陶芬,張饒,廖琦,李芬仙,劉壘成,姜玉莎,苗睿,吳培福
(1.西南林業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,昆明,650224;2.云南野生動(dòng)物園,昆明,650225)
在過去的幾十年里,抗生素廣泛應(yīng)用于畜牧業(yè)和養(yǎng)殖業(yè)的疾病預(yù)防、治療與促進(jìn)生長(zhǎng),隨著經(jīng)濟(jì)和社會(huì)的進(jìn)步,人們對(duì)抗生素的耐藥性也越來越重視。細(xì)菌耐藥性的傳播在很大程度上是由水平基因轉(zhuǎn)移引起的,耐藥基因常通過某些遺傳元件(如質(zhì)粒、轉(zhuǎn)座子)傳遞。整合子能夠捕獲并表達(dá)外源基因,可將耐藥基因整合到移動(dòng)元件中,在耐藥基因的轉(zhuǎn)移過程中發(fā)揮重要作用,是衡量耐藥基因水平轉(zhuǎn)移的一項(xiàng)重要指標(biāo)。抗生素的使用對(duì)人和動(dòng)物腸道微生物群的組成有很大影響,越來越多的學(xué)者[1?2]關(guān)注腸道微生物群這一天然的耐藥基因庫(kù)、水平基因轉(zhuǎn)移樞紐[3],為細(xì)菌耐藥性的發(fā)展提供了一個(gè)良好的平臺(tái),故腸道菌群中整合子及基因盒攜帶情況的分析在水平基因轉(zhuǎn)移中具有重大意義。
藍(lán)孔雀(Pavo cristatus)是一種極具觀賞性的鳥類,目前國(guó)內(nèi)關(guān)于藍(lán)孔雀疾病的研究主要集中在寄生蟲方面,包括球蟲?。??5]、絳蟲病、線蟲病和組織滴蟲?。?],尚未見關(guān)于藍(lán)孔雀整合子、基因盒的相關(guān)分析報(bào)道。動(dòng)物園作為科普宣傳基地,具有物種繁多、人員復(fù)雜和流動(dòng)性大等特點(diǎn),其細(xì)菌耐藥性的防控對(duì)公共衛(wèi)生安全具有重大意義。本研究以動(dòng)物園藍(lán)孔雀糞便為材料,提取菌群基因組DNA,檢測(cè)臨床分離株中常見整合子、基因盒的流行情況,并對(duì)其進(jìn)行水平轉(zhuǎn)移分析,以期為細(xì)菌耐藥基因水平轉(zhuǎn)移研究和藍(lán)孔雀疾病防治提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
以昆明市2 個(gè)動(dòng)物園的藍(lán)孔雀糞便為研究樣品,其中1~120 號(hào)采集于云南野生動(dòng)物園(相應(yīng)的基因盒編號(hào)為H1~H120),121~139 號(hào)采集于圓通山動(dòng)物園,共計(jì)139 份樣品。樣品采集原則:(1)被采樣藍(lán)孔雀近期未使用抗生素。(2)在早晨清理藍(lán)孔雀糞便前采集新鮮糞便,保證樣品無明顯的雜質(zhì)污染。(3)盡量無菌采集,用高壓滅菌的50 mL 離心管收集樣品,1 個(gè)樣品裝1 個(gè)離心管。(4)原則上采集不同藍(lán)孔雀?jìng)€(gè)體糞便,但動(dòng)物園藍(lán)孔雀為散養(yǎng)模式,無法做到糞便與個(gè)體的統(tǒng)一定位,故采用分散樣地采樣法,即在藍(lán)孔雀活動(dòng)的不同區(qū)域內(nèi)采集,在一定程度上避免同一個(gè)體重復(fù)采樣。(5)采集成形的、代表藍(lán)孔雀?jìng)€(gè)體的糞便,不采集混合糞便。(6)樣品采集后即時(shí)送回實(shí)驗(yàn)室,?20 ℃保存?zhèn)溆?。在同一時(shí)間段采集2 個(gè)動(dòng)物園的藍(lán)孔雀糞便樣品,在采樣期間,由于圓通山動(dòng)物園中游客量較大,導(dǎo)致藍(lán)孔雀糞便被反復(fù)踩踏,且數(shù)量較少,遵循采樣原則,僅采集到19 份樣品。
參考已有研究方法[7?9],采用蛋白酶K-CTAB-酚氯仿法提取樣品中菌群宏基因組DNA。提取過程:用丙酮、PBS 緩沖液預(yù)處理樣品,采用差速離心法去除樣品中的雜質(zhì),吸取懸浮液,離心后收集沉淀,用蛋白酶K 和溶菌酶消化細(xì)菌,最后采用酚氯仿法純化DNA。
