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    藿烏粉的提取工藝研究

    2023-03-13 07:27:18盧鵬懷曹眾達孫耀貴孫盼盼李宏全
    中國獸藥雜志 2023年2期
    關鍵詞:黃酮

    盧鵬懷, 曹眾達, 孫耀貴, 孫盼盼, 孫 娜, 李宏全, 程 佳

    (中獸醫(yī)藥現(xiàn)代化山西省重點實驗室, 山西農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學學院, 山西太谷 030801)

    我國是畜禽養(yǎng)殖與消費大國, 雞蛋產(chǎn)量位居世界首位, 但我國“小規(guī)模、大群體”的產(chǎn)業(yè)特征依然存在, 萬只以下的中小規(guī)模養(yǎng)殖仍然是蛋雞養(yǎng)殖的主體。由于生產(chǎn)設施簡陋、飼養(yǎng)管理不到位、從業(yè)人員專業(yè)知識匱乏、疾病、應激等因素的影響, 導致蛋雞養(yǎng)殖過程中疾病頻發(fā)、高峰產(chǎn)蛋率降低、蛋品質下降。在實際養(yǎng)殖過程中, 經(jīng)營者為了追求蛋雞的生產(chǎn)性能和抗疾病能力, 往往會在飼料中添加抗生素。長期不規(guī)范使用抗生素, 不僅會引起蛋雞免疫能力下降、腸道菌群平衡破壞等一系列問題, 同時還會危害到人類的健康。中草藥富含多種生物活性物質和營養(yǎng)成分, 具有純天然、耐藥性弱、有害殘留少、毒副作用小等優(yōu)勢, 在替代抗生素方面有著巨大的潛力。2020版《中國獸藥典》二部中收錄的具有改善蛋雞產(chǎn)蛋性能、提升蛋品質的中獸藥僅有降脂增蛋散、蛋雞寶、激蛋散三種[1]。且三種中獸藥均為傳統(tǒng)散劑, 存在組方藥味多、制劑工藝粗糙、質量難以控制、藥物利用率低、療效不穩(wěn)定等缺點。蛋雞養(yǎng)殖行業(yè)迫切需要能夠安全、有效延長蛋雞產(chǎn)蛋周期, 提升蛋品質的新型中獸藥。

    淫羊藿和制何首烏為傳統(tǒng)補益中藥。淫羊藿為助陽藥, 性溫, 味辛、甘, 歸肝經(jīng)、腎經(jīng), 具有溫腎助陽、強筋壯骨、益精補氣的功效?,F(xiàn)代藥理研究表明其主要有促進性腺功能、防治骨質疏松、促進造血功能、抗腫瘤、抗炎等作用[2-3]。制何首烏為滋陰藥, 性微溫, 味苦、甘、澀, 歸肝、心、腎經(jīng), 具有滋補肝腎、填精益血、強筋健骨的功效?,F(xiàn)代藥理研究表明其主要有延緩機體衰老、增強機體免疫力、改善心腦血管功能、預防動脈粥樣硬化等作用[4-5]。課題組前期針對蛋雞產(chǎn)蛋時期的生理特點, 以肝腎陰陽雙補立法, 精選淫羊藿、制何首烏兩味藥材進行組方, 經(jīng)粉碎混合制備成傳統(tǒng)散劑“藿烏散”, 研究發(fā)現(xiàn)其具有提高蛋雞產(chǎn)蛋性能和改善蛋品質的效果。為了更好的推廣應用, 課題組擬將傳統(tǒng)散劑“藿烏散”開發(fā)成一款新型中獸藥“藿烏粉”。

    本研究將在前期研究的基礎上, 應用現(xiàn)代中獸藥制劑技術,進行 “藿烏粉”的提取工藝研究, 為將其開發(fā)為微量、安全、高效、質量可控、使用方便的新型中獸藥和在蛋雞養(yǎng)殖過程中的推廣應用奠定基礎。

