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    羅非魚(yú)-大豆共沉淀蛋白乳液穩(wěn)定二十二碳六烯酸藻油的研究

    2023-02-02 02:22:48肖丁浩張若蘭洪鵬志周春霞宋春勇鐘坦君
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2023年2期
    關(guān)鍵詞:物理

    肖丁浩,張若蘭,洪鵬志,2,周春霞,2*,宋春勇,鐘坦君

    1(廣東海洋大學(xué) 食品科技學(xué)院, 廣東省水產(chǎn)品加工與安全重點(diǎn)實(shí)驗(yàn), 廣東省海洋食品工程技術(shù)研究中心, 廣東省現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科技 創(chuàng)新中心,廣東省海洋生物制品工程實(shí)驗(yàn)室,廣東 湛江,524088)2(海洋食品精深加工關(guān)鍵技術(shù)省部共建協(xié)同創(chuàng)新中心, 大連 工業(yè)大學(xué),遼寧 大連,116034)

    二十二碳六烯酸(docosahexenoic acid,DHA)是人體中的一種功能性脂肪酸,能預(yù)防心血管疾病[1],影響嬰幼兒及兒童時(shí)期神經(jīng)系統(tǒng)和認(rèn)知功能的發(fā)育,尤其對(duì)兒童腦細(xì)胞和視網(wǎng)膜細(xì)胞的發(fā)育及功能有重要作用[2]。目前用于食品營(yíng)養(yǎng)補(bǔ)充劑的DHA主要來(lái)源于魚(yú)油和藻油[3]。與魚(yú)油相比,藻油屬于植物性油脂,具有易獲取、對(duì)環(huán)境污染小的特點(diǎn),因此藻油常被作為DHA的主要來(lái)源和載體應(yīng)用于食品[3]。然而,將DHA藻油直接添加到食品體系中,會(huì)不可避免地改變食品的風(fēng)味和穩(wěn)定性,且富含多不飽和脂肪酸的DHA藻油也極易被氧化,引起油脂某些品質(zhì)指標(biāo)的改變[4]。研究表明,乳液體系可以提高藻油的物理穩(wěn)定性[5]。乳液是一種液體,以小液滴的形式均勻分散在另一種不相容液體中的體系[6],蛋白質(zhì)-DHA藻油乳液可以增強(qiáng)DHA的穩(wěn)定性和生物利用率[7]。CHANG等[8]比較了乳清濃縮蛋白、Tween80和Tween 80+Span80對(duì)DHA藻油乳液貯藏穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性的影響,發(fā)現(xiàn)乳清濃縮蛋白穩(wěn)定DHA藻油的能力弱于小分子表面活性劑。因此,需要對(duì)天然蛋白質(zhì)進(jìn)行適度處理以提高其乳化能力。

    研究表明,動(dòng)植物蛋白混合經(jīng)物理和化學(xué)方法制備的共沉淀蛋白,具有比單一蛋白質(zhì)無(wú)法比擬的加工性質(zhì)[9-10]。與單一蛋白質(zhì)相比,采用共沉淀法制備的大豆-乳清和棉籽-乳清共沉淀蛋白,具有強(qiáng)的親水性和吸脂性,且其溶解度和乳化能力明顯提高[9];KRISTENSEN等[10]研究發(fā)現(xiàn),共沉淀法可以改善豌豆蛋白的功能特性。與單一大豆球蛋白相比,混合酪蛋白和大豆蛋白制備的乳液具有更強(qiáng)的熱穩(wěn)定性,且其穩(wěn)定性隨酪蛋白含量的增加而增強(qiáng)。此外,在乳清-豌豆共沉淀蛋白中,蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用主要是二硫鍵和靜電相互作用[11],也包括變性亞基之間的非共價(jià)相互作用。與單一蛋白相比,大多數(shù)共沉淀可溶性聚集體顯示出更高的分子質(zhì)量和更小的直徑,同時(shí)共沉淀蛋白的熱穩(wěn)定性[11]和凝膠性能[12]也會(huì)明顯增強(qiáng)。實(shí)際上,共沉淀蛋白的溶解度、發(fā)泡能力和凝膠性能都明顯優(yōu)于單一蛋白,植物蛋白和動(dòng)物蛋白共混體系具有比單一蛋白更獨(dú)特的功能,同時(shí)也可以滿足不同年齡段消費(fèi)群體的營(yíng)養(yǎng)需求[2]。

