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    大鯢肝肽酒制備及其對小鼠酒后肝臟保護作用研究

    2023-03-09 03:04:24曾允灝鄭小莉王景華陳德經
    中國釀造 2023年2期
    關鍵詞:小鼠質量

    曾允灝,蘇 文,2,鄭小莉,王景華,陳德經,2

    (1.陜西理工大學 生物科學與工程學院,陜西 漢中 723001;2.陜西理工大學 陜西省資源生物重點實驗室,陜西 漢中 723001;3.漢中市科技資源統籌中心,陜西 漢中 723001)

    我國具有傳統深厚的酒文化,酒在生活中成為不可缺少的飲品。乙醇進入機體后,10%由腎臟和肺排出,90%在肝臟內進行代謝和分解[1],在肝臟中由乙醇脫氫酶(alcohol dehydrogenase,ADH)氧化為乙醛,乙醛經乙醛脫氫酶(acetaldehyde dehydrogenase,ALDH)氧化為乙酸進入三羧酸循環(huán),最終代謝為二氧化碳和水[2]。飲酒過量會產生酒精中毒,長期嗜酒會形成酒精依賴癥[3],長期飲酒誘發(fā)肝硬化以及肝癌[4],還會引起肥胖、高血脂癥、動脈硬化等[5]。世界衛(wèi)生組織指出,酒精性肝損傷已成為僅次于病毒性肝炎的第二大肝臟疾病[6]。如何降低飲酒對肝臟的損傷成為當前研究的熱點問題。研究表明,生物小分子肽具有較高的抗氧化、抗腫瘤、抗衰老活性、易吸收[7],促進乙醇脫氫酶及乙醛脫氫酶活性,能加快酒精代謝速率,減少代謝產物對肝組織的損害作用[8]。LI G M等[9]研究發(fā)現,玉米肽具有抗氧化、抗高血壓、保肝、促進酒精代謝等功能;陳頔等[10]用魚皮低聚肽灌胃酒精性肝損傷小鼠,發(fā)現魚皮低聚肽對酒精性肝損傷小鼠具有保護作用。

    大鯢(Andrias davidianus)屬大型兩棲綱、有尾目、隱鰓鯢科,在地球上有3.5億年生活史,具有極強的耐饑能力和抗逆境能力[11]。大鯢肝臟占體質量的3%~5%,是大鯢加工的主要副產物[12]。大鯢肝臟具有較高營養(yǎng)價值,含有豐富的蛋白質和酶[13],富含不飽和脂肪酸[14],但大鯢肝臟腥味重,難以加以利用,多作為廢棄物直接丟棄,將肝臟制備小分子肽,提高大鯢附加值[15]。近年來,將多肽與酒結合制備多肽保健酒是多肽利用的重要途徑,關于多肽酒的研究報道越來越多,如植物源的多肽酒:山藥肽酒[16]、檸檬肽酒[17],蠶豆肽酒[18]等;動物物源多肽酒:海參肽酒[19]、甲魚肽酒[20]、鹿茸血肽酒[21]、大鯢肽酒[22]、牡蠣肽酒[23]等,但是以大鯢肝肽(giant salamander liver peptide,GSLP)制備的大鯢肝肽酒研究較少。

    本研究以大鯢肝臟與白酒為原料制備大鯢肝肽酒,通過酶解法制備肝肽,對其體外乙醇脫氫酶(ADH)激活活性、體外抗氧化活性和溶解度進行測定,并測定大鯢肝肽酒對小鼠肝臟乙醇脫氫酶(ADH)和乙醛脫氫酶(ALDH)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活力與還原型谷胱甘肽(reduced glutathione,GSH)、丙二醛(malonaldehyde,MDA)、甘油三酯(triglyceride,TG)含量及血清中谷丙轉氨酶(alanine aminotransferase,ALT)和谷草轉氨酶(aspartate aminotransferase,AST)活性的影響,以期探討大鯢肝肽酒對酒后小鼠的肝臟保護作用,為大鯢肝臟高值化利用和多肽酒的開發(fā)提供理論依據。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 材料

