• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    HDVRNA檢測(cè)的研究現(xiàn)狀

    2023-04-29 00:44:03高耀任鋒段鐘平
    臨床肝膽病雜志 2023年4期
    關(guān)鍵詞:診斷

    高耀 任鋒 段鐘平

    摘要:HDV感染導(dǎo)致的丁型肝炎是最嚴(yán)重的肝炎類型。由于缺乏精準(zhǔn)HDV RNA檢測(cè)方法,HDV的流行率被嚴(yán)重低估。HDV RNA是診斷HDV感染的金標(biāo)準(zhǔn),在HDV的診斷、篩查和指導(dǎo)治療方面具有重要意義。但因HDV基因型多、二級(jí)結(jié)構(gòu)牢固,導(dǎo)致HDV RNA檢測(cè)困難。本文就HDV RNA診斷方法的進(jìn)展進(jìn)行綜述,闡述了HDV RNA檢測(cè)方法從定性到定量檢測(cè)的進(jìn)展,為了解HDV RNA檢測(cè)重要意義以及促進(jìn)HDV RNA檢測(cè)新方法的研發(fā)提供新思路。

    關(guān)鍵詞:δ肝炎病毒; RNA; 診斷

    基金項(xiàng)目:

    國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(81770611, 82002243); 北京自然科學(xué)基金和北京市教委聯(lián)合資助重點(diǎn)項(xiàng)目(KZ202010025035); 首都衛(wèi)生發(fā)展科研專項(xiàng)重點(diǎn)攻關(guān)項(xiàng)目(首發(fā)2020-1-1151); 北京市屬醫(yī)學(xué)科研院所公益發(fā)展改革試點(diǎn)項(xiàng)目(京醫(yī)研2021-10); 北京市衛(wèi)健委高層次公共衛(wèi)生技術(shù)人才建設(shè)項(xiàng)目“學(xué)科帶頭人”專項(xiàng)資助(SL-02-13); 北京市醫(yī)院管理中心“登峰人才”專項(xiàng)資助(DFL20221503); 首都醫(yī)科大學(xué)科研培育基金資助項(xiàng)目(PYZ22130)

    Current research status of hepatitis D virus RNA detection

    GAO Yao1,2, REN Feng1,2, DUAN Zhongping1. (1. Beijing Municipal Key Laboratory of Liver Failure and Artificial Liver Treatment Research, Beijing YouAn Hospital, Capital Medical University, Beijing 100069, China; 2. Beijing Institute of Hepatology, Beijing 100069, China)

    Corresponding author:

    DUAN Zhongping, duan2517@163.com (ORCID:0000-0002-8455-0426)

    Abstract:

    Hepatitis D caused by hepatitis D virus (HDV) infection is the most serious type of viral hepatitis. The prevalence rate of HDV has been seriously underestimated due to the lack of accurate HDV RNA detection methods. HDV RNA is the gold standard for the diagnosis of HDV infection and is of great significance in the diagnosis, screening, and treatment guidance of HDV. However, the multiple genotypes and strong secondary structure of HDV have led to great difficulties in HDV RNA detection. This article reviews the advances in HDV RNA detection methods and elaborates on the development from qualitative to quantitative detection methods, in order to provide new ideas for understanding the significance of HDV RNA detection and promoting the research and development of new HDV RNA detection methods.

    Key words:

    Hepatitis Delta Virus; RNA; Diagnosis

    Research funding:

    National Natural Science Foundation of China (81770611, 82002243); Key Projects of the Beijing Municipal Education Commissions Science and Technology Plan (KZ202010025035); Special Key Research Project of Capital Health Development Scientific Research (SF2020-1-1151); Pilot Project of Public Welfare Development and Reform of Beijing Municipal Medical Research Institutes (Beijing Medical Research No. 2021-10); High-level Public Health Technical Personnel Construction Project (Subject leaders-02-13); Talent Cultivation plan of “Climbing the peak” of Beijing Municipal Hospital Administration (DFL20221503); Research and Cultivation Foundation of Capital Medical University (PYZ22130)

    HDV是一種血源性傳播病原體,也是目前已知能夠感染人類的最小病毒[1]。HDV最初于1977年被Rizzetto等[2]首先在HBV感染相關(guān)重癥肝炎患者中發(fā)現(xiàn)。HDV是一種衛(wèi)星病毒,其感染和傳播均需要依賴HBV。因HDV感染而引起的丁型肝炎是最嚴(yán)重類型的病毒性肝炎。近年隨著HDV檢測(cè)準(zhǔn)確性的不斷提高,人們意識(shí)到HDV的流行率被嚴(yán)重低估,既往認(rèn)為丁型肝炎發(fā)病率低的看法被徹底顛覆,HDV的精準(zhǔn)檢測(cè)也逐漸成為研究熱點(diǎn)。

    1 HDV的流行率及其危害

    根據(jù)2020年的一項(xiàng)研究[1]估計(jì),全球約有1 200萬(wàn)人感染HDV。然而由于存在地區(qū)差異、人群差異、診斷方式差異,HDV的感染率被嚴(yán)重低估,后續(xù)有研究不斷更新了HDV的感染率,2021—2023年發(fā)表的薈萃分析[3-4]報(bào)道了HDV的感染人數(shù)高達(dá)5 000萬(wàn)~7 200萬(wàn)。

    目前已知感染HDV的高危因素包括靜脈吸毒(IVDU)、高危性行為(HRSB)、HIV感染、HCV感染、高發(fā)地區(qū)人口遷徙等。因此HDV的流行率存在較大的地域及人群差異。Miao等[4]通過(guò)對(duì)1980—2019年發(fā)表的研究進(jìn)行薈萃分析發(fā)現(xiàn),HDV在普通人群中的流行率約為0.80%,在HBsAg陽(yáng)性人群可高達(dá)13.02%,在靜脈吸毒人群中的流行率為37.57%,在高危性行為人群中為17.01%。2022年Chen等[3]對(duì)1990—2021年發(fā)表的研究進(jìn)行薈萃分析,發(fā)現(xiàn)在全球范圍內(nèi),HDV/HBV/HIV三重感染者占HIV感染者的7.4%,在亞洲地區(qū)HDV有更高的流行率,尤其是在中國(guó)臺(tái)灣地區(qū),HDV/HBV/HIV三重感染率甚至高達(dá)21.4%。

    HDV的流行率遠(yuǎn)超預(yù)期,HDV篩查尤其是對(duì)特殊人群的HDV檢測(cè)更加應(yīng)該引起重視。2017年歐洲肝病學(xué)會(huì)[5]和2016年亞太肝病學(xué)會(huì)[6]均建議對(duì)所有HBsAg陽(yáng)性人群進(jìn)行至少一次HDV檢測(cè)。2018年美國(guó)肝病學(xué)會(huì)[7]則建議HDV的篩查不僅應(yīng)在HBsAg陽(yáng)性人群中進(jìn)行,更應(yīng)該在HDV高危人群中規(guī)律進(jìn)行。目前大多數(shù)國(guó)家及地區(qū)采用HDV血清學(xué)檢測(cè)(即HDV抗體)為主要檢測(cè)方式。2015年世界衛(wèi)生組織(WHO)慢性乙型肝炎指南[8]建議HDV活動(dòng)期應(yīng)根據(jù)HDV抗體滴度診斷,再通過(guò)HDV RNA檢測(cè)進(jìn)行最終確診。然而根據(jù)WHO統(tǒng)計(jì),目前全球只有64.9%的HDV抗體陽(yáng)性患者接受HDV RNA檢測(cè),而非洲地區(qū)檢測(cè)率更是遠(yuǎn)低于其他地區(qū),僅有41.3%的HDV抗體陽(yáng)性患者進(jìn)行了RNA檢測(cè)[1]。造成HDV檢測(cè)率低及各地區(qū)檢測(cè)率不同的原因,除了不同國(guó)家醫(yī)療水平存在差異,患者及醫(yī)療工作者對(duì)HDV的認(rèn)識(shí)不同以外,更要?dú)w因于HDV檢測(cè)方式及檢測(cè)精準(zhǔn)度存在巨大差異。