    近年來(lái),有關(guān)魚(yú)蛋白潛在的抗氧化應(yīng)用被廣泛報(bào)道,可作為一種潛在的乳化劑[13]。魚(yú)蛋白具有獨(dú)特的氨基酸組成,能有效阻止蛋白結(jié)構(gòu)被氧自由基攻擊,緩解乳液中油脂的氧化[14]。羅非魚(yú)是我國(guó)養(yǎng)殖的主要經(jīng)濟(jì)魚(yú)類(lèi),2019年我國(guó)羅非魚(yú)產(chǎn)量164萬(wàn)t,占全球羅非魚(yú)總產(chǎn)量的26%,生產(chǎn)潛力和加工潛力巨大[15]。然而,魚(yú)蛋白本身的溶解性和熱穩(wěn)定性較差,在加工貯藏過(guò)程中,魚(yú)蛋白乳液易發(fā)生凝聚和沉淀的現(xiàn)象,限制了其在食品工業(yè)中的應(yīng)用。大豆分離蛋白具有良好的加工特性,是當(dāng)前應(yīng)用最廣泛的植物蛋白。因此,本研究以羅非魚(yú)和豆粕為原料,按比例混合經(jīng)堿溶酸沉法提取羅非魚(yú)-大豆共沉淀蛋白(tilapia-soy protein co-precipitates,TSPC),高壓均質(zhì)制備DHA藻油乳液,研究TSPC穩(wěn)定的DHA藻油乳液的物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性,為共沉淀蛋白乳液的制備及其對(duì)DHA藻油的穩(wěn)定化提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    羅非魚(yú),廣東湛江當(dāng)?shù)厮a(chǎn)加工市場(chǎng),取背部白肉攪碎,保存于-20 ℃下備用;大豆豆粕,山東萬(wàn)德福生物技術(shù)有限公司,攪碎后過(guò)80目篩,室溫貯藏備用;40% DHA藻油,陜西承乾生物科技有限公司;尼羅紅,上海麥克林生化科技有限公司;尼羅藍(lán),SIGMA試劑公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純,廣州化學(xué)試劑廠。

    1.2 儀器與設(shè)備

    Avanti J-26 sxp落地高速冷凍離心機(jī),美國(guó)Beckman公司;ALPHA1-2LD plus冷凍干燥機(jī),德國(guó)Martin Christ Gefriertrocknungsanlagen公司;高壓納米均質(zhì)機(jī),加拿大ATS儀器公司;DF-101S恒溫水浴鍋,河南省予華儀器有限公司;Nano Brook Omni激光粒度及Zeta電位儀,美國(guó)布魯克海文儀器公司;Cintra1010紫外分光光度計(jì),澳大利亞GBC儀器公司;FV3000激光掃描共聚焦顯微鏡,奧林巴斯儀器公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 分離蛋白的制備

    采用堿溶酸沉法[16]制備羅非魚(yú)分離蛋白(tilapia protein isolate,TPI)、TSPC和大豆分離蛋白(soy protein isolate,SPI)。其中TPI制備過(guò)程中采用的溶解pH值為11.0,沉淀pH值為5.5;將羅非魚(yú)肉和大豆按質(zhì)量比2∶1、1∶1和1∶2混合制備TSPC2∶1、TSPC1∶1和TSPC1∶2,采用的溶解pH值為11.0,沉淀pH值為4.5;SPI制備過(guò)程中采用的溶解pH值為8.0和沉淀pH值為4.5。蛋白溶液經(jīng)冷凍干燥后密封干燥,-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.3.2 蛋白乳液的制備

