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    不同時(shí)期NICS 檢測(cè)在平衡易位患者PGT 治療中的臨床應(yīng)用

    2023-03-01 12:32:46李明穎李敏瑤晏家驄李永剛
    關(guān)鍵詞:意義差異檢測(cè)

    李明穎 ,李敏瑤 ,晏家驄 ,田 美 ,李永剛

    (1)云南省第一人民醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)科,云南 昆明 650032;2)云南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,云南 昆明 650500)

    平衡易位(reciprocal translocation)是常見的一種染色體結(jié)構(gòu)異常,在新生兒中,平衡易位攜帶者發(fā)生率約為0.2%[1]。平衡易位通常發(fā)生在非同源染色體片段交換時(shí),若易位沒有造成遺傳物質(zhì)的獲得或者丟失,且易位的斷點(diǎn)沒有導(dǎo)致基因的截?cái)?,則攜帶患者表型正常。然而研究表明,平衡易位攜帶患者不孕及反復(fù)流產(chǎn)(recurrent pregnancy loss,RPL)的風(fēng)險(xiǎn)顯著增加。據(jù)報(bào)道,RPL 患者的染色體異常以染色體結(jié)構(gòu)異常為主,其中以平衡易位的檢出最多。在有反復(fù)流產(chǎn)史的夫婦中,一方為平衡易位攜帶者的比例約為2.5%~3.2%[2]。另外,當(dāng)染色體易位的斷裂點(diǎn)與生殖的基因有關(guān)時(shí),患者還會(huì)表現(xiàn)為不孕不育。

    平衡易位配子經(jīng)過減數(shù)分裂,理論上可形成18 種配子。同正常配子結(jié)合后,形成的合子包括一種完全正常,一種易位攜帶,其余均為遺傳物質(zhì)不平衡。因而,理論上,若夫妻雙方一方為平衡易位攜帶者,其獲得遺傳物質(zhì)平衡胚胎的比例僅為2/18[3]。如果不進(jìn)行干預(yù),平衡易位攜帶者的妊娠結(jié)局主要有自然流產(chǎn)、復(fù)發(fā)性流產(chǎn)、生育缺陷兒等[3?4],其中,自然流產(chǎn)率可達(dá)50%-80%;常見胎兒異常有心臟發(fā)育異常、神經(jīng)發(fā)育遲滯、先天愚型等等;性染色體相關(guān)的平衡易位會(huì)導(dǎo)致不孕的風(fēng)險(xiǎn),這些都給患者夫婦家庭造成嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)和精神壓力。

    隨著人類輔助生殖技術(shù)(assisted reproductive technology,ART)的發(fā)展,ART 技術(shù)已經(jīng)不僅僅用于不孕患者的治療,而是更多的參與到優(yōu)生優(yōu)育的干預(yù)中來。在ART 治療周期中,非整倍體是導(dǎo)致種植失敗和流產(chǎn)的重要原因之一。因此,建立一套有效的鑒別整倍體胚胎的方法,對(duì)于改善ART 周期臨床結(jié)局非常關(guān)鍵[5]。近年來,隨著植入前遺傳學(xué)檢測(cè)(preimplantation genetic testing,PGT)的出現(xiàn)及推廣,通過檢測(cè)胚胎染色體,有效的減少了染色體異常胚胎移植的比例,進(jìn)而降低了平衡易位攜帶者自然流產(chǎn)以及不良孕產(chǎn)的發(fā)生比例。針對(duì)平衡易位患者,可以進(jìn)行PGTSR(Structural rearrangements)的治療,通過對(duì)染色體拷貝數(shù)變異(copy number variants,CNVs)進(jìn)行檢測(cè),選擇遺傳物質(zhì)平衡的胚胎移植[6]。PGT 的檢測(cè)樣本主要來源于囊胚滋養(yǎng)外胚層(trophectoderm,TE)細(xì)胞的活檢,二代測(cè)序技術(shù)(next-generation sequencing,NGS)經(jīng)過有效性的驗(yàn)證,已廣泛應(yīng)用于臨床PGT 的檢測(cè)。然而,盡管囊胚活檢技術(shù)是目前進(jìn)行PGT 的主流方法,但是對(duì)于胚胎來說仍是一項(xiàng)有創(chuàng)的操作,對(duì)于活產(chǎn)胎兒及其后期發(fā)育的影響尚不明確;另外,囊胚活檢操作的技術(shù)難度大,所需設(shè)備昂貴,這也限制了該項(xiàng)技術(shù)在生殖中心的普遍應(yīng)用。因此,建立一種無創(chuàng)的、快速簡(jiǎn)易的、成本更低的評(píng)估胚胎染色體的方法,將成為ART 領(lǐng)域的重大突破。

