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    泰樂(lè)菌素純化工藝優(yōu)化研究

    2023-02-08 01:49:20陳東張曉強(qiáng)納奇鎖嘉偉
    當(dāng)代化工研究 2023年1期
    關(guān)鍵詞:泰樂(lè)丁酯菌素

    *陳東 張曉強(qiáng) 納奇 鎖嘉偉

    (寧夏泰益欣生物科技有限公司 寧夏 750205)

    泰樂(lè)菌素(Tylosin),亦稱泰農(nóng)、泰樂(lè)霉素,是美國(guó)于1959年從弗氏鏈霉菌(Streptomyces fradiae)的培養(yǎng)液中獲得的一種大環(huán)內(nèi)酯類抗生素。泰樂(lè)菌素的外觀呈現(xiàn)為一種白色板狀結(jié)晶,在水中的溶解性較低,呈現(xiàn)堿性。主要的產(chǎn)品有酒石酸泰樂(lè)菌素、磷酸泰樂(lè)菌素、鹽酸泰樂(lè)菌素、硫酸泰樂(lè)菌素及乳酸泰樂(lè)菌素,以上鹽在水中的溶解性良好。泰樂(lè)菌素水溶液在25℃、pH5.5~7.5時(shí)可保存3個(gè)月,但是當(dāng)水溶液中含有鐵離子、銅離子等金屬離子時(shí),會(huì)使泰樂(lè)菌素水溶液失效。

    泰樂(lè)菌素是禽畜專用的大環(huán)內(nèi)酯類抗生素,其活性組分主要包括ABCD四種,以A組分為主,在動(dòng)物體內(nèi)的活性最強(qiáng)[1]。在2011版英國(guó)藥典(獸藥)中,規(guī)定泰樂(lè)菌素的總組分(A+B+C+D)含量在95%以上,且A組分含量在80%以上[2]。目前,已有報(bào)道顯示泰樂(lè)菌素對(duì)于禽畜類的多種病癥均具有較好的預(yù)防和治療效果。與此同時(shí),其作為飼料添加劑已經(jīng)被國(guó)際所認(rèn)可,且在國(guó)內(nèi)甚至國(guó)際市場(chǎng)上的需求量都較大[3]。純度較高的泰樂(lè)菌素成品具有廣闊的市場(chǎng)前景,也能帶來(lái)較為良好的經(jīng)濟(jì)效益。隨之而來(lái)的問(wèn)題就是,如何獲得純度較高的泰樂(lè)菌素,這也成為了目前的研究方向和發(fā)展趨勢(shì)。

    在生物制藥行業(yè)中,萃取的方法被廣泛應(yīng)用,此種方法可以有效去除泰樂(lè)菌素中大部分水溶性雜質(zhì)及無(wú)機(jī)鹽,將泰樂(lè)菌素的有效成分從水相轉(zhuǎn)移至有機(jī)相,除去水溶性雜質(zhì),然后通過(guò)二級(jí)反萃取的方式將泰樂(lè)菌素分階段的從有機(jī)相轉(zhuǎn)移至水相,再經(jīng)過(guò)中和精制,得到高純度的泰樂(lè)菌素。達(dá)到降低雜質(zhì)含量,提升泰樂(lè)菌素純度的目的。

    圖1 泰樂(lè)菌素結(jié)構(gòu)式

    1.實(shí)驗(yàn)儀器及試劑

    (1)儀器

    實(shí)驗(yàn)中所需數(shù)顯式恒溫磁力攪拌水浴鍋由天津華鑫儀器提供;低溫恒溫循環(huán)水浴槽由中儀科瑞(鄭州)設(shè)備有限公司提供;酸度計(jì)由梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司提供;高效液相色譜儀由安捷倫科技公司提供;分析天平由上海良平儀器儀表有限公司提供。

    (2)試劑

    實(shí)驗(yàn)中所需氫氧化鈉、酒石酸、乙酸丁酯全部由天津市承大化學(xué)試劑有限公司提供;氫氧化鈣、甲醇、乙腈全部由天津市大茂化學(xué)試劑有限公司提供。