    2 HDV特征及其對(duì)RNA檢測(cè)的影響

    HDV顆粒直徑為36 nm,基因組長(zhǎng)度約1.7 kb,可編碼兩種形式的丁型肝炎抗原(HDAg),即小HDAg(S-HDAg)和大HDAg(L-HDAg)。S-HDAg是啟動(dòng)和維持HDV RNA復(fù)制所必需;L-HDAg可抑制HDV復(fù)制,對(duì)于病毒顆粒的組裝至關(guān)重要[9]。HDV僅在肝細(xì)胞核中復(fù)制,其病毒顆粒存在缺陷,故HDV的復(fù)制依賴于HBV。作為一種包膜蛋白,HBsAg允許HDV進(jìn)入肝細(xì)胞。HDV和HBV首先與肝細(xì)胞表面的硫酸乙酰肝素蛋白聚糖結(jié)合,通過(guò)?;悄懰徕c協(xié)同轉(zhuǎn)運(yùn)多肽(NTCP)進(jìn)入宿主細(xì)胞[10]。在發(fā)生細(xì)胞膜融合后,核糖核蛋白(RNP)復(fù)合物被釋放并進(jìn)一步被轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞核,在細(xì)胞核內(nèi)S-HDAg的mRNA被轉(zhuǎn)錄和翻譯。進(jìn)入細(xì)胞核的RNA基因組(HDV-G)作為第一次滾動(dòng)環(huán)擴(kuò)增的模板參與復(fù)制,所產(chǎn)生的反式基因組RNA(HDV-AG)聚合物被核酶切割并連接成環(huán)狀單體。使用HDV-AG作為模板,合成HDV基因組RNA聚合物,并進(jìn)一步裂解形成單體。細(xì)胞腺苷脫氨酶1通過(guò)調(diào)節(jié)HDV-AG來(lái)調(diào)控L-HDAg的轉(zhuǎn)錄和翻譯[9]。S-HDAg和L-HDAg被轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞核,進(jìn)一步調(diào)節(jié)病毒復(fù)制或與HDV RNA結(jié)合形成RNP。含有HDV基因組RNA的RNP可以通過(guò)L-HDAg和HBsAg相互作用,輸出到細(xì)胞質(zhì)并包裹在HBV包膜中。HDV顆粒通過(guò)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)-高爾基體分泌途徑釋放。除了依賴HBV包膜的感染方式,HDV還可以在有絲分裂期間直接在細(xì)胞之間轉(zhuǎn)移可復(fù)制的HDV RNA[11]。HDV有8種基因型,同一基因型分離株之間的差異小于16%,而不同基因型分離株差異可高達(dá)40%[12]。HDV的這一特征也是導(dǎo)致HDV RNA檢測(cè)困難的主要原因之一。

    3 HDV RNA檢測(cè)的臨床意義

    HDV感染形式有2種。(1)合并感染:HDV和HBV同時(shí)感染宿主引起急性病毒性肝炎;(2)雙重感染:HBsAg攜帶者或慢性HBV感染者重復(fù)感染HDV導(dǎo)致慢性病毒性肝炎[13]。與慢性乙型肝炎相比,重疊感染HDV的患者發(fā)生肝硬化、肝功能失代償以及肝細(xì)胞癌的風(fēng)險(xiǎn)增加2倍,在慢性乙型肝炎、肝硬化及肝細(xì)胞癌人群中,HDV的流行率分別高達(dá)26.75%、25.77%和19.80%[14]。

    HDV有獨(dú)特的肝內(nèi)傳播方式。其需要HBV編碼的包膜蛋白進(jìn)行傳播和重新進(jìn)入肝細(xì)胞,HDV也可以通過(guò)細(xì)胞分裂傳播。進(jìn)入肝細(xì)胞后,HDV RNA的復(fù)制中間體被模式識(shí)別受體MDA5感知,誘導(dǎo)IFNβ/λ分泌。IFN的分泌強(qiáng)烈抑制了HDV基因組細(xì)胞分裂介導(dǎo)的肝內(nèi)病毒傳播。然而IFN不能影響靜止期肝細(xì)胞中的HDV RNA復(fù)制。因此在HDV的臨床治療中,IFNα/λ單藥治療有效,但很少能清除HDV。HDV感染途徑及肝內(nèi)復(fù)制方式的廣泛研究,明確了治療HDV的關(guān)鍵在于降低HDV滴度和HBsAg水平。既往HDV感染者的治療方式以PEG-IFNα治療為主,但是PEG-IFNα治療效果差,只有約20%的患者出現(xiàn)治療應(yīng)答,且?guī)?lái)的諸多副作用也增加了治療難度[15]。近年來(lái),3類新型抗HDV藥物先后進(jìn)行了臨床試驗(yàn),分別為進(jìn)入肝細(xì)胞抑制劑Bulevirtide(BLV)、戊烯化抑制劑(LNF)和HBsAg分泌抑制劑(核酸多聚體REP2139)。其中BLV已于2020年在歐洲作為治療HDV的藥物獲批上市。BLV可模仿L-HBsAg的NTCP受體結(jié)合結(jié)構(gòu)域,抑制HBV/HDV進(jìn)入肝細(xì)胞。研究[16]表明,BLV單獨(dú)用藥或與IFN等聯(lián)合使用均可明顯降低血清中HDV的病毒載量。皮下注射BLV 24周以上,68%~72%的患者出現(xiàn)HDV RNA載量降低(≥2 log10 IU/mL),但BLV不能降低HBsAg的水平。新型藥物單獨(dú)或與IFN的聯(lián)合使用或許能為HDV患者帶來(lái)治愈的曙光。

    盡管HDV感染的潛在機(jī)制尚不完全清楚,但HDV負(fù)荷量可以在一定程度上影響肝臟疾病的進(jìn)程。此外,目前尚無(wú)有效的HDV治療方法。因此,亟需開(kāi)發(fā)一種經(jīng)濟(jì)、靈敏且特異性強(qiáng)的HDV RNA檢測(cè)方法,以監(jiān)測(cè)疾病的發(fā)生發(fā)展和評(píng)價(jià)治療效果。

    4 HDV血清學(xué)檢測(cè)方法及其不足

    從傳統(tǒng)意義上來(lái)說(shuō),病毒性疾病的診斷依賴于直接通過(guò)檢測(cè)完整病毒或其成分(蛋白質(zhì)或核酸)或通過(guò)間接血清學(xué)檢查以檢測(cè)病毒抗原或抗體。在HDV被發(fā)現(xiàn)后不久,相應(yīng)的抗原/抗體檢測(cè)方式被迅速研發(fā)。目前,抗體檢測(cè)常被用作HDV感染的初步篩查,通過(guò)酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)或放射免疫測(cè)定檢測(cè)HDAg抗體,通常檢測(cè)抗-HD IgM和抗-HD IgG。在出現(xiàn)癥狀后的2~3周可檢測(cè)到抗-HD IgM,在急性HDV感染2個(gè)月后消失[17]。然而,在慢性HDV感染者急性發(fā)作期間,患者的抗-HD IgM也會(huì)升高,因此檢測(cè)抗-HD IgM不能明確區(qū)分急性和慢性HDV感染。急性HDV感染者的緩解期和慢性HDV感染者均出現(xiàn)抗-HD IgG,在病毒清除后抗體可持續(xù)存在較長(zhǎng)時(shí)間,因此難以區(qū)分HDV的現(xiàn)癥感染和既往感染。因此目前認(rèn)為HDV RNA檢測(cè)陽(yáng)性是確診HDV的金標(biāo)準(zhǔn)。檢測(cè)HDV RNA的方法如聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR),具有高特異性、高靈敏度的特點(diǎn)。除了具有極高的診斷價(jià)值,HDV RNA的病毒載量檢測(cè)對(duì)于鑒別HDV基因型、確定治療方案、追蹤治療效果等方面亦具有較高的指導(dǎo)意義。因此WHO推薦所有HDV抗體陽(yáng)性的患者均應(yīng)進(jìn)行HDV RNA檢測(cè)。

    5 HDV RNA檢測(cè)的方法及局限性

    5.1 逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR) PCR技術(shù)是分子生物學(xué)最偉大的成就之一,由Kary B. Mullis在1983年發(fā)明,并因此獲得了1993年的諾貝爾獎(jiǎng)。RT-PCR原理是在體外模擬遺傳物質(zhì)的天然復(fù)制,以微量的核酸模板擴(kuò)增得到大量的特定DNA片段。1985年,Randall K. Saiki等研究者首次將PCR技術(shù)用于臨床疾病診斷,其使用PCR技術(shù)檢測(cè)鐮狀細(xì)胞性貧血和β-地中海貧血。此后,PCR也被用于HDV檢測(cè)。1990年,法國(guó)學(xué)者Zignego等[18]發(fā)表相關(guān)研究,確定了應(yīng)用PCR技術(shù)進(jìn)行HDV RNA檢測(cè)、克隆和測(cè)序的可行性,證明了PCR在診斷HDV感染、快速合成HDV探針和分析病毒遺傳變異方面具有重要價(jià)值。同一年,西班牙學(xué)者M(jìn)adejón等[19]驗(yàn)證了RT-PCR檢測(cè)HDV RNA在臨床中的可行性。該研究通過(guò)檢測(cè)梯度稀釋的HDV RNA,用RT-PCR產(chǎn)物進(jìn)行Southern印記雜交,證明RT-PCR檢測(cè)比狹縫雜交技術(shù)(slot-blot hybridization)靈敏10 000倍。該團(tuán)隊(duì)繼續(xù)將RT-PCR技術(shù)應(yīng)用于臨床,進(jìn)行了更大數(shù)量的臨床標(biāo)本驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)慢性HDV感染過(guò)程中不同HDV復(fù)制水平以及低水平的HDV復(fù)制與ALT之間存在相關(guān)性,表明PCR技術(shù)在檢測(cè)HDV復(fù)制中具有重要的應(yīng)用價(jià)值[20]。越來(lái)越多的研究者將PCR應(yīng)用于HDV的研究,HDV RNA檢測(cè)的靈敏度和特異度不斷提升,操作步驟也被逐漸優(yōu)化。