    大鯢肝臟:陜西鯢生元科技有限公司;53%vol醬香型白酒:貴州茅臺酒廠保健酒業(yè)有限公司;無特定病原體(specific pathogen free,SPF)級雄性昆明種小鼠:4周齡,體質量(22±2)g,實驗動物使用許可證號SCXK(陜)2018-001,由西安交通大學醫(yī)學院部實驗動物中心提供,飼養(yǎng)條件為溫度(22±2)℃,濕度50%~60%,晝夜交替。

    1.1.2 試劑

    風味蛋白酶(酶活40000U/g)、胰蛋白酶(酶活4000U/g):廣西南寧龐博生物工程有限公司;碳酸氫鈉、檸檬酸:天津市富宇精細化工有限公司;乙醇脫氫酶(ADH)(1.0 U/mL):美國Sigma公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、鄰苯三酚、三羥甲基氨基甲烷:上海源葉生物科技有限公司;硫酸亞鐵、水楊酸:天津市北聯精細化學品開發(fā)有限公司;鐵氰化鉀:成都市科龍化學試劑廠;三氯乙酸:上海精析化工科技有限公司;三氯化鐵:天津市福晨化學試劑廠;維生素C(vitamin C,VC):成都市科龍化工試劑廠;二喹林甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法微量蛋白定量試劑盒、血乙醇(blood ethanol,ALC)試劑盒、谷丙轉氨酶(ALT)試劑盒、谷草轉氨酶(AST)試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒、還原型谷胱甘肽(GSH)試劑盒、丙二醛(MDA)試劑盒、甘油三酯(TG)試劑盒、乙醇脫氫酶(ADH)試劑盒、乙醛脫氫酶(ALDH)試劑盒:南京建成生物工程研究所。本研究所用試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設備

    DK-98-Ⅱ恒溫水浴鍋:天津市泰斯特儀器有限公司;TGL-20M冷凍離心機:湖南湘儀離心機儀器有限公司;LC-800低速臺式離機:科大創(chuàng)新股份有限公司中佳分公司;Xinyi-100F真空冷凍干燥機:寧波新藝超聲設備有限公司;Epoch 2酶標儀:美國BioTek公司;UV-1750紫外-可見分光光度計:日本島津儀器公司;PE28型pH計:梅特勒-托利多儀器有限公司;陶瓷膜過濾機、納濾膜過濾機及超濾膜(截留分子質量3 000 Da):南京艾宇琦膜科技有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 大鯢肝肽酒的加工工藝流程及操作要點

    操作要點:

    原料預處理:流水清洗大鯢肝臟,按料液比1∶5(g∶mL)添加0.9%生理鹽水浸泡30 min,1%酵母發(fā)酵液(按大鯢肝臟質量1%酵母粉和2%白砂糖在37 ℃活化1 h)浸泡30 min,清洗瀝干,絞碎制成肝糜。

    酶解:在肝糜中加入1%的風味蛋白酶,以肝糜和蒸餾水的料液比為1∶1(g∶mL)添加蒸餾水、于pH 7.0、53 ℃條件下攪拌酶解4 h;再添加0.5%胰蛋白酶,于pH 8.0、37 ℃條件下酶解3 h;滅酶活(95 ℃、10 min)。

    離心、脫色脫腥:酶解液離心(5 500 r/min、15 min),去除上清液中油脂及沉淀,收集上清液。在上清液中加入1%活性炭,50 ℃、0.08 Pa下抽真空,攪拌脫色脫腥1 h。

    過濾、超濾:用過壓濾機脫活性炭后陶瓷膜過濾,得到分子質量<10 000 Da多肽的酶解液。用截留分子質量3 000 Da的超濾膜對其進行超濾分級分離,得到3種不同分子質量段的多肽液。