    2.實(shí)驗(yàn)材料和實(shí)驗(yàn)方法

    (1)材料

    泰樂(lè)菌素濾液來(lái)源于寧夏泰益欣生物科技股份有限公司。

    (2)方法

    ①實(shí)驗(yàn)方法

    取泰樂(lè)菌素濾液以及套用乙酸丁酯,分別設(shè)置濾液:乙酸丁酯=1:1.5;1:1;1:0.8;1:0.4四種比例進(jìn)行混合,置于數(shù)顯恒溫水浴鍋內(nèi),分別設(shè)置30℃、35℃、40℃、45℃、50℃五個(gè)萃取溫度。設(shè)定萃取時(shí)間分別為20min、25min、30min、35min;分別設(shè)置萃取次數(shù)為一次萃取,兩次萃取,三次萃??;使用濃度為10%~15% NaOH溶液調(diào)節(jié)pH,最終pH調(diào)節(jié)到9.0~9.4左右;然后再進(jìn)行反萃取,最后進(jìn)行中和精制工藝得到精制液、取樣、待檢。

    ②檢測(cè)方法

    用高效液相色譜儀進(jìn)行含量檢測(cè),檢測(cè)方法按照泰樂(lè)菌素組分檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程(USP)進(jìn)行。

    色譜條件:以十八烷基硅烷鍵合硅膠作為填充劑;以200g/L高氯酸鈉溶液-乙腈(60:40)為流動(dòng)相;檢測(cè)波長(zhǎng)設(shè)定為290nm;色譜柱型號(hào)為:4.6mm×25cm,粒徑5um;流速設(shè)定為1.0ml/min;柱箱溫度設(shè)定為35℃。

    流動(dòng)相具體配制方法為:200g/L高氯酸鈉溶液與乙腈按照體積比為60:40進(jìn)行配制,混合均勻之后進(jìn)行過(guò)濾,用超聲波清洗器除去流動(dòng)相中的氣泡,即得。

    供試品溶液配制方法為:準(zhǔn)確稱取供試品20mg,置100ml容量瓶中,加入乙腈-水(1:1)進(jìn)行溶解并稀釋,準(zhǔn)確定容至刻度線,搖勻,即得。

    對(duì)照品溶液配制方法為:稱取泰樂(lè)菌素對(duì)照品(USP)20mg,精密稱定,置100ml容量瓶中,加乙腈-水(1:1)進(jìn)行溶解并稀釋,準(zhǔn)確定容至刻度線,搖勻,即得。

    3.結(jié)果與分析

    (1)濾液與乙酸丁酯的加量對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    在萃取這一工序中,萃取劑的用量對(duì)萃取的效果會(huì)產(chǎn)生極大地作用。萃取劑使用過(guò)量可能會(huì)加大試劑的浪費(fèi),導(dǎo)致生產(chǎn)成本過(guò)高;而萃取劑使用量減少會(huì)導(dǎo)致萃取不徹底,從而造成泰樂(lè)菌素的損失。因此本實(shí)驗(yàn)設(shè)置四種投料比例進(jìn)行驗(yàn)證,分別為1:0.4,1:0.8;1:1;1:1.5;其余條件固定不變,考察對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響。具體結(jié)果由表1所示。

    表1 加量比例對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    由表1和圖2可知,隨著投料比例的改變,泰樂(lè)菌素A組分含量為一個(gè)先增加后降低的改變趨勢(shì),當(dāng)加量比例設(shè)置為1:0.8時(shí),得到的泰樂(lè)菌素A組分含量為最高。

    圖2 加量比例對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    (2)萃取溫度對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    一般來(lái)說(shuō),隨著溫度的升高,溶質(zhì)在水相及萃取劑中的溶解度都會(huì)有所提高,而且在萃取劑中的溶解度比在溶質(zhì)中的溶解度大,所以利于萃取的進(jìn)行。除此之外,溫度升高,溶液的黏度降低,也便于萃取劑與水的分離。但是當(dāng)溫度過(guò)高時(shí),就會(huì)導(dǎo)致萃取劑的損失增多。因此設(shè)置不同萃取溫度進(jìn)行驗(yàn)證,分別為30℃、35℃、40℃、45℃、50℃,保持其余條件不變,考察對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響。具體結(jié)果由表2所示。

    表2 萃取溫度對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    由表2和圖3可知,隨著萃取溫度的逐漸增加時(shí),泰樂(lè)菌素A組分含量變化為先增加后降低,當(dāng)萃取溫度為45℃時(shí),泰樂(lè)菌素A組分的含量達(dá)到最佳。此后再升高溫度時(shí)泰樂(lè)菌素A組分含量開(kāi)始降低,綜合來(lái)看,當(dāng)萃取溫度為45℃時(shí),泰樂(lè)菌素A組分含量最佳。