引物參考Su等[10]研究,由上海捷瑞生物工程有限公司合成(表1)??偡磻?yīng)體系25.0 μL,其中上 游引物(10 μmol/L)1.0 μL,下游引物(10 μmol/L)1.0 μL,Taq酶1.0 μL,10×TaqBuffer 2.5 μL,dNTP Mixture(2.5 mmol/L)2.0 μL,模板DNA 2.0 μL,牛血清白蛋白(BSA)0.1 μL,ddH2O 為15.4 μL。3 類整合子(I類、Ⅱ類和Ⅲ類,即intI1、intI2和intI3)反應(yīng)程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,52 ℃退火 30 s,72 ℃延伸2 min,30 個(gè)循環(huán);72 ℃終延伸6 min。Ⅰ類整合子基因盒擴(kuò)增反應(yīng)程序:94 ℃預(yù)變性 5 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,30 個(gè)循環(huán);72 ℃終延伸6 min。配置1%瓊脂糖凝膠,吸取5 μL PCR 產(chǎn)物加入凝膠孔內(nèi),在電泳儀(120 V)上電泳30 min。觀察PCR 產(chǎn)物大小,統(tǒng)計(jì)擴(kuò)增結(jié)果。
表1 用于擴(kuò)增3類整合子的引物Tab.1 The primers used in amplifying three types of integrons
根據(jù)擴(kuò)增產(chǎn)物的大小,分別選取整合子及基因盒的PCR 產(chǎn)物,送往上海捷瑞生物工程有限公司測(cè)序,每類整合子各選取2 個(gè)樣本PCR 產(chǎn)物。研究發(fā)現(xiàn),Ⅱ類和Ⅲ類攜帶的基因盒較少,且有的基因盒較大,普通實(shí)驗(yàn)條件無法擴(kuò)增,Ⅰ類整合子基因盒有多種不同大小的PCR 擴(kuò)增片段,最小片段約為400 bp,最大片段約為2 900 bp,考慮到蛋白編碼基因和耐藥基因的平均大小,僅研究750 bp及以上的擴(kuò)增片段,并對(duì)電泳中較亮的片段進(jìn)行測(cè)序。小片段可能為空整合子,空整合子一般不攜帶耐藥基因,但存在再次整合可移動(dòng)耐藥基因的可能性。
下載NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中的細(xì)菌基因組數(shù)據(jù)及其注釋,比對(duì)所測(cè)序列和數(shù)據(jù)庫(kù)細(xì)菌基因組,找出含95%以上相似性片段的細(xì)菌基因組,查看相似片段上、下游5 kb側(cè)翼區(qū)序列,如有整合酶/重組酶、轉(zhuǎn)座子等關(guān)鍵基因,則可認(rèn)為該基因盒具有水平轉(zhuǎn)移的可能性。
用Excel 2016 整理和統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù),Chromas 軟件查看測(cè)序結(jié)果。仔細(xì)比對(duì)上、下游引物,選取測(cè)序結(jié)果一致的序列片段,利用NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中BLAST程序搜索分析測(cè)序片段的同源性,并用Excel 2016、AI 軟件和R軟件包進(jìn)行相應(yīng)的繪圖分析。
所有樣品中,intI1、intI2和intI3檢出率分別為86.33%、69.78%和11.51%。圖1 展示了云南野生動(dòng)物園和圓通山動(dòng)物園樣品中整合子流行分布特征,intI1和intI2具有相似的分布特征,而intI3在2個(gè)動(dòng)物園間存在差異(圓通山動(dòng)物園樣品中未發(fā)現(xiàn)intI3)。
圖1 3類整合子的分布特征Fig.1 The distribution patterns of three types of integrons