    冷凍干燥:在溫度-50~20 ℃、真空度13~40 Pa條件下,經冷凍干燥后制得大鯢肝肽粉:GSLP-Ⅰ(分子質量>10 000 Da)、GSLP-Ⅱ(分子質量3 000~10 000 Da)、GSLP-Ⅲ(分子質量<3 000 Da)。

    調配:于1%大鯢肝肽粉中,按料液比1∶100(g∶mL)添加53%vol醬香型白酒,即得大鯢肝肽酒。

    1.3.2 不同分子質量大鯢肝肽體外ADH激活活性

    大鯢肝肽ADH激活率參考劉鵬[24]的方法進行測定,其計算公式如下:

    式中:A1為樣品反應初始的OD340nm值;A2為樣品反應結束的OD340nm值。

    1.3.3 不同分子質量大鯢肝肽體外抗氧化活性測定

    DPPH自由基(DPPH·)清除率的測定[25]:將不同分子質量肝肽加蒸餾水溶解,配制樣品質量濃度為10.0 mg/mL。取3 mL樣品溶液于試管中,加入3 mL 0.1 mmol/L DPPH溶液,振蕩混勻后避光放置30 min,在波長517 nm處測吸光度值,用蒸餾水調零,抗壞血酸溶液(0.5 mg/mL)作陽性對照。平行測定吸光度值3次。DPPH·清除率計算公式如下:

    式中:A0為蒸餾水-DPPH溶液的吸光度值;A1為樣品-DPPH溶液的吸光度值;A2為樣品-乙醇溶液的吸光度值。

    羥自由基(·OH)清除率的測定[26]:將不同分子質量肝肽加蒸餾水溶解,配制樣品質量濃度為10.0mg/mL。取2mL樣品溶液于試管中,加2 mL 9 mmol/L FeSO4溶液、2 mL 9 mmol/L水楊酸乙醇溶液,再加2 mL 9 mmol/L H2O2溶液,于37 ℃水浴條件下加熱30 min,待冷卻后離心。以蒸餾水作為空白對照,抗壞血酸溶液(0.5 mg/mL)作陽性對照。在波長510 nm處測定吸光度值,實驗重復3次,·OH的清除率計算公式如下:

    式中:A0為蒸餾水-水楊酸乙醇吸光度值;A1為樣品-水楊酸乙醇溶液吸光度值;A2為加入樣品溶液但不加水楊酸乙醇溶液吸光度值。

    超氧陰離子自由基(O-2·)清除率測定[27]:采用鄰苯三酚自氧化法測定,將不同分子質量肝肽加蒸餾水溶解,配制樣品質量濃度為10.0 mg/mL。取1 mL樣品溶液于試管中,各加入4.5 mL 50 mmol/L Tris-HCl緩沖液和0.1 mL 3 mmol/L鄰苯三酚溶液充分混勻,于25 ℃水浴反應10 min,加入1 mL 8 mmol/L HCl溶液終止反應。在波長320 nm處測定吸光度值,以蒸餾水作為空白對照,抗壞血酸溶液(0.5 mg/mL)作為陽性對照。實驗重復3次,O-2·清除率計算公式如下:

    式中:A0為不加樣品溶液,加鄰苯三酚溶液的吸光度值;A1為加樣品溶液和鄰苯三酚溶液的吸光度值;A2為加樣品溶液但不加鄰苯三酚溶液的吸光度值。

    總還原力的測定[28]:將不同分子量肝肽加蒸餾水溶解,配制樣品質量濃度為10.0 mg/mL。取樣品溶液2 mL,加入2 mL 0.2 mol/L pH 6.6磷酸鹽緩沖液和2 mL 1%鐵氰化鉀溶液充分混勻后,于50 ℃水浴條件下靜置20 min后,加入10%三氯乙酸2 mL,充分混合,4 000 r/min離心10 min,取2.5 mL上清液,再加入2 mL蒸餾水和0.5 mL 0.1%三氯化鐵后混勻,室溫條件下靜置10 min,在波長700 nm處測定吸光度值,實驗重復3次,以蒸餾水作為空白對照,抗壞血酸溶液(0.5 mg/mL)作為陽性對照。