    無創(chuàng)胚胎染色體篩查(non-invasive chromosome screening,NICS)是指通過結(jié)合NGS 技術(shù),檢測(cè)培養(yǎng)至囊胚期時(shí)培養(yǎng)液中游離的DNA(cell-free DNA,cfDNA),以cfDNA 的檢測(cè)結(jié)果來反映整個(gè)胚胎的染色體情況,在不進(jìn)行活檢的前提下,得到胚胎染色體的篩查結(jié)果,作為甄選移植胚胎的參考條件。有研究表明,NICS 技術(shù)在染色體篩查方面可以達(dá)到0.882 的敏感度和0.840 的特異度[7],然而由于該項(xiàng)技術(shù)創(chuàng)立及應(yīng)用時(shí)間還較短,其有效性還有待驗(yàn)證。隨著技術(shù)的不斷改進(jìn)提升,該技術(shù)的精度和深度也可不斷提高。

    本研究以傳統(tǒng)囊胚TE 細(xì)胞活檢/未形成囊胚的廢棄整胚的染色體測(cè)序結(jié)果為對(duì)照,利用NICS 技術(shù)對(duì)胚胎的不同階段培養(yǎng)液進(jìn)行測(cè)序檢測(cè),探討不同時(shí)期培養(yǎng)液NICS 檢測(cè)技術(shù)在平衡易位患者治療中的應(yīng)用價(jià)值。

    1 資料與方法

    1.1 研究對(duì)象

    本研究以2018 年3 月至2020 年7 月在云南省第一人民醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)科進(jìn)行PGT 治療的10位平衡易位攜帶患者為研究對(duì)象,共收集186 條測(cè)序數(shù)據(jù)。根據(jù)檢測(cè)樣本,將所有數(shù)據(jù)分成3 組,包括D3 培養(yǎng)液測(cè)序結(jié)果(D3 NICS)39 條,D5 培養(yǎng)液測(cè)序結(jié)果(D5 NICS)72 條,胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果75 條;其中,同時(shí)有D3 NICS 和胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果的胚胎36 個(gè),同時(shí)有D5 NICS 和胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果的胚胎69 個(gè),3 種測(cè)序結(jié)果都有的胚胎30 個(gè)。

    本研究已獲得云南省第一人民醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),所有參與患者均已簽署相關(guān)知情同意書。

    1.2 研究方法

    胚胎采用微滴法培養(yǎng),D3 胚胎轉(zhuǎn)入囊胚培養(yǎng)液后,回收D3 培養(yǎng)液,放入含有5 μL 細(xì)胞裂解液的PCR 管中并做好標(biāo)記;囊胚活檢后,回收對(duì)應(yīng)活檢胚胎的囊胚培養(yǎng)液,放入含有5 μL 細(xì)胞裂解液的PCR 管中并做好標(biāo)記;囊胚培養(yǎng)結(jié)束后,收集未形成囊胚的整胚及對(duì)應(yīng)培養(yǎng)液,放入含有5 μL 細(xì)胞裂解液的PCR 管中并做好標(biāo)記,以上樣本由第三方冷鏈運(yùn)輸公司運(yùn)至生物公司進(jìn)行培養(yǎng)液濃度測(cè)定和染色體非整倍體分析。

    對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行2 個(gè)變量的分析,分別為檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果。其中,檢測(cè)結(jié)果根據(jù)是否檢測(cè)成功分為檢測(cè)失?。∟/A)和檢測(cè)成功(非N/A);對(duì)檢測(cè)成功(非N/A)的數(shù)據(jù)進(jìn)行CNVs 結(jié)果的分析,根據(jù)測(cè)序結(jié)果分為異常(染色體CNVs 非平衡)、正常(染色體CNVs 完全正常/平衡易位攜帶)。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    本研究采用SPSS 20.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,其中計(jì)數(shù)資料用例數(shù)和百分?jǐn)?shù)[n(%)] 表示,各組結(jié)果的差異分析用χ2檢驗(yàn),P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各類型樣本檢測(cè)結(jié)果分布

    在3 組檢測(cè)結(jié)果中,D3 NICS 的檢測(cè)失敗率最高,達(dá)到38.46%;在胚胎/TE 組中,僅有2 例樣本檢測(cè)失敗,均為活檢(TE)樣本,可能與活檢樣本取樣數(shù)量少和操作損傷有關(guān)。在染色體CNVs 結(jié)果上,D3 NICS 檢出的異常率最低,僅為25.64%,這同D3 培養(yǎng)液中DNA 數(shù)量較少有關(guān)。從整體結(jié)果分布來看,3 組的檢測(cè)結(jié)果和CNVs結(jié)果之間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001/P<0.01),且D3 NICS(a)同胚胎/TE 組的檢測(cè)結(jié)果和CNVs結(jié)果的差異都有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,D5 NICS 同胚胎/TE組的檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,同時(shí)D3 NICS 同D5 NICS 的檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果的差異也有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見表1。