    5.2 實(shí)時(shí)定量逆轉(zhuǎn)錄PCR(RT-qPCR) 為進(jìn)一步提高PCR的精準(zhǔn)度及實(shí)現(xiàn)核酸定量,研發(fā)了RT-qPCR技術(shù)。RT-qPCR是指在PCR反應(yīng)中加入熒光物質(zhì),通過(guò)檢測(cè)熒光信號(hào)來(lái)實(shí)時(shí)判斷核酸擴(kuò)增情況,而后通過(guò)Ct值和標(biāo)準(zhǔn)曲線對(duì)模板RNA進(jìn)行定量分析,以達(dá)到對(duì)樣品進(jìn)行實(shí)時(shí)定量檢測(cè)的目的。根據(jù)熒光信號(hào)來(lái)源的不同,可分為熒光染料法(SYBR Green)和探針?lè)ǎ═aqman)。染料法成本較低,應(yīng)用廣泛;探針?lè)`敏性和特異性更強(qiáng),但成本相對(duì)較高。迄今為止,RT-qPCR實(shí)驗(yàn)方法成熟,在核酸檢測(cè)領(lǐng)域應(yīng)用廣泛,也有公司在該方法的基礎(chǔ)上生產(chǎn)商品化試劑盒。盡管RT-qPCR在多種核酸檢測(cè)中表現(xiàn)出良好的特異性和靈敏性,但是由于HDV基因型多(8種),各基因型間的序列差異較大、二級(jí)結(jié)構(gòu)牢固、GC含量和互補(bǔ)性高以及HDV存在高度遺傳變異性,設(shè)計(jì)涵蓋所有基因型的引物和探針具有極大的挑戰(zhàn)性,因此HDV RNA檢測(cè)的進(jìn)展緩慢。

    2004年日本學(xué)者Yamashiro等[21]首次使用RT-qPCR檢測(cè)了48例HBsAg和丁型肝炎抗體陽(yáng)性患者血清中的HDV RNA,不僅證明了RT-qPCR(染料法)在臨床檢測(cè)中應(yīng)用的可能,還發(fā)現(xiàn)慢性肝炎和肝硬化患者血清中HDV RNA水平明顯高于無(wú)癥狀患者,提示血清HDV RNA的病毒載量與肝病不同進(jìn)程存在相關(guān)性。然而該研究設(shè)計(jì)的引物僅能檢測(cè)HDV-2型和HDV-4型,且所用的臨床樣本量少。2005年,法國(guó)學(xué)者Le Gal等[22]進(jìn)一步改進(jìn)了反應(yīng)體系,建立了Taqman探針?lè)z測(cè)HDV RNA,可對(duì)所有基因型進(jìn)行檢測(cè),且靈敏度高,可達(dá)到100拷貝/mL,并納入了更多血清樣本(共160例,其中包括IFN治療前后不同時(shí)間點(diǎn)的76例血清標(biāo)本)進(jìn)行驗(yàn)證,研究結(jié)果顯示HDV RNA的檢測(cè)有助于幫助明確丁型肝炎患者治療前、治療中和治療后的病毒學(xué)特征,可用于慢性感染者治療方案管理以及HDV感染史的研究。此外RT-qPCR還可以用于大規(guī)模的前瞻性研究,以確定治療指南和評(píng)估新藥的治療效果。在后續(xù)的數(shù)十年內(nèi),RT-qPCR技術(shù)被廣泛應(yīng)用于HDV檢測(cè),相關(guān)研究大量涌現(xiàn),主要集中于以下5個(gè)方面。(1)用于HBV感染人群中HDV的篩查。各國(guó)家的研究者分別對(duì)韓國(guó)[23]、埃及[24]、巴基斯坦[25]、巴西[26]、澳大利亞[27]等國(guó)家及地區(qū)的HDV流行率進(jìn)行評(píng)估,使人們逐漸意識(shí)到HDV的流行率被嚴(yán)重低估。(2)用于HDV基因型的檢測(cè)。確定了不同HDV基因型的流行區(qū)域[28],并發(fā)現(xiàn)HDV-3型與肝病的不良結(jié)局存在相關(guān)性[29]。通過(guò)研究大量血清或肝組織樣本,證明了HDV RNA病毒載量與暴發(fā)性肝炎、肝衰竭和肝細(xì)胞癌的發(fā)生密切相關(guān)[14]。(3)用于監(jiān)測(cè)IFN治療效果及新藥治療效果的臨床驗(yàn)證。證明了足療程、足量使用IFN或與其他藥物聯(lián)用可以降低HDV病毒載量[30-31],也證明了新型抗HDV藥物BLV、LNF和核酸多聚體REP213均具有良好的治療效果[16]。(4)用于HDV病毒譜的分析[32]和HDV全基因組測(cè)序[33],為理解HDV重組和明確HDV感染機(jī)制提供了幫助。(5)各研究者或公司用于研發(fā)商業(yè)檢測(cè)試劑盒??蓪?shí)現(xiàn)標(biāo)準(zhǔn)化的一步實(shí)時(shí)逆轉(zhuǎn)錄,從臨床樣本中快速、精準(zhǔn)、定量檢測(cè)HDV[34]。

    RT-qPCR檢測(cè)是一種成熟的檢測(cè)病毒核酸的方法,但在HDV的檢測(cè)中存在一些缺陷。RT-qPCR檢測(cè)進(jìn)行RNA定量需要標(biāo)準(zhǔn)品及標(biāo)準(zhǔn)曲線。多數(shù)已發(fā)表的研究使用的陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品是HDV質(zhì)粒,但這并不能評(píng)估逆轉(zhuǎn)錄的步驟。也有研究者[35]使用體外合成的RNA作為陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)品,雖然該方法可以評(píng)估逆轉(zhuǎn)錄的步驟,但合成的RNA沒(méi)有牢固的二級(jí)結(jié)構(gòu),HDV基因組的二級(jí)結(jié)構(gòu)會(huì)影響HDV病毒載量的定量檢測(cè)。雖然WHO已經(jīng)提出了HDV RNA檢測(cè)的國(guó)際標(biāo)準(zhǔn),但檢測(cè)方法仍需要進(jìn)行內(nèi)部?jī)?yōu)化,需與待測(cè)核酸進(jìn)行共純化、共擴(kuò)增。有研究者[36]使用管家基因如β-actin和18S rRNA作為內(nèi)部對(duì)照,然而,這些RNA的濃度在不同臨床樣本中存在較大差異。此外,質(zhì)控產(chǎn)品的選擇也會(huì)影響HDV RNA定量的準(zhǔn)確性。理想的核酸質(zhì)控產(chǎn)品不僅可以用于核酸檢測(cè)過(guò)程的質(zhì)量控制,也是評(píng)價(jià)檢測(cè)程序和對(duì)比不同實(shí)驗(yàn)室結(jié)果的重要基礎(chǔ)。目前,RNA病毒的質(zhì)控產(chǎn)品多為裸露的RNA片段或完整的病毒顆粒。裸露的RNA片段很容易被環(huán)境中的RNase降解,而完整的病毒顆粒作為質(zhì)控樣品存在安全隱患。滅活藥物雖然可以降低傳染性,但病毒滅活試劑(如甲醛)會(huì)破壞病毒核酸,影響核酸的提?。?7]。理想的RNA質(zhì)控產(chǎn)品應(yīng)可以長(zhǎng)期穩(wěn)定的保存RNA。裝甲R(shí)NA技術(shù)可以克服RNA的不穩(wěn)定性,已廣泛應(yīng)用于RNA病毒核酸質(zhì)控產(chǎn)品的研究。2016年,國(guó)際上首次對(duì)血漿HDV RNA定量進(jìn)行了外部質(zhì)量評(píng)估。對(duì)來(lái)自全球17個(gè)國(guó)家的28個(gè)實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行綜合分析,結(jié)果表明,由于檢測(cè)技術(shù)和程序的差異以及設(shè)計(jì)的引物/探針目標(biāo)區(qū)域的不同,結(jié)果具有高度異質(zhì)性[38]。因此,有必要建立一個(gè)國(guó)際通用的HDV RNA定量檢測(cè)體系。