    1.3.4 不同分子質量大鯢肝肽溶解度的測定

    稱取0.250 0 g 3個不同分子質量大鯢肝肽粉置入50 mL于離心管中,再分別加入酒精度為12%vol、35%vol、45%vol、53%vol的醬香型白酒25 mL搖勻,室溫靜置7 d后4 000 r/min離心15 min,上清液倒入坩鍋置于105 ℃烘箱,烘至恒質量[29],計算溶解度,其計算公式如下:

    式中:m為坩鍋的質量,g;M為坩鍋和溶解肽粉的質量,g;w為肽粉的質量,g。

    1.3.5 大鯢肝肽酒的動物實驗

    遵循實驗動物倫理規(guī)程和標準,取昆明種雄性小鼠45只,經7 d適應期,按隨機數字標法分3組,即空白對照組、白酒組、大鯢肝肽酒組,每組15只??瞻讓φ战M小鼠每日灌胃生理鹽水(0.12 mL/10 g體質量),白酒組小鼠每日灌胃53%vol醬香型白酒(0.12 mL/10 g體質量)[30],大鯢肝肽酒組小鼠每日灌胃最適條件制備的大鯢肝肽酒(0.12 mL/10 g體質量),連續(xù)灌胃10 d。

    1.3.6 樣品的采集及處理

    末次灌胃2 h后從每個實驗組中各取3只小鼠,眼球取血(4 ℃、3 000 r/min離心15 min,取上層血清保存于-80 ℃冰箱中),解剖小鼠取肝臟,在4 ℃的生理鹽水中反復沖洗,濾紙吸干后稱取肝臟質量,剪取一部分肝組織,用10%甲醛溶液固定;剩余肝組織-80 ℃冰箱保存,其他小鼠用于血液和肝臟的生化指標檢測。在實驗期間,每日固定時間對小鼠灌胃前進行稱量并記錄,及時調整給酒灌胃體積,觀察小鼠有無死亡、精神狀態(tài)、活動能力等。

    1.3.7 生化指標的測定

    (1)血液乙醇含量

    根據血乙醇試劑盒的說明書測定小鼠血液乙醇含量。

    (2)肝臟生化指標

    以9倍肝組織體積加入預冷生理鹽水,冰浴條件下勻漿制成10%肝組織勻漿,離心(3 000 r/min、4 ℃、20 min),取上清液,按照試劑盒的說明書測定小鼠肝臟SOD活力、GSH、MDA、TG含量,以及乙醇代謝相關酶ADH、ALDH活力。

    (3)血清生化指標

    根據試劑盒的說明書測定小鼠血清的谷丙轉氨酶(ALT)和谷草轉氨酶(AST)活力。

    1.3.8 數據分析

    采用OriginPro 2018軟件進行繪圖,SPSS 20.0軟件進行數據統計分析,P<0.05,表示差異顯著。

    2 結果與分析

    2.1 不同分子質量肝肽對ADH激活率的影響

    ADH是一種含鋅金屬蛋白酶,主要存在于肝臟,是酒精代謝最主要的參與酶和代謝酶,不同分子質量的多肽對ADH激活率不同[31]。不同分子質量肝肽對體外ADH的激活作用見圖1。

    圖1 不同分子質量肝肽對體外乙醇脫氫酶的激活作用Fig.1 Activation of liver peptides with different molecular mass on alcohol dehydrogenase in vitro