    圖3 萃取溫度對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    (3)萃取次數(shù)對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    萃取是提純的手段之一,而萃取次數(shù)也至關(guān)重要。單次萃取效率遠(yuǎn)低于多次萃取,而隨著萃取次數(shù)的增加,濾液中泰樂(lè)菌素的有效成分會(huì)逐漸降低,此時(shí)繼續(xù)增加萃取次數(shù),泰樂(lè)菌素A含量降低,還會(huì)造成萃取劑的浪費(fèi),導(dǎo)致生產(chǎn)成本增加。因此設(shè)置不同萃取次數(shù)進(jìn)行驗(yàn)證,分別為一次萃取、兩次萃取、三次萃取,保持其余條件不變,考察對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響。具體結(jié)果由表3所示。

    表3 萃取次數(shù)對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    由表3和圖4可知,當(dāng)萃取次數(shù)的逐漸增加時(shí),泰樂(lè)菌素A組分含量逐漸降低,萃取次數(shù)越多,泰樂(lè)菌素A組分含量越低,但一次萃取顯然無(wú)法將絕大多數(shù)有效成分萃取出來(lái),綜合生產(chǎn)成本與萃取效率,當(dāng)萃取次數(shù)為兩次時(shí),既能盡可能多的將泰樂(lè)菌素A組分萃取完全,又能節(jié)約成本,因此確定萃取次數(shù)為兩次。

    圖4 萃取次數(shù)對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    (4)萃取時(shí)間對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    在進(jìn)行萃取工序時(shí),萃取時(shí)間的長(zhǎng)短對(duì)萃取效率的影響也極為重要。萃取時(shí)間過(guò)短,會(huì)導(dǎo)致泰樂(lè)菌素有效成分萃取不完全,從而導(dǎo)致泰樂(lè)菌素A組分降低;而當(dāng)萃取時(shí)間過(guò)長(zhǎng)時(shí),不僅對(duì)萃取效率起不到明顯的促進(jìn)作用,反而會(huì)造成預(yù)料之外的浪費(fèi)。因此設(shè)置20min、25min、30min、35min、40min等不同萃取時(shí)間,保持其它條件不改變,考察對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響。具體結(jié)果由表4所示。

    表4 萃取時(shí)間對(duì)泰樂(lè)菌素A組分含量的影響

    由表4可知,隨著萃取時(shí)間的延長(zhǎng),泰樂(lè)菌素A組分含量增加,當(dāng)萃取時(shí)間在25~30min這一范圍內(nèi)時(shí),泰樂(lè)菌素A組分含量基本保持不變且為最佳,而后萃取時(shí)間繼續(xù)增加,泰樂(lè)菌素A組分含量變化不大,綜合生產(chǎn)時(shí)間來(lái)看,當(dāng)萃取時(shí)間為25~30min時(shí),所得泰樂(lè)菌素A組分含量是最高的。

    (5)最優(yōu)條件下的平行實(shí)驗(yàn)

    通過(guò)單因素試驗(yàn),獲得最優(yōu)參數(shù),組合成為最優(yōu)的泰樂(lè)菌素萃取工藝條件,具體參數(shù)如下:泰樂(lè)菌素濾液加量:乙酸丁酯加量=1:0.8、萃取溫度為45℃、進(jìn)行兩次萃取、萃取時(shí)間控制為25~30min。以此組合工藝條件進(jìn)行3組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證此工藝條件的穩(wěn)定性,結(jié)果如表5所示。

    表5 平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證數(shù)據(jù)

    由表5可知,三組實(shí)驗(yàn)中所得到的泰樂(lè)菌素A組分平均含量為89.6%。

    4.結(jié)論

    本研究通過(guò)對(duì)泰樂(lè)菌素濾液與乙酸丁酯投料比例、萃取溫度、萃取次數(shù)、萃取時(shí)間等工藝參數(shù)分別進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明:當(dāng)投料比例為1:0.8、萃取溫度為45℃、萃取次數(shù)為兩次萃取、萃取時(shí)間控制為25~30min時(shí)實(shí)驗(yàn)結(jié)果最優(yōu),并驗(yàn)證最優(yōu)參數(shù)組合工藝對(duì)泰樂(lè)菌素的萃取具有顯著的影響,為泰樂(lè)菌素的A組分含量的提升提供了有力的支撐,依據(jù)此工藝可繼續(xù)進(jìn)行優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。

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