    5.3 逆轉(zhuǎn)錄環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(RT-LAMP) LAMP是1998年由日本Eiken Chemical公司研發(fā),該技術(shù)改善了PCR的部分不足。與PCR相比,LAMP具有以下優(yōu)點(diǎn):(1)反應(yīng)快速、靈敏性高??梢栽诙虝r(shí)間內(nèi)(<1 h)將DNA的擴(kuò)增數(shù)量增加到10億,而PCR只能擴(kuò)增到100萬(wàn)。(2)不依賴大型儀器或設(shè)備。LAMP可以不依賴大型儀器設(shè)備,僅需要干式加熱器或水浴鍋進(jìn)行加熱即可進(jìn)行反應(yīng)。(3)特異性高。LAMP的優(yōu)點(diǎn)在于其高特異性,這是由于LAMP需要使用4~6種引物,可以識(shí)別DNA模板上8個(gè)以上的特定位點(diǎn),相比之下,PCR只能識(shí)別2個(gè)位點(diǎn)。(4)結(jié)果判讀方便。LAMP的產(chǎn)物可以在反應(yīng)結(jié)束后立即用肉眼觀察,甚至在反應(yīng)進(jìn)行時(shí)也可以觀察到(如產(chǎn)生肉眼可見(jiàn)的白色沉淀),而不需要任何額外的步驟。盡管LAMP已經(jīng)用于多種病毒和基因檢測(cè),但其在HDV RNA檢測(cè)方面仍屬新方法,這與HDV RNA基因型多、引物設(shè)計(jì)困難有關(guān)。Wang等[39]建立了RT-LAMP檢測(cè)方法,特異性檢測(cè)HDV-1型,該方法反應(yīng)體系僅需在65 ℃下反應(yīng)50? min,檢測(cè)下限為75 fg/μL,與常規(guī)的定性或定量PCR相比,RT-LAMP檢測(cè)靈敏度提高了1? 000倍,且方法特異性高,與HIV、HAV、HBV、HCV、HEV等病毒無(wú)交叉反應(yīng)。雖然與PCR相比,該方法具有快速、靈敏度高、特異性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),但其只針對(duì)了HDV-1型,且依賴加熱設(shè)備維持反應(yīng)溫度,因此仍需進(jìn)一步優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件以實(shí)現(xiàn)HDV核酸即時(shí)檢測(cè)。

    5.4 微滴式數(shù)字PCR(ddPCR) ddPCR是在傳統(tǒng)定量qPCR基礎(chǔ)上研發(fā)的新一代技術(shù),可以對(duì)RNA進(jìn)行定量。ddPCR的主要原理是利用微流控技術(shù)生成油包水乳化微滴顆粒,以每個(gè)油包水的微滴小顆粒作為反應(yīng)體系,進(jìn)行PCR擴(kuò)增及后續(xù)熒光檢測(cè)。與96孔/384孔qPCR相比,ddPCR可以增加反應(yīng)體系的數(shù)量,精簡(jiǎn)操作步驟。ddPCR具有技術(shù)成熟、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn),是目前應(yīng)用最廣泛的PCR技術(shù)之一。ddPCR的關(guān)鍵步驟有微滴生成、微滴操控、微滴檢測(cè)。ddPCR微滴發(fā)生器可將帶熒光的PCR反應(yīng)體系分隔成數(shù)千甚至上萬(wàn)個(gè)納升級(jí)的微滴,RNA分子在各微滴顆粒中隨機(jī)分布,每個(gè)微滴顆粒都是一個(gè)獨(dú)立的PCR反應(yīng)體系。經(jīng)PCR擴(kuò)增后,分析儀對(duì)每個(gè)微滴顆粒進(jìn)行檢測(cè),將熒光模擬信號(hào)數(shù)字化,有熒光信號(hào)的微滴判讀為“1”,無(wú)熒光信號(hào)的微滴判讀為“0”;根據(jù)泊松分布原理以及陽(yáng)性微滴的比例,最終通過(guò)分析軟件直接給出目標(biāo)核酸分子的拷貝數(shù)濃度,因此不需要檢測(cè)熒光信號(hào)與設(shè)定閾值線的交點(diǎn),完全不依賴于Ct值的鑒定,所以ddPCR受擴(kuò)增效率的影響大幅度降低,對(duì)PCR反應(yīng)抑制物的耐受能力大幅度提高[40-41]。與qPCR相比,ddPCR具有以下優(yōu)點(diǎn):(1)ddPCR的定量不需要標(biāo)準(zhǔn)曲線;(2)ddPCR檢測(cè)RNA比qPCR具有更高的靈敏性和特異性。目前ddPCR的相關(guān)方法建立及臨床驗(yàn)證已陸續(xù)在HIV、HBV以及新冠病毒中開(kāi)展[41-43]。

    2022年,先后有兩項(xiàng)研究[44-45]通過(guò)ddPCR技術(shù)建立了HDV RNA的檢測(cè)方法并進(jìn)行了臨床驗(yàn)證。意大利學(xué)者Olivero等[44]檢測(cè)HDV質(zhì)粒及20例HDV陽(yáng)性患者的血清樣本,對(duì)比了RT-qPCR與ddPCR的靈敏性及特異性。結(jié)果發(fā)現(xiàn)在使用相同引物和探針(涵蓋HDV的8種基因型)的情況下,RT-qPCR與ddPCR的靈敏性、特異性和檢測(cè)下限相似。然而在研究中,ddPCR的檢測(cè)范圍與RT-qPCR存在差異。RT-qPCR的線性范圍為1×10~1×108 IU/mL,ddPCR定量線性動(dòng)態(tài)范圍為1×10~1×106 IU/mL。這與ddPCR的定量方式有關(guān),在較高的RNA濃度下(1×107和1×108 IU/mL),反應(yīng)被過(guò)量的目標(biāo)分子飽和,而檢測(cè)到的陰性樣本量較少,無(wú)法應(yīng)用泊松分布來(lái)計(jì)算起始樣品中靶分子的含量。同年,我國(guó)學(xué)者Xu等[45]通過(guò)使用ddPCR檢測(cè)梯度稀釋的HDV全基因型的通用質(zhì)粒(pMD19T),證明所建立方法的檢測(cè)下限(0.29 IU/mL vs 650.00 IU/mL)和定量檢測(cè)下限(76 IU/mL vs 7 315.82 IU/mL)均優(yōu)于RT-qPCR。該研究同時(shí)使用ddPCR和RT-qPCR檢測(cè)44例(30例HDV感染和14例HBV感染)患者血清樣本,證明ddPCR的特異性優(yōu)于RT-qPCR(24/44 vs 10/44)。此外,Xu等還應(yīng)用3種檢測(cè)方法(ELISA、RT-qPCR及ddPCR)對(duì)728例HBV陽(yáng)性患者的血清樣本進(jìn)行了HDV篩查,在慢性乙型肝炎、肝硬化、肝細(xì)胞癌和,ELISA檢測(cè)的HDV抗體陽(yáng)性率分別為1.1%、3.3%、2.7%和7.1%,RT-qPCR檢測(cè)HDV RNA陽(yáng)性率分別為0、16.67%、15.4%和20%,ddPCR檢測(cè)HDV陽(yáng)性率分別為0、33.33%、30.77%和60%。證明ddPCR和RT-qPCR的技術(shù)性能具有高度的可比性,并且提示在肝衰竭患者中存在更高的HDV陽(yáng)性率。以上研究表明,ddPCR是一種可重復(fù)性高、不需要標(biāo)準(zhǔn)曲線以及操作簡(jiǎn)便的方法,具有廣闊的臨床應(yīng)用前景。

    6 展望

    越來(lái)越多的流行病學(xué)研究表明,HDV的全球患病率遠(yuǎn)高于先前的估計(jì)值。HDV感染的快速實(shí)驗(yàn)室診斷對(duì)于識(shí)別、監(jiān)測(cè)和控制疾病傳播具有重要的意義。RNA檢測(cè)是診斷HDV的金標(biāo)準(zhǔn),亦是監(jiān)測(cè)HDV治療效果的重要指標(biāo)。目前,不同的HDV RNA檢測(cè)方法靈敏度差異較大,主要原因在于缺乏國(guó)際統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)來(lái)比較不同實(shí)驗(yàn)室之間的檢測(cè)結(jié)果。不同實(shí)驗(yàn)室及技術(shù)人員在HDV RNA提取、逆轉(zhuǎn)錄和定量等一系列操作過(guò)程中存在差別,因此需要開(kāi)發(fā)新的檢測(cè)方法,建立標(biāo)準(zhǔn)化程序,例如樣本類型、提取方法、引物/探針設(shè)計(jì)、使用儀器和報(bào)告數(shù)據(jù)方式等,以進(jìn)一步提高靈敏度和特異度,降低假陰性率,更早地識(shí)別丁型肝炎患者,及時(shí)控制HDV傳播。

    此外,低收入和中等收入國(guó)家或地區(qū)的醫(yī)療保健體系不完善,對(duì)HDV的認(rèn)識(shí)不足,普及HDV感染的嚴(yán)重性,進(jìn)行HDV篩查,以推動(dòng)丁型肝炎的早期檢測(cè)、早期診斷、早期治療,對(duì)降低丁型肝炎的危害,減輕醫(yī)療負(fù)擔(dān)有重大意義。部分HDV的高發(fā)區(qū)地處偏遠(yuǎn),缺乏大型儀器設(shè)備和專業(yè)人員進(jìn)行檢測(cè),因此研發(fā)快速、便捷、不依賴儀器設(shè)備及對(duì)檢測(cè)人員要求低的HDV檢測(cè)新方法,以實(shí)現(xiàn)HDV的即時(shí)檢測(cè),是未來(lái)的主要研發(fā)重點(diǎn)。

    利益沖突聲明:所有作者均聲明不存在利益沖突。

    作者貢獻(xiàn)聲明:高耀負(fù)責(zé)撰寫(xiě)論文;任鋒、段鐘平負(fù)責(zé)擬定寫(xiě)作思路并最后定稿。

    參考文獻(xiàn):

    [1]

    STOCKDALE AJ, KREUELS B, HENRION M, et al. The global prevalence of hepatitis D virus infection: Systematic review and meta-analysis[J]. J Hepatol, 2020, 73(3): 523-532. DOI: 10.1016/j.jhep.2020.04.008.

