí)24 h以上,檢測(cè)時(shí)需用大量血清和布魯氏桿菌凝集抗原。

    綜上所述,在臨床實(shí)際血清學(xué)檢查的工作中,RBPT敏感度高,ELISA敏感度高且特異度強(qiáng)。四種試驗(yàn)方法有各自的優(yōu)缺點(diǎn),可結(jié)合使用快速診斷布魯氏菌病。另外,應(yīng)該配合臨床其他檢查手段,比如超聲、CT等綜合判斷布魯氏菌病。最后,在治療的過(guò)程中,應(yīng)該科學(xué)治療,對(duì)癥下藥,醫(yī)患雙方積極配合,做到早發(fā)現(xiàn)、早診斷、早治療。

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