從樣品中擴(kuò)增出不同大小或類別的Ⅰ類整合子基因盒條帶,考慮到基因平均大小,只統(tǒng)計(jì)750 bp以上的條帶類型(其余小片段見表2)。擴(kuò)增的條帶共有18種,片段大小為750~2 900 bp。每個(gè)樣品的擴(kuò)增條帶數(shù)共有7種類型(圖2 左上角),共發(fā)現(xiàn)51種不同大小條帶的組合模式(圖2)。從樣品來源看,云南野生動(dòng)物園與圓通山動(dòng)物園樣品基因盒擴(kuò)增模式無明顯區(qū)別,即圓通山動(dòng)物園樣品組合模式分散于云南野生動(dòng)物園的樣品中,但2 條最大擴(kuò)增條帶 2 900 bp均來自圓通山動(dòng)物園的樣品中。
表2 Ⅰ類整合子小片段基因盒統(tǒng)計(jì)Tab.2 Statistics of integron Ⅰ small fragment gene cassettes
圖2 樣品基因盒的擴(kuò)增模式Fig.2 The PCR patterns of sample integrons
從Ⅰ類整合子基因盒的擴(kuò)增結(jié)果中隨機(jī)選取條帶較亮且引物二聚體較少的樣品(均為云南野生動(dòng)物園),即7 個(gè)基因盒樣品(H12、H16、H22、H26、H27、H56、H78)進(jìn)行測(cè)序,其中H12和H22樣品基因盒為aadA2基因,H16 和H56 樣品基因盒為aadA1基因,H26 和H27 樣品基因盒為dfrA27基因,H78 樣品基因盒結(jié)構(gòu)分析表明,該基因盒包含aadA2閱讀框、移碼突變的截短基因aac(6')-Ib片段和arr閱讀框,其中aadA2閱讀框具有與H22一致結(jié)構(gòu)。
在NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中,序列對(duì)比發(fā)現(xiàn),各基因盒序列與腸桿菌科(Enterobacteraceae)的多種細(xì)菌質(zhì)粒和染色體上序列片段有很高的同源性,如大腸埃希氏桿菌(Escherichia coli)、肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)和腸炎沙門氏菌(Salmonella enteritidis)等,這些菌株來自不同的動(dòng)物宿主、國(guó)家與分離樣品。部分基因盒相似序列具有共同的菌株來源,H12、H16 和H56 樣品基因盒具有相似序列,H22 和H78、H26和H27具有相似序列(表3)。
表3 各基因盒的共同相似序列(NCBI比對(duì))Tab.3 The common similarity sequence of each gene cassette(NCBI alignment)
雖然在基因盒測(cè)序結(jié)果中對(duì)序列相似性進(jìn)行了BLAST 比對(duì)分析,并在一定程度上反映了樣品基因盒在不同環(huán)境、菌種、宿主和國(guó)家的分布廣泛性,即整合子基因盒會(huì)在不同環(huán)境、菌種、宿主和國(guó)家間發(fā)生傳播,但上述分析結(jié)果只展示了部分情況,不能在所有菌門、屬或種的水平上反映基因盒分布偏向性或水平轉(zhuǎn)移宿主偏向性,也不能反映基因盒在不同宿主、環(huán)境和國(guó)家分布偏向性。耐藥基因傳播有垂直傳播和水平傳播,水平傳播對(duì)人和動(dòng)物的健康會(huì)造成巨大危害,故本研究從染色體基因組、質(zhì)粒、噬菌體和微生物組角度來分析樣品基因盒與水平轉(zhuǎn)移的相關(guān)性。
2.4.1 基于染色體、質(zhì)粒基因組的相關(guān)性