    [2]RIZZETTO M, CANESE MG, ARIC S, et al. Immunofluorescence detection of new antigen-antibody system (delta/anti-delta) associated to hepatitis B virus in liver and in serum of HBsAg carriers[J]. Gut, 1977, 18(12): 997-1003. DOI: 10.1136/gut.18.12.997.

    [3]CHEN S, REN F, HUANG X, et al. Underestimated prevalence of HIV, hepatitis B virus (HBV), and hepatitis D virus (HDV) triple infection globally: systematic review and meta-analysis[J]. JMIR Public Health Surveill, 2022, 8(11): e37016. DOI: 10.2196/37016.

    [4]MIAO Z, ZHANG S, OU X, et al. Estimating the global prevalence, disease progression, and clinical outcome of hepatitis delta virus infection[J]. J Infect Dis, 2020, 221(10): 1677-1687. DOI: 10.1093/infdis/jiz633.

    [5]European Association for the Study of the Liver. EASL 2017 Clinical Practice Guidelines on the management of hepatitis B virus infection[J]. J Hepatol, 2017, 67(2): 370-398. DOI: 10.1016/j.jhep.2017.03.021.

    [6]SARIN SK, KUMAR M, LAU GK, et al. Asian-Pacific clinical practice guidelines on the management of hepatitis B: a 2015 update[J]. Hepatol Int, 2016, 10(1): 1-98. DOI: 10.1007/s12072-015-9675-4.

    [7]TERRAULT NA, LOK A, MCMAHON BJ, et al. Update on prevention, diagnosis, and treatment of chronic hepatitis B: AASLD 2018 hepatitis B guidance[J]. Hepatology, 2018, 67(4): 1560-1599. DOI: 10.1002/hep.29800.

    [8]WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. Guidelines for the prevention, care and treatment of persons with chronic hepatitis B infection[R]. Geneva: World Health Organization, 2015.

    [9]WONG SK, LAZINSKI DW. Replicating hepatitis delta virus RNA is edited in the nucleus by the small form of ADAR1[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2002, 99(23): 15118-15123. DOI: 10.1073/pnas.232416799.

    [10]LI J, WANDS J. Hepatitis B and D viral receptors[J]. Hepatology, 2016, 63(1): 11-13. DOI: 10.1002/hep.28131.

    [11]GIERSCH K, BHADRA OD, VOLZ T, et al. Hepatitis delta virus persists during liver regeneration and is amplified through cell division both in vitro and in vivo[J]. Gut, 2019, 68(1): 150-157. DOI: 10.1136/gutjnl-2017-314713.

    [12]DNY P. Hepatitis delta virus genetic variability: from genotypes I, II, III to eight major clades?[J]. Curr Top Microbiol Immunol, 2006, 307: 151-171. DOI: 10.1007/3-540-29802-9_8.

    [13]CAREDDA F, ROSSI E, DARMINIO MONFORTE A, et al. Hepatitis B virus-associated coinfection and superinfection with delta agent: indistinguishable disease with different outcome[J]. J Infect Dis, 1985, 151(5): 925-928. DOI: 10.1093/infdis/151.5.925.

    [14]ROMEO R, FOGLIENI B, CASAZZA G, et al. High serum levels of HDV RNA are predictors of cirrhosis and liver cancer in patients with chronic hepatitis delta[J]. PLoS One, 2014, 9(3): e92062. DOI: 10.1371/journal.pone.0092062.

    [15]WRANKE A, WEDEMEYER H. Antiviral therapy of hepatitis delta virus infection - progress and challenges towards cure[J]. Curr Opin Virol, 2016, 20: 112-118. DOI: 10.1016/j.coviro.2016.10.002.

    [16]TAN YC, LEE GH, HUANG DQ, et al. Future anti-HDV treatment strategies, including those aimed at HBV functional cure[J]. Liver Int, 2022. DOI: 10.1111/liv.15387. [Online ahead of print]

    [17]KOH C, HELLER T, GLENN JS. Pathogenesis of and new therapies for hepatitis D[J]. Gastroenterology, 2019, 156(2): 461-476. DOI: 10.1053/j.gastro.2018.09.058.

    [18]ZIGNEGO AL, DENY P, FERAY C, et al. Amplification of hepatitis delta virus RNA sequences by polymerase chain reaction: a tool for viral detection and cloning[J]. Mol Cell Probes, 1990, 4(1): 43-51. DOI: 10.1016/0890-8508(90)90038-2.

    [19]MADEJN A, CASTILLO I, BARTOLOM J, et al. Detection of HDV-RNA by PCR in serum of patients with chronic HDV infection[J]. J Hepatol, 1990, 11(3): 381-384. DOI: 10.1016/0168-8278(90)90225-g.

    [20]MADEJN A, CASTILLO I, COTONAT T, et al. Significance of low HDV replication levels during the natural history of HDV infection. Long-term follow-up[J]. J Hepatol, 1993, 17(Suppl 3): S157-S160. DOI: 10.1016/s0168-8278(05)80443-x.

    [21]YAMASHIRO T, NAGAYAMA K, ENOMOTO N, et al. Quantitation of the level of hepatitis delta virus RNA in serum, by real-time polymerase chain reaction—and its possible correlation with the clinical stage of liver disease[J]. J Infect Dis, 2004, 189(7): 1151-1157. DOI: 10.1086/382133.

    [22]LE GAL F, GORDIEN E, AFFOLABI D, et al. Quantification of hepatitis delta virus RNA in serum by consensus real-time PCR indicates different patterns of virological response to interferon therapy in chronically infected patients[J]. J Clin Microbiol, 2005, 43(5): 2363-2369. DOI: 10.1128/JCM.43.5.2363-2369.2005.

    [23]KIM HS, KIM SJ, PARK HW, et al. Prevalence and clinical significance of hepatitis D virus co-infection in patients with chronic hepatitis B in Korea[J]. J Med Virol, 2011, 83(7): 1172-1177. DOI: 10.1002/jmv.22095.

    [24]MAKHLOUF NA, MORSY KH, MAHMOUD AA. Hepatitis D virus infection among hepatitis B virus surface antigen positive individuals in Upper Egypt: Prevalence and clinical features[J]. J Infect Public Health, 2019, 12(3): 350-356. DOI: 10.1016/j.jiph.2018.12.001.

    [25]MOATTER T, ABBAS Z, SHABIR S, et al. Clinical presentation and genotype of hepatitis delta in Karachi[J]. World J Gastroenterol, 2007, 13(18): 2604-2607. DOI: 10.3748/wjg.v13.i18.2604.

    [26]SCARPONI CF, KROON EG, VIEIRA DS, et al. Molecular epidemiology of Hepatitis delta virus infection in Minas Gerais state from Brazil, an area outside the hyperendemic region of the Amazon Basin[J]. Mem Inst Oswaldo Cruz, 2019, 114: e190074. DOI: 10.1590/0074-02760190074.

    [27]JACHS M, BINTER T, SCHMIDBAUER C, et al. Hepatitis D virus (HDV) prevalence in Austria is low but causes considerable morbidity due to fast progression to cirrhosis[J]. United European Gastroenterol J, 2021, 9(10): 1119-1127. DOI: 10.1002/ueg2.12163.

    [28]RAMIA S, EL-ZAATARI M, SHARARA AI, et al. Current prevalence of hepatitis delta virus (HDV) infection and the range of HDV genotypes in Lebanon[J]. Epidemiol Infect, 2007, 135(6): 959-962. DOI: 10.1017/S0950268806007643.

    [29]MELO DA SILVA E, KAY A, LOBATO C, et al. Non-F HBV/HDV-3 coinfection is associated with severe liver disease in Western Brazilian Amazon[J]. J Med Virol, 2019, 91(6): 1081-1086. DOI: 10.1002/jmv.25411.