    由圖1可知,在相同質量濃度下,不同分子質量的肝肽對體外ADH激活作用具有顯著性差異(P<0.05),對ADH激活率從大到小排序為:GSLP-Ⅲ>GSLP-Ⅰ>GSLP-Ⅱ,其中,GSLP-Ⅲ對ADH激活率最高,達83.53%,GSLP-Ⅰ激活率為73.47%,GSLP-Ⅱ激活率最低,為61.53%。結果表明,大鯢肝肽對體外ADH的激活作用并不受分子質量大小的影響,這與張帥[32]的研究結果一致。

    2.2 不同分子質量肝肽體外抗氧化活性測定

    不同分子質量肝肽的體外抗氧化活性測定結果見表1。

    表1 不同分子質量肝肽體外抗氧化活性Table 1 Antioxidant activity in vitro of liver peptides with different molecular mass

    由表1可知,VC的抗氧化能力最強,不同分子質量肝肽對DPPH·、·OH和均具有較強清除能力,按抗氧化能力大小對肝肽樣品排序為:GSLP-Ⅲ>GSLP-Ⅱ>GSLP-Ⅰ。其中,GSLP-Ⅲ肝肽對DPPH·、·OH和清除率均達到了83.50%以上,顯著高于其他肝肽組分;GSLP-Ⅲ肝肽還原力顯著高于其他肝肽組分(P<0.05)。在相同質量濃度下,肝肽分子質量越小,體外抗氧化能力越強,這是因為疏水性氨基酸和芳香族氨基酸含量增加,具有抗氧化性的氨基酸增加[33]。

    2.3 大鯢肝肽的溶解度

    不同分子質量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度見表2。

    表2 不同分子質量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度Table 2 Solubility of liver peptides with different molecular mass in Baijiu with different alcohol content%

    由表2可知,不同分子質量肝肽在不同酒精度白酒中的溶解度不同,在同一分子質量肝肽條件下,隨著酒精度的增加,溶解度逐漸降低。在同一酒精度的條件下,分子質量小的肝肽在白酒中的溶解度顯著高于分子質量大的肝肽(P<0.05)。GSLP-Ⅲ肝肽在12%vol~53%vol酒精中溶解度均>94.00%。不同分子質量肝肽,在不同酒精度中溶解度不同,究其原因可能是,肽的分子質量大小、肽的結構及端基極性基團決定了肽在酒中的溶解度[34]。

    2.4 大鯢肝肽酒對小鼠血液乙醇含量及肝臟代謝酶活性的影響

    飲酒后,大部分的酒精經胃腸道進入血液,使血液中乙醇含量升高,在60 min左右達到最高[35],最終進入肝臟進行分解代謝,酒精分解代謝與肝臟中的乙醇脫氫酶(ADH)和乙醛脫氫酶(ALDH)的活力有密切關系。小鼠飲酒后2 h血乙醇含量及肝臟中的乙醇脫氫酶(ADH)和乙醛脫氫酶(ALDH)的活性見表3。

    表3 大鯢肝肽酒對小鼠血乙醇含量及肝臟代謝酶活性的影響Table 3 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on ethanol concentration of blood and metabolic enzyme activity of mouse liver

    由表3可知,與空白對照組相比,白酒組、肝肽酒組的ADH活性分別降低55.77%、26.33%,ALDH活性分別降低25.33%、5.29%,白酒組、肝肽酒組ADH活力顯著低于空白對照組(P<0.05),肝肽酒組ALDH活力與空白組無顯著差異(P>0.05);與白酒組相比,肝肽酒組的ADH和ALDH活性分別顯著升高66.58%、26.84%(P<0.05),血液乙醇含量顯著降低14.29%(P<0.05),說明大鯢肝肽酒在一定程度上具有激活ADH和ALDH的活性,可以加速酒精代謝,降低血乙醇含量。