利用染色體、質(zhì)?;蚪M數(shù)據(jù)庫(kù)進(jìn)行相關(guān)分析,其中染色體基因組有95 175 個(gè),質(zhì)?;蚪M有 34 678 個(gè),經(jīng)比對(duì)分析發(fā)現(xiàn),與H16 和H56 基因盒(aadA1)、H12 和H22 基因盒(aadA2)相似性較高的序列片段主要源自變形菌門(Proteobacteria)(占絕大多數(shù))、藍(lán)細(xì)菌門(Cyanobacteria)和放線菌門(Acti?nobacteria),但aadA1、aadA2水平轉(zhuǎn)移主要發(fā)生在變形菌 門中;與H26 和H27基因盒(dfrA27)、H78(aadA2、aac(6')-Ib、arr)相似性較高的序列片段主要源自變形菌門和放線菌門,且該基因水平轉(zhuǎn)移主要發(fā)生在變形菌門的細(xì)菌間,也見于放線菌門的細(xì)菌間。由此可見,7個(gè)基因盒的水平轉(zhuǎn)移主要發(fā)生在變形菌門的細(xì)菌中,且具有共同的菌株來源(圖3),其中銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa)、肺炎克雷伯氏菌、大腸埃希氏桿菌、腸沙門氏菌(Salmonella enterica)與所有基因盒間均存在水平轉(zhuǎn)移相關(guān)性,說明了藍(lán)孔雀腸道菌群中耐藥基因主要由這幾類細(xì)菌傳播。
圖3 基因盒與染色體、質(zhì)?;蚪M的水平轉(zhuǎn)移相關(guān)性Fig.3 Correlation analysis of horizontal transfer of gene cassette in chromosome and plasmid genome
2.4.2 基于微生物、臨床基因組的相關(guān)性
在整合微生物基因組數(shù)據(jù)庫(kù)中記錄有154 974個(gè)宏基因組數(shù)據(jù),經(jīng)比對(duì)分析發(fā)現(xiàn),與環(huán)境和工程相關(guān)的環(huán)境中,共篩選到120 個(gè)宏基因組數(shù)據(jù);臨床基因組中,共篩選到192 株具有明顯臨床分離株標(biāo)注特征的基因組數(shù)據(jù)。由表4 可知,即使是不同來源(環(huán)境、臨床)的樣品(基于NCBI 比對(duì))均可進(jìn)行耐藥基因的傳遞,說明耐藥基因的跨界傳播;在不同宿主細(xì)菌中肺炎克雷伯氏菌、大腸埃希氏桿菌、腸沙門氏菌和銅綠假單胞菌是各基因組中傳遞耐藥性的主要細(xì)菌,充分說明了這些細(xì)菌在水平基因轉(zhuǎn)移中的重要性。
表4 基于環(huán)境基因組與臨床基因組的水平轉(zhuǎn)移相關(guān)性Tab.4 Horizontal transfer correlation analysis based on environmental genome and clinical genome
2.4.3 基于噬菌體基因組的相關(guān)性
在NCBI 數(shù)據(jù)庫(kù)中,病毒基因組共有11 545 個(gè),其中涉及細(xì)菌的噬菌體基因組有4 183個(gè)。同上,下載病毒基因組數(shù)據(jù),并與測(cè)序序列比對(duì),但噬菌體基因組中沒有與本研究序列相似的片段,說明基因盒基因的水平傳播主要借助質(zhì)粒、整合子和插入元件等可移動(dòng)元件。
本研 究中,intI1、intI2和intI3檢出率 分別為86.33%、69.78% 和11.51%,均與各基因流行情況[11]保持一致,但又有所不同。馮濤[12]在狐源大腸桿菌分離株中得到的intI1和intI2檢出率分別為62.77%和13.56%,intI3未檢出;王東陽等[13]對(duì)貉源大腸桿菌整合子進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)intI1檢出率為72.00%,intI2為9.33%,未檢出intI3,而本研究中3類整合子基因檢出率都較高。在大部分研究中,Ⅱ類整合子常攜帶dfrA1、sat2和aadA1,與Ⅰ類整合子相似;Ⅲ類整合子常攜帶β-內(nèi)酰胺類和氨基糖苷類耐藥基因,但該型整合子較為少見[14]。本試驗(yàn)中Ⅱ、Ⅲ類整合子都存在較高的檢出率,一方面說明宏基因組DNA 中檢出率高于單菌株,另一方面說明動(dòng)物園中藍(lán)孔雀種群存在較高耐藥性及耐藥基因轉(zhuǎn)移可能性。