    [30]CASTELNAU C, LE GAL F, RIPAULT MP, et al. Efficacy of peginterferon alpha-2b in chronic hepatitis delta: relevance of quantitative RT-PCR for follow-up[J]. Hepatology, 2006, 44(3): 728-735. DOI: 10.1002/hep.21325.

    [31]WOLTERS LM, VAN NUNEN AB, HONKOOP P, et al. Lamivudine-high dose interferon combination therapy for chronic hepatitis B patients co-infected with the hepatitis D virus[J]. J Viral Hepat, 2000, 7(6): 428-434. DOI: 10.1046/j.1365-2893.2000.00254.x.

    [32]BOTELHO-SOUZA LF, SOUZA VIEIRA D, DE OLIVEIRA DOS SANTOS A, et al. Characterization of the genotypic profile of hepatitis delta virus: Isolation of HDV genotype-1 in the western Amazon region of Brazil[J]. Intervirology, 2015, 58(3): 166-171. DOI: 10.1159/000431040.

    [33]CELIK I, KARATAYLI E, CEVIK E, et al. Complete genome sequences and phylogenetic analysis of hepatitis delta viruses isolated from nine Turkish patients[J]. Arch Virol, 2011, 156(12): 2215-2220. DOI: 10.1007/s00705-011-1120-y.

    [34]KARATAYL1 E, ALTUNOGˇLU Y, KARATAYL1 SC, et al. A one step real time PCR method for the quantification of hepatitis delta virus RNA using an external armored RNA standard and intrinsic internal control[J]. J Clin Virol, 2014, 60(1): 11-15. DOI: 10.1016/j.jcv.2014.01.021.

    [35]KATSOULIDOU A, MANESIS E, ROKKA C, et al. Development and assessment of a novel real-time PCR assay for quantitation of hepatitis D virus RNA to study viral kinetics in chronic hepatitis D[J]. J Viral Hepat, 2013, 20(4): 256-262. DOI: 10.1111/jvh.12000.

    [36]SELVEY S, THOMPSON EW, MATTHAEI K, et al. Beta-actin—an unsuitable internal control for RT-PCR[J]. Mol Cell Probes, 2001, 15(5): 307-311. DOI: 10.1006/mcpr.2001.0376.

    [37]DHANASEKARAN S, DOHERTY TM, KENNETH J, et al. Comparison of different standards for real-time PCR-based absolute quantification[J]. J Immunol Methods, 2010, 354(1-2): 34-39. DOI: 10.1016/j.jim.2010.01.004.

    [38]LE GAL F, BRICHLER S, SAHLI R, et al. First international external quality assessment for hepatitis delta virus RNA quantification in plasma[J]. Hepatology, 2016, 64(5): 1483-1494. DOI: 10.1002/hep.28772.

    [39]WANG C, SHEN X, LU J, et al. Development of a reverse transcription-loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP) system for rapid detection of HDV genotype 1[J]. Lett Appl Microbiol, 2013, 56(3): 229-235. DOI: 10.1111/lam.12039.

    [40]KOJABAD AA, FARZANEHPOUR M, GALEH H, et al. Droplet digital PCR of viral DNA/RNA, current progress, challenges, and future perspectives[J]. J Med Virol, 2021, 93(7): 4182-4197. DOI: 10.1002/jmv.26846.

    [41]LIU X, FENG J, ZHANG Q, et al. Analytical comparisons of SARS-COV-2 detection by qRT-PCR and ddPCR with multiple primer/probe sets[J]. Emerg Microbes Infect, 2020, 9(1): 1175-1179. DOI: 10.1080/22221751.2020.1772679.

    [42]CAVIGLIA GP, ABATE ML, TANDOI F, et al. Quantitation of HBV cccDNA in anti-HBc-positive liver donors by droplet digital PCR: A new tool to detect occult infection[J]. J Hepatol, 2018, 69(2): 301-307. DOI: 10.1016/j.jhep.2018.03.021.

    [43]CASSIDY N, FISH CS, LEVY CN, et al. HIV reservoir quantification using cross-subtype multiplex ddPCR[J]. iScience, 2022, 25(1): 103615. DOI: 10.1016/j.isci.2021.103615.

    [44]OLIVERO A, ROSSO C, CIANCIO A, et al. Clinical application of droplet digital PCR for hepatitis delta virus quantification[J]. Biomedicines, 2022, 10(4): 792. DOI: 10.3390/biomedicines10040792.

    [45]XU L, ZHANG X, CAO Y, et al. Digital droplet PCR for detection and quantitation of hepatitis delta virus[J]. Clin Transl Gastroenterol, 2022, 13(7): e00509. DOI: 10.14309/ctg.0000000000000509.

    收稿日期:

    2023-02-21;錄用日期:2023-03-21

    本文編輯:葛俊

    猜你喜歡
    診斷
    常見(jiàn)羽毛球運(yùn)動(dòng)軟組織損傷及診斷分析
    淺談豬喘氣病的病因、診斷及防治
    信息技術(shù)與傳統(tǒng)技術(shù)在當(dāng)代汽車維修中的應(yīng)用分析
    紅外線測(cè)溫儀在汽車診斷中的應(yīng)用
    科技視界(2016年21期)2016-10-17 18:28:05
    窄帶成像聯(lián)合放大內(nèi)鏡在胃黏膜早期病變?cè)\斷中的應(yīng)用
    淺析智能變電站二次設(shè)備的運(yùn)行診斷及其調(diào)試
    av线在线观看网站| 最近最新中文字幕大全免费视频| 亚洲伊人色综图| 欧美 日韩 精品 国产| 777久久人妻少妇嫩草av网站| 曰老女人黄片| 9热在线视频观看99| av免费在线观看网站| 一本大道久久a久久精品| 天天躁日日躁夜夜躁夜夜| 免费在线观看日本一区| 亚洲在线自拍视频| 成人影院久久| 久久影院123| 极品人妻少妇av视频| tocl精华| 午夜精品在线福利| 视频在线观看一区二区三区| 欧美在线一区亚洲| 天堂中文最新版在线下载| 黄色视频,在线免费观看| videosex国产| 在线免费观看的www视频| 精品人妻在线不人妻| tube8黄色片| 精品亚洲成a人片在线观看| 国产99白浆流出| 女同久久另类99精品国产91| 一边摸一边做爽爽视频免费| 50天的宝宝边吃奶边哭怎么回事| 香蕉国产在线看| 一级,二级,三级黄色视频| 亚洲精品自拍成人| 视频在线观看一区二区三区| 丝袜人妻中文字幕| 18在线观看网站| a在线观看视频网站| 黄片大片在线免费观看| 日本a在线网址| 少妇裸体淫交视频免费看高清 | 91国产中文字幕| 免费人成视频x8x8入口观看| 满18在线观看网站| 免费高清在线观看日韩| 国内毛片毛片毛片毛片毛片| 天堂中文最新版在线下载| 国产午夜精品久久久久久| 日韩熟女老妇一区二区性免费视频| 国产欧美亚洲国产| 免费高清在线观看日韩| 亚洲人成77777在线视频| 一个人免费在线观看的高清视频| 91成年电影在线观看| 黑丝袜美女国产一区| 久久久久久久精品吃奶| 中亚洲国语对白在线视频| 在线观看免费日韩欧美大片| 欧美日韩福利视频一区二区| 久久这里只有精品19| 狂野欧美激情性xxxx| 中出人妻视频一区二区| 最新美女视频免费是黄的| 黄片播放在线免费| 亚洲国产欧美网| 丝袜美足系列| 精品久久久精品久久久| 欧美不卡视频在线免费观看 | 亚洲欧美日韩高清在线视频| 高清av免费在线| 亚洲欧洲精品一区二区精品久久久| xxx96com| 怎么达到女性高潮| 99久久99久久久精品蜜桃| 欧美人与性动交α欧美软件| 欧美精品亚洲一区二区| 中文亚洲av片在线观看爽 | 亚洲五月天丁香| 青草久久国产| 无人区码免费观看不卡| 国产aⅴ精品一区二区三区波| 韩国av一区二区三区四区| 亚洲熟女毛片儿| 亚洲国产毛片av蜜桃av| 一进一出好大好爽视频| 午夜福利免费观看在线| 国产黄色免费在线视频| 首页视频小说图片口味搜索| 日韩一卡2卡3卡4卡2021年| 性少妇av在线| 首页视频小说图片口味搜索| 国产成人欧美在线观看 | 亚洲 国产 在线| 巨乳人妻的诱惑在线观看| 日韩欧美三级三区| 成人免费观看视频高清| 国产精品av久久久久免费| 亚洲一码二码三码区别大吗| 黄片大片在线免费观看| 两性夫妻黄色片| 两人在一起打扑克的视频| 老司机福利观看| 亚洲色图综合在线观看| 脱女人内裤的视频| 不卡av一区二区三区| 国产视频一区二区在线看| 好男人电影高清在线观看| 久久人人97超碰香蕉20202| 国产一区在线观看成人免费| 99精品欧美一区二区三区四区| 老司机影院毛片| 人成视频在线观看免费观看| 成年人黄色毛片网站| 大码成人一级视频| 亚洲情色 制服丝袜| 中文字幕高清在线视频| 欧美日韩瑟瑟在线播放| 在线观看www视频免费| 精品人妻1区二区| 国产av一区二区精品久久| 亚洲av日韩精品久久久久久密| 久久久久久久久久久久大奶| 久久午夜亚洲精品久久| 国产亚洲欧美98| 国产激情久久老熟女| 捣出白浆h1v1| 一夜夜www| 热99re8久久精品国产| 免费久久久久久久精品成人欧美视频| 啦啦啦在线免费观看视频4| 中文字幕精品免费在线观看视频| 成人特级黄色片久久久久久久| 涩涩av久久男人的天堂| 国产免费av片在线观看野外av| 日韩视频一区二区在线观看| 在线观看免费日韩欧美大片| 少妇的丰满在线观看| 免费观看精品视频网站| 欧美国产精品va在线观看不卡| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 啦啦啦免费观看视频1| 久久久国产精品麻豆| cao死你这个sao货| 日本一区二区免费在线视频| 99久久99久久久精品蜜桃| 精品第一国产精品| 在线观看舔阴道视频| 少妇 在线观看| 国产男靠女视频免费网站| 欧美日本中文国产一区发布| 电影成人av| 99精品久久久久人妻精品| 午夜成年电影在线免费观看| 久久久国产成人精品二区 | 欧美国产精品一级二级三级| 热re99久久国产66热| 麻豆成人av在线观看| 日韩成人在线观看一区二区三区| 亚洲成人国产一区在线观看| 中文字幕另类日韩欧美亚洲嫩草| 99riav亚洲国产免费| 最新在线观看一区二区三区| 高潮久久久久久久久久久不卡| 亚洲色图av天堂| 久久精品国产a三级三级三级| 一本一本久久a久久精品综合妖精| 69av精品久久久久久| 一进一出抽搐动态| 久久热在线av| 亚洲va日本ⅴa欧美va伊人久久| 老熟妇仑乱视频hdxx| 黄色女人牲交| 精品免费久久久久久久清纯 | 老汉色∧v一级毛片| 成年动漫av网址| 性色av乱码一区二区三区2| 国产成人av教育| xxxhd国产人妻xxx| 曰老女人黄片| 午夜福利视频在线观看免费| 女人久久www免费人成看片| 91国产中文字幕| 国产精品免费大片| 精品一区二区三区av网在线观看| 国产精品1区2区在线观看. | 捣出白浆h1v1| 又大又爽又粗| 可以免费在线观看a视频的电影网站| 一级毛片女人18水好多| 又紧又爽又黄一区二区| 亚洲少妇的诱惑av| 欧美日本中文国产一区发布| 丝袜人妻中文字幕| 成年女人毛片免费观看观看9 | 丝袜在线中文字幕| 热99久久久久精品小说推荐| 国产精品自产拍在线观看55亚洲 | 变态另类成人亚洲欧美熟女 | 99香蕉大伊视频| 久久九九热精品免费| 99riav亚洲国产免费| 一级作爱视频免费观看| 欧美另类亚洲清纯唯美| 亚洲自偷自拍图片 自拍| 午夜精品国产一区二区电影| 亚洲av美国av| 久久久久国内视频| 三级毛片av免费| 50天的宝宝边吃奶边哭怎么回事| 777久久人妻少妇嫩草av网站| 纯流量卡能插随身wifi吗| 成年动漫av网址| 免费高清在线观看日韩| 99精品久久久久人妻精品| 黑人猛操日本美女一级片| 成年人午夜在线观看视频| 亚洲成人免费av在线播放| 日本黄色日本黄色录像| 国产精品久久视频播放| 日韩一卡2卡3卡4卡2021年| xxxhd国产人妻xxx| 一区二区三区激情视频| 宅男免费午夜| 久久九九热精品免费| www.熟女人妻精品国产| 成年版毛片免费区| 久久久国产欧美日韩av| 国产男女超爽视频在线观看| 一区在线观看完整版| 国产成人av激情在线播放| 欧美成人午夜精品| 51午夜福利影视在线观看| 成年人免费黄色播放视频| 久久99一区二区三区| 亚洲免费av在线视频| 美女福利国产在线| 久久久久久免费高清国产稀缺| 国产免费av片在线观看野外av| cao死你这个sao货| 十分钟在线观看高清视频www| 在线国产一区二区在线| 亚洲精品中文字幕在线视频| 在线永久观看黄色视频| 精品国产乱码久久久久久男人| 精品一区二区三区四区五区乱码| av一本久久久久| 九色亚洲精品在线播放| 国产精品香港三级国产av潘金莲| 午夜福利在线免费观看网站| 国产成人av教育| 美女福利国产在线| 亚洲全国av大片| 美女高潮到喷水免费观看| 亚洲一卡2卡3卡4卡5卡精品中文| 9色porny在线观看| 天堂俺去俺来也www色官网| 久久精品国产清高在天天线| 欧美亚洲 丝袜 人妻 在线| 亚洲国产中文字幕在线视频| 国产乱人伦免费视频| 亚洲国产看品久久| 亚洲五月天丁香| 成人18禁在线播放| 亚洲欧美日韩另类电影网站| 国产精品久久久人人做人人爽| 欧美亚洲 丝袜 人妻 在线| 中文字幕最新亚洲高清| 又紧又爽又黄一区二区| 在线永久观看黄色视频| 夜夜爽天天搞| 久久久久精品国产欧美久久久| 亚洲五月色婷婷综合| a级片在线免费高清观看视频| 18禁裸乳无遮挡免费网站照片 | 性少妇av在线| av电影中文网址| 国产亚洲精品第一综合不卡| 99国产综合亚洲精品| 99久久综合精品五月天人人| 欧美乱码精品一区二区三区| 久久久国产欧美日韩av| 满18在线观看网站| 午夜成年电影在线免费观看| 777久久人妻少妇嫩草av网站| 久久精品国产亚洲av香蕉五月 | 国产精品98久久久久久宅男小说| 国产av一区二区精品久久| 99riav亚洲国产免费| av天堂久久9| 日韩中文字幕欧美一区二区| 深夜精品福利| 午夜老司机福利片| 欧美乱色亚洲激情| 国产又爽黄色视频| av超薄肉色丝袜交足视频| 国产日韩一区二区三区精品不卡| 欧美亚洲日本最大视频资源| 