    2.5 大鯢肝肽酒對小鼠肝臟氧化應激代謝酶活性的影響

    氧化應激是體內氧化與抗氧化作用失衡,是由自由基在體內產生的一種負面作用。長期大量飲酒后,酒精在肝組織代謝會超過肝臟的正常生理代謝能力,使肝組織發(fā)生脂質過氧化,降低谷胱甘肽(GSH)含量和超氧化物歧化酶(SOD)酶活,增加丙二醛(MDA)和甘油三脂(TG)含量[36]。大鯢肝肽酒對小鼠肝臟氧化應激謝酶活性的影響見表4。

    表4 大鯢肝肽酒對小鼠肝臟氧化應激代謝酶活性的影響Table 4 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on oxidative stress metabolic enzyme activity of mouse liver

    由表4可知,與空白組相比,白酒組、肝肽酒組的SOD活性分別顯著降低30.78%、19.82%(P<0.05),GSH含量分別顯著降低47.58%、28.23%,MDA含量分別顯著升高76.03%、45.45%(P<0.05),TG含量分別顯著升高140.00%、76.67%(P<0.05)。與白酒組相比,肝肽酒組的SOD活力和GSH含量分別顯著升高15.84%、36.92%(P<0.05),MDA、TG含量分別顯著降低17.37%、26.39%(P<0.05),說明大鯢肝肽酒在一定程度上可提高小鼠肝臟SOD活力和GSH含量,降低脂質過氧化物MDA和TG含量,減輕肝臟的氧化應激反應。

    2.6 大鯢肝肽酒對小鼠血清轉氨酶指標的影響

    谷丙轉氨酶(ALT)和谷草轉氨酶(AST)是評價肝受損的重要指標[37],肝細胞發(fā)生異常時,可引起炎癥反應和肝細胞壞死,細胞膜的通透性增加,使肝細胞ALT和AST進入血液。大鯢肝肽酒對小鼠血清ALT和AST活性的影響見圖2。

    由圖2可知,與空白對照組相比,白酒組、肝肽酒組小鼠血清中ALT活性分別顯著升高了107.33%、62.09%(P<0.05),AST活性分別顯著升高108.46%、58.24%(P<0.05),白酒組和肝肽酒組小鼠血清中ALT和AST的活性均顯著高于空白對照組(P<0.05);與白酒組相比,肝肽酒組小鼠血清中ALT和AST的活性分別顯著降低21.82%、23.61%(P<0.05)。說明大鯢肝肽酒在一定程度上能降低灌胃酒精小鼠血清中ALT和AST活性。

    圖2 大鯢肝肽酒對小鼠血清谷丙轉氨酶(A)和谷草轉氨酶(B)活性的影響Fig.2 Effect of Andrias davidianus liver peptide wine on alanine aminotransferase (A) and aspartate aminotransferase (B)activity of mouse serum

    3 結論

    本研究以大鯢肝臟和白酒為原料制備大鯢肝肽酒。利用酶解法和膜分離法制備了不同分子質量的肝肽,研究了其體外抗氧化活性及其在不同酒精度白酒中的溶解度,并測定大鯢肝肽酒對小鼠肝臟損傷相關的各項生化指標的影響。結果表明,分子質量<3 000 Da(10 mg/mL)的大鯢肝肽體外對ADH激活率最高,為83.53%,對DPPH·、·OH和清除率均>83.50%,且具有較強的還原力(吸光度值0.440)。分子質量越小,在白酒中溶解度越大,其中分子質量<3 000 Da的肝肽溶解度均達到94%以上。與灌胃白酒組小鼠相比,大鯢肝肽酒組小鼠肝臟ADH、ALDH、SOD活力及GSH含量顯著提高(P<0.05),分別提高66.58%、26.84%、15.84%,36.92%,肝臟MDA、TG含量顯著降低(P<0.05),分別降低17.37%、26.39%,血清ALT和AST活性顯著降低(P<0.05),分別降低21.82%、23.61%。大鯢肝肽酒能增強機體抗氧化能力,減輕肝臟的氧化應激反應;提高乙醇、乙醛代謝酶的活性,降低乙醇對肝細胞損傷。

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