    1 材 料

    1.1 儀器 Agilent 1260 Infinity Ⅱ 高效液相色譜儀(美國Agilent公司);B-491旋轉蒸發(fā)儀(瑞士BU CHI公司);SB25-12D超聲波清洗機(寧波新芝生物科技股份有限公司);TB-215D電子分析天平(德國賽多利斯天平有限公司);HH-56數(shù)顯恒溫水浴鍋(江蘇金壇市金城國勝實驗儀器廠)。

    1.2 試藥 對照品2, 3, 5, 4′-四羥基二苯乙烯-2-O-β-D-葡萄糖苷(簡稱二苯乙烯苷、批號82373-94-2, 含量98%)、淫羊藿苷(批號489-32-7, 含量98%)、朝藿定A(批號110623-72-8, 含量98%)、朝藿定B(批號110623-73-9, 含量98%), 購于江西佰草源生物科技有限公司;液相部分所用甲醇、乙腈、乙醇均為色譜純(美國Fisher公司); 淫羊藿、制何首烏藥材, 購于河北省安國市祁源中藥材有限公司。

    2 方 法

    2.1 含量測定

    2.1.1 色譜條件 Agilent 5 TC-C18(250 mm×4.6 mm)色譜柱;柱溫30 ℃, 流速1 mL/min, 進樣量10 μL; 二苯乙烯苷含量檢測:以V(乙腈)∶V(水)= 25∶75為流動相;檢測波長為320 nm; 淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B含量檢測:以V(乙腈)∶V(水)=30∶70為流動相;檢測波長為270 nm。

    2.1.2 對照品溶液的制備 精密稱定二苯乙烯苷對照品適量, 加50%乙醇定容至刻度, 制成0.3920 mg/mL的對照品儲備液。精密稱定淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B對照品適量, 加50%乙醇定容至刻度, 制成含淫羊藿苷0.3463 mg/mL、朝藿定A 0.2334 mg/mL、朝藿定B 0.2607 mg/mL的混合對照品儲備液。

    2.1.3 供試品溶液的制備 精密稱取藿烏提取物0.1 g, 置具塞錐形瓶中, 加入50%乙醇20 mL, 稱定重量, 超聲處理15 min, 用50%乙醇補足減失的重量, 搖勻, 濾過, 取續(xù)濾液, 即得。

    2.1.4 陰性供試品溶液的制備 分別稱取缺制何首烏、淫羊藿的陰性處方量藥材2份, 按最佳工藝制得缺何首烏和缺淫羊藿陰性樣品。精密稱取陰性樣品0.1 g, 同“2.1.3”項下的處理方法, 制得陰性供試品溶液。

    2.1.5 方法學考察

    2.1.5.1 系統(tǒng)適應性 取對照品、供試品、陰性對照溶液適量, 分別進樣, 得到相應的液相圖譜。二苯乙烯苷色譜圖見圖1, 淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B三種成分的色譜圖見圖2。

    A-對照品; B-供試品; C-缺制何首烏陰性供試品;1- 二苯乙烯苷圖1 二苯乙烯苷HPLC圖Fig 1 HPLC chromatograms of Stilbene glycoside

    A-對照品; B-供試品; C-缺淫羊藿陰性供試品;1- 朝藿定A; 2-朝藿定B; 3-淫羊藿苷圖2 淫羊藿三種黃酮成分的HPLC圖Fig 2 HPLC chromatograms of three flavonoids in Epimedium

    2.1.5.2 線性關系考察 精密吸取上述對照品溶液、混合對照品溶液適量, 對照品溶液依次稀釋2、4、8、16、32倍?;旌蠈φ掌啡芤阂来蜗♂?、4、8、16、32、64倍。按相應的色譜條件進樣測定, 記錄峰面積。以峰面積為縱坐標(Y), 質量濃度為橫坐標(X)繪制標準曲線, 進行回歸分析, 線性關系考察結果見表1。