Ⅰ類整合子是廣泛分布于臨床和環(huán)境中的細(xì)菌遺傳元件,尤其在革蘭氏陰性菌中[15],細(xì)菌的耐藥譜主要受其影響[16?17],故研究檢測(cè)了其攜帶的基因盒。結(jié)果顯示基因盒主要為氨基糖苷類和甲氧芐啶類耐藥基因,這2 類基因盒常在分離株中被檢測(cè)到[18]。Ⅰ類整合子基因盒組合形式有較高的多樣性[19?20],在本研究中主要表現(xiàn)為不同長(zhǎng)度條帶組合的多種譜型,組合形式共計(jì)51種,反應(yīng)了藍(lán)孔雀種群潛在多重耐藥的復(fù)雜性。
本研究中,基因盒的測(cè)序分析發(fā)現(xiàn)7 個(gè)樣品均攜帶與水平轉(zhuǎn)移相關(guān)的基因,且具有完整的基因結(jié)構(gòu)(兩端保守區(qū)域及中間可變區(qū)),因此,這些基因盒具有水平轉(zhuǎn)移的可能性。目前,有研究表征細(xì)菌中Ⅰ類整合子攜帶基因盒進(jìn)行水平轉(zhuǎn)移的過程,如陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)、沙門氏菌和大腸埃希氏桿菌[11,21?22],Yu等[11]研究中表征了Ⅰ類整合子攜帶不同類別的基因盒,并驗(yàn)證了其接合轉(zhuǎn)移的能力,進(jìn)一步說明了本研究中基因盒水平轉(zhuǎn)移特性,且這些基因水平轉(zhuǎn)移主要發(fā)生在變形菌門中,這與大多數(shù)研究結(jié)果保持一致,如Zhao等[23]研究顯示CTX-M等位基因通過水平轉(zhuǎn)移在臨床大腸埃希氏桿菌和克雷伯氏菌中廣泛傳播,Zheng等[24]將臨床分離株中具ESBL基因(blaOXA-48、blaNDM-1、blaKPC-2和blaSHV-1)的質(zhì)粒成功轉(zhuǎn)移到實(shí)驗(yàn)室大腸埃希氏桿菌中。
在不同基因組數(shù)據(jù)中,7個(gè)樣品基因盒具有相似(>95%)的來源,包括宿主、菌種、分離株和國(guó)家,說明耐藥基因水平轉(zhuǎn)移的普遍性及全球性,這些片段均具備水平基因轉(zhuǎn)移特征(具整合酶、完整的基因結(jié)構(gòu)等),基因盒可在動(dòng)物、人與環(huán)境之間傳播,與霍瑋[25]的研究結(jié)果保持一致,霍瑋在動(dòng)物園靈長(zhǎng)類(Primates)動(dòng)物活動(dòng)區(qū)域與飼養(yǎng)員體內(nèi)均發(fā)現(xiàn)了攜帶mcr-1基因的大腸埃希氏桿菌分離株(但未證實(shí)來源是飼養(yǎng)員還是環(huán)境)。另外,基因盒相似片段的來源覆蓋世界各地,耐藥基因水平轉(zhuǎn)移具全球性[26],基因盒主要通過質(zhì)粒傳播,耐藥性轉(zhuǎn)移具廣泛性,其宿主細(xì)菌主要有肺炎克雷伯氏菌、大腸埃希氏桿菌、腸沙門氏菌和銅綠假單胞菌等,這些細(xì)菌也是臨床檢測(cè)中出現(xiàn)最多的病原菌,表明這些細(xì)菌是耐藥基因的重要來源。
試驗(yàn)通常通過培養(yǎng)的方法擴(kuò)增單菌株中的耐藥基因,然而約有80%腸道微生物是無法培養(yǎng)的。本研究方法與傳統(tǒng)培養(yǎng)方法相比,具有更高的檢測(cè)靈敏度,可檢測(cè)到更多非活菌中的耐藥基因,故直接采用PCR 檢測(cè),結(jié)果會(huì)比培養(yǎng)之后的檢出率更高,這在本研究Ⅱ類、Ⅲ類整合子檢出率上得到體現(xiàn)。
綜上,Ⅰ類整合子流行性較高,攜帶有不同大小條帶的基因盒,并具水平轉(zhuǎn)移能力,動(dòng)物腸道中有密集的微生物群,發(fā)生水平基因轉(zhuǎn)移的可能性比預(yù)期還會(huì)更高,說明耐藥基因傳播的高風(fēng)險(xiǎn)性。此外,外界環(huán)境在耐藥基因的發(fā)展和傳播中起很大作用[27],本研究中,與樣品序列相似性高的來源也包括環(huán)境,環(huán)境是耐藥基因的一個(gè)重要儲(chǔ)存場(chǎng)所。