亚洲成av片中文字幕在线观看| 欧美人与性动交α欧美精品济南到| 50天的宝宝边吃奶边哭怎么回事| 欧美亚洲日本最大视频资源| 亚洲精品粉嫩美女一区| 精品无人区乱码1区二区| 女人爽到高潮嗷嗷叫在线视频| 亚洲成人免费av在线播放| 高清黄色对白视频在线免费看| 国内久久婷婷六月综合欲色啪| 黄网站色视频无遮挡免费观看| 19禁男女啪啪无遮挡网站| 首页视频小说图片口味搜索| 色老头精品视频在线观看| 少妇被粗大的猛进出69影院| 18禁裸乳无遮挡免费网站照片 | 久久久国产精品麻豆| 韩国av一区二区三区四区| 久久青草综合色| 校园春色视频在线观看| 最近最新中文字幕大全免费视频| 午夜影院日韩av| tube8黄色片| 久久中文字幕一级| 亚洲综合色网址| 欧美日韩av久久| 老汉色av国产亚洲站长工具| 性少妇av在线| 精品久久久精品久久久| 亚洲成人免费电影在线观看| 天天躁狠狠躁夜夜躁狠狠躁| 夜夜爽天天搞| 黑人欧美特级aaaaaa片| 人妻久久中文字幕网| 一二三四在线观看免费中文在| 久久香蕉国产精品| 国产97色在线日韩免费| 亚洲va日本ⅴa欧美va伊人久久| 另类亚洲欧美激情| 午夜精品久久久久久毛片777| 王馨瑶露胸无遮挡在线观看| 久久狼人影院| 超色免费av| netflix在线观看网站| 日韩 欧美 亚洲 中文字幕| 欧美日韩视频精品一区| 欧美日韩国产mv在线观看视频| 在线观看一区二区三区激情| 麻豆av在线久日| 在线av久久热| 亚洲五月色婷婷综合| 99在线人妻在线中文字幕 | 日韩免费av在线播放| 亚洲aⅴ乱码一区二区在线播放 | 热99re8久久精品国产| 国产精品乱码一区二三区的特点 | xxx96com| 黑人巨大精品欧美一区二区蜜桃| 亚洲一码二码三码区别大吗| 国产免费现黄频在线看| 色综合欧美亚洲国产小说| 热re99久久精品国产66热6| 国产欧美亚洲国产| 久久久久国产一级毛片高清牌| 手机成人av网站| 捣出白浆h1v1| 成年女人毛片免费观看观看9 | a级片在线免费高清观看视频| 男人操女人黄网站| 久久国产亚洲av麻豆专区| 久久国产精品男人的天堂亚洲| 最新的欧美精品一区二区| 成人精品一区二区免费| 精品视频人人做人人爽| 男人操女人黄网站| 欧美人与性动交α欧美软件| 亚洲精品一二三| 操美女的视频在线观看| 亚洲欧美日韩另类电影网站| 极品教师在线免费播放| 国产精品一区二区在线不卡| 女人高潮潮喷娇喘18禁视频| 久久亚洲真实| 91在线观看av| 亚洲精品一二三| 99精品久久久久人妻精品| 老司机亚洲免费影院| 国产精品二区激情视频| 热99re8久久精品国产| 欧美精品啪啪一区二区三区| 欧美激情极品国产一区二区三区| 女人被狂操c到高潮| 女人被躁到高潮嗷嗷叫费观| 在线看a的网站| 最近最新中文字幕大全电影3 | 搡老岳熟女国产| 亚洲熟女精品中文字幕| 亚洲av成人一区二区三| 午夜福利欧美成人| 欧美色视频一区免费| 激情在线观看视频在线高清 | 怎么达到女性高潮| 欧美在线黄色| 久久香蕉激情| 国产精品一区二区精品视频观看| 亚洲久久久国产精品| 老司机午夜十八禁免费视频| 精品少妇一区二区三区视频日本电影| 国产一区二区三区在线臀色熟女 | 国产aⅴ精品一区二区三区波| 老熟妇仑乱视频hdxx| 亚洲av熟女| 亚洲情色 制服丝袜| 巨乳人妻的诱惑在线观看| 制服诱惑二区| 久久久久国产精品人妻aⅴ院 | 国产成人av激情在线播放| 久久精品熟女亚洲av麻豆精品| 操美女的视频在线观看| 热re99久久精品国产66热6| 亚洲七黄色美女视频| 啦啦啦在线免费观看视频4| 欧美黑人精品巨大| 视频区图区小说| 久热爱精品视频在线9| 日韩欧美免费精品| 亚洲 欧美一区二区三区| 久久亚洲精品不卡| 99热网站在线观看| 国产亚洲av高清不卡| 99国产精品免费福利视频| 国产97色在线日韩免费| 精品一区二区三区视频在线观看免费 | 欧美日韩亚洲综合一区二区三区_| 国产成人av激情在线播放| 亚洲精品久久成人aⅴ小说| 免费在线观看亚洲国产| 妹子高潮喷水视频| 亚洲av熟女| 午夜日韩欧美国产| 亚洲视频免费观看视频| 十分钟在线观看高清视频www| 国产精品久久久久久精品古装| 满18在线观看网站| 精品卡一卡二卡四卡免费| 午夜福利乱码中文字幕| 如日韩欧美国产精品一区二区三区| 看片在线看免费视频| 国产精品欧美亚洲77777| 免费黄频网站在线观看国产| 女警被强在线播放| 热re99久久精品国产66热6| 欧美精品人与动牲交sv欧美| netflix在线观看网站| 日本黄色日本黄色录像| 国产精品一区二区在线不卡| 精品国产一区二区三区四区第35| 在线观看免费午夜福利视频| 国产精品免费视频内射| 国产亚洲欧美在线一区二区| 午夜免费鲁丝| 久久中文看片网| 久久精品国产99精品国产亚洲性色 | 中国美女看黄片| 一区二区三区国产精品乱码| 深夜精品福利| 欧美中文综合在线视频| 国产欧美日韩一区二区三区在线| 99riav亚洲国产免费| 下体分泌物呈黄色| 国产精品一区二区在线观看99| 高潮久久久久久久久久久不卡| 1024香蕉在线观看| 午夜成年电影在线免费观看| 天天影视国产精品| 精品久久久久久电影网| 久久久久久免费高清国产稀缺| 国产成人精品无人区| 国产亚洲精品一区二区www | 国产成人欧美在线观看 | 嫁个100分男人电影在线观看| 一级黄色大片毛片| 岛国毛片在线播放| 亚洲免费av在线视频| 嫩草影视91久久| 香蕉国产在线看| av免费在线观看网站| 免费女性裸体啪啪无遮挡网站| 91九色精品人成在线观看| 欧美日韩中文字幕国产精品一区二区三区 | 一本大道久久a久久精品| 黑丝袜美女国产一区| 国产1区2区3区精品| 十八禁网站免费在线| 国产激情久久老熟女| 国产不卡一卡二| 精品久久蜜臀av无| 精品亚洲成a人片在线观看| 午夜精品久久久久久毛片777| 亚洲欧美日韩另类电影网站| 一夜夜www| 中文字幕av电影在线播放| 亚洲第一青青草原| 国产高清videossex| 精品人妻在线不人妻| 婷婷丁香在线五月| videos熟女内射| 精品一区二区三区四区五区乱码| 国产99白浆流出| 嫁个100分男人电影在线观看| 久久国产精品影院| 51午夜福利影视在线观看| 国产精品久久久久成人av| 精品人妻熟女毛片av久久网站| 国产aⅴ精品一区二区三区波| 他把我摸到了高潮在线观看| www.精华液| 国产高清激情床上av| av网站在线播放免费| 国产深夜福利视频在线观看| 久久久国产成人免费| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 久久性视频一级片| 麻豆乱淫一区二区| 电影成人av| a级毛片黄视频| 亚洲av熟女| 美国免费a级毛片| 少妇裸体淫交视频免费看高清 | 亚洲第一青青草原| 亚洲国产中文字幕在线视频| 亚洲国产毛片av蜜桃av| 首页视频小说图片口味搜索| 国产日韩欧美亚洲二区| 亚洲欧美激情综合另类| av中文乱码字幕在线| 国产区一区二久久| 老熟女久久久| 亚洲免费av在线视频| 村上凉子中文字幕在线| 99久久精品国产亚洲精品| 精品亚洲成a人片在线观看| 国产成人免费观看mmmm| 国产深夜福利视频在线观看| 18禁黄网站禁片午夜丰满| 三上悠亚av全集在线观看| 亚洲一卡2卡3卡4卡5卡精品中文| 日韩免费av在线播放| 国产极品粉嫩免费观看在线| 天天躁夜夜躁狠狠躁躁| 久久久精品国产亚洲av高清涩受| 伊人久久大香线蕉亚洲五| 一级作爱视频免费观看| 飞空精品影院首页| 国产欧美日韩综合在线一区二区| 丝瓜视频免费看黄片| 无人区码免费观看不卡| 十八禁高潮呻吟视频| 亚洲精品乱久久久久久| av在线播放免费不卡| 免费av中文字幕在线| 黄片小视频在线播放| av国产精品久久久久影院| 大香蕉久久网| 91九色精品人成在线观看| 91av网站免费观看| 两性午夜刺激爽爽歪歪视频在线观看 | 国产成人精品久久二区二区免费| 午夜福利在线免费观看网站| 国产在视频线精品| 啪啪无遮挡十八禁网站| 国产精品一区二区精品视频观看| 久久精品91无色码中文字幕| 变态另类成人亚洲欧美熟女 | 18禁观看日本| 极品教师在线免费播放| 久久精品亚洲熟妇少妇任你| 久久精品91无色码中文字幕| 热re99久久精品国产66热6| 亚洲五月婷婷丁香| 纯流量卡能插随身wifi吗| e午夜精品久久久久久久| av在线播放免费不卡| 欧洲精品卡2卡3卡4卡5卡区| 国产av一区二区精品久久| 久久久久精品国产欧美久久久| 天天影视国产精品| 人人妻人人澡人人看| 久久久久久人人人人人| 别揉我奶头~嗯~啊~动态视频| 亚洲精品一卡2卡三卡4卡5卡| 黑丝袜美女国产一区| 一本综合久久免费| 51午夜福利影视在线观看| 少妇 在线观看| 亚洲熟女精品中文字幕| 天天躁夜夜躁狠狠躁躁| 欧美丝袜亚洲另类 | 欧美日韩黄片免| 欧美色视频一区免费| 自线自在国产av| 性少妇av在线| 久久狼人影院| 欧美大码av| 19禁男女啪啪无遮挡网站| 精品久久久精品久久久| 交换朋友夫妻互换小说| 色婷婷久久久亚洲欧美| 中国美女看黄片| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 很黄的视频免费| 国产不卡一卡二| 最近最新中文字幕大全电影3 | 丁香欧美五月| 国内久久婷婷六月综合欲色啪| 亚洲精品一二三| 国产99久久九九免费精品| 国产精品自产拍在线观看55亚洲 | 最近最新中文字幕大全免费视频|