    表1 各組樣本CNV 檢出結(jié)果匯總[n(%)]Tab.1 Summary of CNV results in different groups [n(%)]

    2.2 相同胚胎培養(yǎng)液同胚胎結(jié)果比較

    2.2.1 相同胚胎的D5 培養(yǎng)液同胚胎/TE 結(jié)果比較在測(cè)序結(jié)果中,同時(shí)含有D5 NICS 和胚胎/TE 檢測(cè)結(jié)果的胚胎有69 個(gè),共有138 條檢測(cè)數(shù)據(jù)。2 組的檢測(cè)結(jié)果之間的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.085),D5 NICS 組檢測(cè)失敗率(N/A%)略高于胚胎/TE 組(10.14%/2.90%),2 組的CNVs 結(jié)果分布之間的差異也無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.944),見表2。

    表2 相同胚胎D5 NICS 和胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果比較[n(%)]Tab.2 Comparison of sequencing results between D5 NICS group and embryo/TE from the same embryo [n(%)]

    2.2.2 相同胚胎的D3 培養(yǎng)液同胚胎/TE 結(jié)果比較在測(cè)序結(jié)果中,同時(shí)含有D3 NICS 和胚胎/TE 檢測(cè)結(jié)果的胚胎有36 個(gè),共有72 條檢測(cè)數(shù)據(jù)。2 組檢測(cè)結(jié)果之間的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001),D3 NICS 組的檢測(cè)失敗率(N/A%)高于胚胎/TE 組(41.67%/2.78%),2 組之間CNVs 結(jié)果的分布差異也具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見表3。

    表3 相同胚胎D3 NICS 和胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果比較[n(%)]Tab.3 Comparison of sequencing results between D3 NICS group and embryo/TE from the same embryo [n(%)]

    2.2.3 相同胚胎的3 組數(shù)據(jù)結(jié)果比較在測(cè)序結(jié)果中,同時(shí)含有D3 NICS、D5 NICS 和胚胎/TE 檢測(cè)結(jié)果的胚胎有30 個(gè),共有90 條檢測(cè)數(shù)據(jù)。3組檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果之間的差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01/P<0.01),且D3 NICS 組和胚胎/TE 組之間的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,D5 NICS 組和胚胎/TE 組之間的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。分別重新對(duì)D3 NICS 和胚胎/TE,以及D5 NICS 和胚胎/TE 檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果進(jìn)行兩組間χ2檢驗(yàn),結(jié)果表明,在檢測(cè)結(jié)果和CNVs 結(jié)果兩個(gè)變量上,D3 NICS 和胚胎/TE 之間的差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01/P<0.05),D5 NICS 和胚胎/TE 染色體CNVs結(jié)果之間的差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.085/P=0.658),見表4。

    表4 不同階段 NICS 同胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果比較[n(%)]Tab.4 Comparison of sequencing results in NICS groups of different stages and embryo/TE group [n(%)]

    3 討論

    目前,平衡易位患者可以通過PGT 檢測(cè),移植遺傳物質(zhì)平衡的胚胎,從而減少早期流產(chǎn)的發(fā)生。由于PGT 治療過程中的胚胎活檢操作為有創(chuàng)性操作,有些研究認(rèn)為該操作會(huì)降低胚胎質(zhì)量,引起種植失敗[8?9];在動(dòng)物模型的研究表明,活檢胚胎操作可能引起表觀遺傳改變和神經(jīng)退行性組織、腎腺的紊亂,以及卵巢功能缺陷等[10]。因而,尋找一種可替代的無創(chuàng)檢測(cè)方法是PGT 治療的主要的發(fā)展方向之一。2020 年,Rubio 等[11]發(fā)表了一項(xiàng)多中心前瞻性研究結(jié)果表明,胚胎cfDNA 分析得到的CNVs 與相應(yīng)TE DNA 的染色體分析一致率為78.2%(866/1108)。2021 年,Chen等人研究結(jié)果提示,活檢細(xì)胞檢測(cè)和NICS 檢測(cè)與整胚檢測(cè)一致性之間的差異均沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義[12]。