    表1 線性關系考察Tab 1 Investigation of linear relationship

    2.1.5.3 精密度試驗 取對照品溶液、混合對照品溶液各一份, 按相應的色譜條件重復進樣6次, 測得二苯乙烯苷、淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B峰面積的RSD值分別為0.55%、0.66%、0.67%、0.75%, 表明儀器精密度良好。

    2.1 穴播根據(jù)樹種的種粒大小,每穴均勻地播入數(shù)粒到數(shù)十粒種子。播后覆土鎮(zhèn)壓。操作簡單、靈活、用工量少。

    2.1.5.4 穩(wěn)定性試驗 取對照品溶液、混合對照品溶液各一份, 按相應的色譜條件分別在0, 2, 4, 8, 12, 24 h時進樣, 測得二苯乙烯苷、淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B峰面積的RSD值分別為0.62%、0.42%、0.47%、0.49%, 表明對照品溶液和混合對照品溶液在24 h內穩(wěn)定性良好。

    2.1.5.5 重復性試驗 取同一份供試品, 根據(jù)“2.1.3”項下的供試品制備方法, 平行制備6份供試品溶液, 并按照相應的色譜條件測定各成分的含量, 測得二苯乙烯苷、淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B的平均質量分數(shù)分別為35.23、19.70、7.12、11.20 mg/g,RSD分別為1.55%、0.48%、0.78%、0.77%。

    2.1.5.6 加樣回收率試驗 精密稱取已知含量的樣品(二苯乙烯苷35.78 mg/g、淫羊藿苷19.78 mg/g、朝藿定A 7.10 mg/g、朝藿定B 11.39 mg/g)0.025 g, 共6份, 分別置于50 mL錐形瓶中, 加入1 mL混合對照品溶液(二苯乙烯苷0.8931 mg/mL、淫羊藿苷1.648 mg/mL、朝藿定A 0.625 mg/mL、朝藿定B 1.060 mg/mL, 50%乙醇制), 50%乙醇定容至20 mL。按“2.1.3”項下供試品的處理方法進行處理, 之后按相應的色譜條件測定, 測得二苯乙烯苷、淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B的平均加樣回收率分別為102.05%、99.40%、101.04%、99.14%,RSD值分別為1.80%、0.43%、0.41%、0.40%, 結果表明該方法回收率良好。

    2.2 干膏得率測定 將藿烏粉提取液減壓濃縮, 得生藥質量濃度0.5 g/mL的濃縮液。精密吸取濃縮液100 mL, 置已干燥恒重的蒸發(fā)皿內, 60 ℃水浴蒸干, 于105 ℃干燥3 h, 取出置干燥器冷卻0.5 h, 精密稱定重量, 計算干膏得率。干膏得率=(m1-m0)/M×100%, m0為蒸發(fā)皿質量, m1為干浸膏與蒸發(fā)皿總質量, M為中藥飲片的質量。

    2.3 單因素試驗 取處方量藥材14份, 分別以乙醇濃度(A)、固液比(B)、提取時間(C)和提取次數(shù)(D)為自變量, 以二苯乙烯苷含量、三種黃酮之和以及干膏得率的綜合評分為因變量, 進行提取, 提取液抽濾后照2.2項下方法得到干浸膏, 并計算干膏得率。將干浸膏粉碎, 照2.1項下的方法測定三種黃酮之和以及二苯乙烯苷的含量。

    2.4 正交試驗 在前期單因素實驗的基礎上, 以乙醇濃度(A)、固液比(B)、提取時間(C)和提取次數(shù)(D)為自變量, 以二苯乙烯苷、三種黃酮之和以及干膏得率的綜合評分為因變量, 采用L9(34)正交試驗優(yōu)化提取工藝, 正交試驗設計表見表2。綜合評分Y=二苯乙烯苷含量/最高含量×權重系數(shù)+三種黃酮之和/最高含量×權重系數(shù)+干膏得率/最高得率×權重系數(shù)。