    目前,對(duì)于NICS 的研究多取材于D5 培養(yǎng)液,本研究中,筆者將D3 培養(yǎng)液同樣納入研究范疇,在獲得的186 條測(cè)序數(shù)據(jù)中,包括D3 NICS 結(jié)果39 個(gè),D5 NICS 結(jié)果72 個(gè),胚胎/TE 測(cè)序結(jié)果75 個(gè)。從整體結(jié)果來看,3 組數(shù)據(jù)的檢測(cè)失敗率(N/A%)和CNVs 結(jié)果分布的差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.001/P<0.01),這種差異主要來自于D3 NICS 組和胚胎/TE 組之間的差異,D5 NICS 組和胚胎/TE 組之間的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    為了評(píng)估D3 NICS 和D5 NICS 的用于臨床診斷的準(zhǔn)確性,筆者以同一胚胎的胚胎/TE 的CNVs 結(jié)果作為對(duì)照進(jìn)行分析。結(jié)果表明,D5 NICS 的CNVs 結(jié)果分布同胚胎/TE 結(jié)果相比,二者之間的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.994);但是,D3 NICS 的CNVs 結(jié)果分布同胚胎/TE 結(jié)果相比,其差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。有研究表明,相對(duì)于D3 培養(yǎng)液,D5 培養(yǎng)液對(duì)一些特定基因的檢測(cè)更為可靠[13],筆者的結(jié)果也從CNVs 的角度驗(yàn)證了D5 NICS 診斷的可靠性。D5 NICS 的檢測(cè)結(jié)果同胚胎/TE 檢測(cè)結(jié)果更接近,具有替代活檢操作進(jìn)行胚胎染色體CNVs 診斷的應(yīng)用潛能,但D3 NICS 的檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確性較低,無法用于臨床診斷。

    在檢出率方面,Luca Galluzz 等[13]在2015 年的研究中表明,D3 胚胎培養(yǎng)液和D5 胚胎培養(yǎng)液中g(shù)DNA 檢出率分別為93.7% 和94.4%,gDNA含量?jī)H分別為(80±70)pg 和(99±113)pg,但二者之間的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。由于培養(yǎng)液中cfDNA 含量較少,在現(xiàn)有測(cè)序深度和技術(shù)的前提下,檢測(cè)失敗率要高于活檢樣本。在筆者的研究結(jié)果中,D5 NICS 檢測(cè)失敗率略高于胚胎/TE 組(10.14%/2.90%),但2 組之間的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.085);D3 NICS 的檢測(cè)失敗率高于胚胎/TE,其差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(41.67%/2.78%,P<0.001)。有研究表明,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),DNA 降解比例會(huì)更高[10]。在筆者的研究中,D3培養(yǎng)液收集時(shí)間大約在72 h,D5 培養(yǎng)液收集時(shí)間約為48~72 h,D3 培養(yǎng)液中更多的DNA 降解比例也可能會(huì)影響最終結(jié)果的檢出率和準(zhǔn)確性。

    目前,cfDNA 分泌的機(jī)制尚不明確,大部分的觀點(diǎn)認(rèn)為cfDNA 主要來源于胚胎發(fā)育過程中產(chǎn)生的凋亡細(xì)胞。有跟蹤研究表明,凋亡胚胎的來源主要是后續(xù)發(fā)育成胎兒的內(nèi)細(xì)胞團(tuán)(inner cell mass,ICM)[14]。另外,活檢采集的TE 細(xì)胞數(shù)目有限,無法反映整個(gè)胚胎的染色體情況,可能會(huì)造成錯(cuò)誤的遺傳診斷。對(duì)于ICM 和TE 的研究表明,二者染色體的一致率在62.1%~86.2%不等[14?17]。因而相對(duì)于TE 活檢,培養(yǎng)液中的cfDNA 更能反映ICM 的染色體情況。Shitara 等[18]在2021 年的研究發(fā)現(xiàn),以培養(yǎng)到第10 天的胚胎為對(duì)照,相對(duì)于TE 活檢結(jié)果,培養(yǎng)液檢測(cè)的結(jié)果更為可靠。

    筆者的研究表明,從檢測(cè)失敗率和CNVs 結(jié)果分布來看,D5 NICS 同胚胎/TE 之間的差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;相對(duì)于D3 NICS,D5 NICS 在平衡易位患者胚胎的診斷上更有優(yōu)勢(shì),具有替代活檢操作進(jìn)行PGT 診斷的潛能。在臨床應(yīng)用上,母源DNA 污染和培養(yǎng)液中較低的cfDNA 含量是限制NICS 臨床應(yīng)用的最大因素。NICS 檢測(cè)技術(shù)準(zhǔn)確度的提高,依賴于受精方法、培養(yǎng)方法和樣本處理方法的優(yōu)化和測(cè)序技術(shù)的進(jìn)步。隨著測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,測(cè)序深度和精度在不斷提高,NICS 技術(shù)作為無創(chuàng)的染色體診斷技術(shù),在平衡易位患者的治療中,將有著更為普遍的應(yīng)用前景。

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