    表2 正交因素水平L9(34) 表Tab 2 Factors and levels of L9(34) orthogonal test

    2.5 指標權重的確定

    2.5.1 AHP法 據(jù)藿烏粉中各指標對藥理活性作用的強弱, 采用1 ~ 9標度法[6]對二苯乙烯苷、三種黃酮之和以及干膏得率三個權重指標進行量化, 各指標優(yōu)先順序如下:二苯乙烯苷>三種黃酮之和>干膏得率, 構建成對比較的優(yōu)先判斷矩陣, 見表3。根據(jù)矩陣評分情況利用SPSSAU軟件進行AHP層次分析, 分析得二苯乙烯苷、三種黃酮之和以及干膏得率的權重系數(shù)分別為 0.5390、0.2972、0.1638。一致性比例因子(CR)=0.0089<0.10,因此判斷矩陣評分具有良好的一致性, 求得的權重系數(shù)有效。

    表3 判斷矩陣評分Tab 3 Judgment matrix scoring

    2.5.2 CRITIC法 CRITIC法是一種客觀的權重賦值方法, 它通過數(shù)據(jù)的標準差和相關系數(shù)來體現(xiàn)評價指標之間的變異性和沖突性[7]。首先將正交中的數(shù)據(jù)進行歸一化處理, 歸一化的數(shù)據(jù)經(jīng)SPSSAU軟件分析, 得二苯乙烯苷、三種黃酮之和、干膏得率的權重系數(shù)分別為0.2969、0.4439、0.2592。

    2.5.4 綜合評價結果比較 分別采用AHP、CRITIC、AHP-CRITIC綜合加權法對正交試驗的數(shù)據(jù)進行綜合評價, 結果見表4。使用SPSS 25軟件對三種方法的評分結果進行相關系數(shù)分析。AHP法和AHP-CRITIC法、CRITIC法和AHP-CRITIC法、AHP法和CRITIC法評分的相關系數(shù)分別為0.9817、0.9212、0.8854, 三者相關性顯著(P<0.01)。AHP和CRITIC法各指標權重系數(shù)的相關系數(shù)為0.0291, 接近于0, 且P>0.05, 說明AHP和CRITIC法確定的權重系數(shù)沒有相關關系, 故選用AHP-CRITIC綜合加權法來評價試驗結果。

    表4 3種賦權方法綜合評分Tab 4 Synthetical scores of three weighting methods

    2.6 提取工藝的驗證 精密稱取粗粉過的混合藥材3份, 每份100 g, 以篩選出的最優(yōu)工藝條件進行試驗, 測定各項指標。

    3 結果與分析

    3.1 單因素試驗 試驗結果見表5(序號1~5、6~10、11~14依次為乙醇濃度、固液比、提取時間的單因素試驗)。由序號1~5的結果可知, 隨著提取溶劑中乙醇濃度的增加, 評分先增加后減少, 并在濃度為60%時評分最高, 因此將正交試驗中乙醇的濃度水平設置為60%、70%、80%; 由序號6~10的結果可知, 隨著固液比的增加, 評分先增加后減少, 并在固液比為1∶12時達到最高, 因此將正交試驗中固液比的水平定為1∶8、1∶12、1∶16; 由序號11~14的結果可知, 隨著提取時間的增加, 評分先增加后減少, 并在1.5 h時達到最高, 因此將提取時間的水平設置為0.5 h、1 h、1.5 h; 前期預試驗結果表明提取次數(shù)也對提取效果有一定的影響, 為此增加了提取次數(shù)因素, 并將水平設置為1、2、3次。

    表5 單因素試驗設計與結果Tab 5 Single factor test design and results

    3.2 正交試驗 根據(jù)AHP-CRITIC法確定的權重系數(shù)對正交試驗結果進行綜合評分, 正交試驗設計與結果見表6, 方差分析見表7。根據(jù)表6極值(R)的大小, 可知各因素主次關系為C>D>B>A。由表7可知, 四個因素對提取效果均無顯著性影響, 因此取各因素較高水平的組合, 得最佳工藝為A2B2C3D2??紤]到乙醇濃度(A因素)K1和K2的值相差不大, 且對提取效果的影響最小, 故選用成本更低的A1, 最終確定提取工藝為A1B2C3D2, 即12倍量60%的乙醇加熱回流2次, 每次1.5 h。

    表6 正交試驗設計與結果Tab 6 Orthogonal test design and results

    表7 方差分析Tab 7 Analysis of variance

    3.3 提取工藝的驗證 提取工藝的驗證結果見表8。由表8可知, 各指標成分和綜合評分的RSD值均小于2%, 且平均綜合評分大于之前所有的單因素試驗。結果表明優(yōu)選出的工藝穩(wěn)定, 主要活性成分的提取率高, 可用于藿烏粉的制備。

    表8 提取工藝的驗證結果/(mg·g- 1)Tab 8 Results of extraction process verification experiment/(mg·g- 1)

    4 討 論

    本研究在查閱淫羊藿、制何首烏提取工藝相關文獻后, 選擇了二苯乙烯苷作為評價藿烏粉中制何首烏提取效果的指標[9-10], 淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B三種黃酮成分作為評價淫羊藿提取效果的指標[11-12]。二苯乙烯苷是制何首烏中的主要活性成分, YANG等的研究表明二苯乙烯苷類成分能增強D-半乳糖致衰老小鼠肝臟的抗氧化能力從而延緩小鼠衰老[13]。淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B是淫羊藿總黃酮的評價指標。淫羊藿總黃酮是淫羊藿的主要活性成分, 具有促進蛋雞生殖系統(tǒng)發(fā)育的作用, GUO等的研究表明淫羊藿總黃酮能顯著提高蛋雞顆粒細胞的增殖、分化, 并促進初級卵泡向層前卵泡的轉化[14]。

    在選擇藿烏粉中二苯乙烯苷、淫羊藿苷、朝藿定A、朝藿定B四種成分的含量測定方法時, 曾借鑒了江勛等人的思路[15], 嘗試建立一種一測多評四種成分的HPLC方法。但最終的效果并不理想, 為此選擇了分開測定二苯乙烯苷和淫羊藿三種黃酮成分的含量。二苯乙烯苷含量的測定方法參照了《中國藥典》2020版一部何首烏項下的方法[16], 該方法重復性好, 且陰性無干擾, 故使用該方法作為測定藿烏粉中二苯乙烯苷含量的方法。淫羊藿三種黃酮成分含量的測定方法主要參照了《中國藥典》2020版一部淫羊藿項下的方法[16], 但該方法用時較長, 需要近35 min才能完全出峰, 因此適當提升了流動相中乙腈的比例, 將三種物質的出峰時間壓縮至20 min內。

    在選擇多指標權重方法時, 本文提到的AHP法雖能在一定程度上體現(xiàn)復方中藥君臣佐使的配伍規(guī)律, 但容易受主觀判斷的影響, 忽略數(shù)據(jù)本身的客觀屬性。CRITIC法雖能體現(xiàn)數(shù)據(jù)波動性和數(shù)據(jù)間相關關系等客觀屬性, 但它沒有考慮到指標間的輕重關系。AHP-CRITIC綜合加權法則結合了上述兩種方法的優(yōu)點, 在考慮各指標輕重關系的同時又兼顧了數(shù)據(jù)本身的客觀屬性, 因此選用AHP-CRITIC綜合加權法對正交試驗的結果進行分析。

    5 結 論

    采用AHP-CRITIC綜合加權法結合正交試驗優(yōu)選出的提取工藝經(jīng)驗證穩(wěn)定、可行重復性好, 可用于藿烏粉的制備。

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