    取上述TPI、TSPC2∶1、TSPC1∶1、TSPC1∶2和SPI 5種蛋白粉末分別分散于去離子水,冰浴條件下磁力攪拌2 h,制備蛋白質(zhì)量濃度10 mg/mL的蛋白溶液,利用高壓均質(zhì)機(jī)在60 MPa條件下均質(zhì)循環(huán)5次,得到預(yù)處理后的5種蛋白溶液。取上述預(yù)處理后的蛋白溶液,按照油水比為1∶9(g∶mL)的比例添加DHA藻油,經(jīng)10 000 r/min勻漿2 min,并高壓均質(zhì)(60 MPa)循環(huán)5次,得到5種蛋白穩(wěn)定的DHA藻油乳液。將新鮮制備的乳液分別分裝,密封于容量為50 mL的玻璃瓶中,4 ℃貯藏28 d,用于物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性的檢測(cè)。

    1.3.3 粒徑和Zeta電位的測(cè)定

    為避免多次散射的影響,利用去離子水將乳液稀釋至0.5%(體積分?jǐn)?shù)),在室溫條件下測(cè)定乳液的平均粒徑、多分散性指數(shù)(polydispersity,PDI)和Zeta電位。每個(gè)樣品至少測(cè)定3次,并取平均值。

    1.3.4 濁度的測(cè)定

    參考孫亞欣等[17]的方法并略作改動(dòng)。利用去離子水將新鮮制備的蛋白乳液稀釋1 000倍,以去離子水作空白對(duì)照,在波長(zhǎng)為600 nm處測(cè)定其吸光度,濁度T的計(jì)算如公式(1)所示:

    (1)

    式中:A,稀釋乳液在600 nm處的吸光度;V,稀釋倍數(shù);I,光程差,取1 cm。

    1.3.5 乳析指數(shù)的測(cè)定

    參考ZHANG等[18]的方法測(cè)定乳液的乳析指數(shù)。4 ℃貯藏28 d期間,每天記錄乳液的乳析情況并拍照,乳析指數(shù)(creaming index,CI)的計(jì)算如公式(2)所示:

    (2)

    式中:HC,乳液底部析出清液層的高度;HE,乳液的總高度。

    1.3.6 氧化穩(wěn)定性的測(cè)定

    參考SHAO等[19]的方法并稍加修改,測(cè)定乳液的氫過(guò)氧化值。將異辛烷和異丙醇按照3∶1的體積混合,作為溶液A;將甲醇和正丁醇按照2∶1的體積比混合,作為溶液B;將0.132 mol/L的氯化鋇和0.144 mol/L的硫酸亞鐵等體積混合,在室溫下5 000 r/min離心2 min,所得上清液為溶液C。取200 μL蛋白乳液與1.5 mL溶液A混合,渦旋10 s并靜置10 s,重復(fù)3次后在室溫下5 000 r/min離心3 min。吸取200 μL上層有機(jī)相與2.8 mL溶液B混合,依次加入0.3 g/mL硫氰酸銨和溶液C各15 μL,充分混合后孵育20 min,在波長(zhǎng)510 nm處測(cè)量溶液的吸光度,同時(shí)采用過(guò)氧化氫標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品中的氫過(guò)氧化物值。

    參考陳旭輝[20]的方法并作略微修改測(cè)定乳液的硫代巴比妥酸反應(yīng)物(thiobarbituric acid reactive substances,TBARS)值。取0.5 mL乳液與1 mL的硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid,TBA)試劑混合,90 ℃水浴加熱15 min。冷卻至室溫后,用注射器小心吸取底部清液過(guò)0.45 μm濾膜,于波長(zhǎng)532 nm處測(cè)定其吸光值。同時(shí)利用0.1 mmol/L的1,1,3,3-四乙氧基丙烷作標(biāo)準(zhǔn)標(biāo)曲,以水作為對(duì)照組。其中TBA試劑的配制:稱(chēng)取三氯乙酸15 g和2-硫代巴比妥酸0.375 g,加入到100 mL的0.5 mol/L HCl溶液中,并超聲至溶質(zhì)完全溶解。

    1.3.7 乳液的微觀結(jié)構(gòu)觀察

    乳液形貌學(xué)的觀察參考陳艾霖等[21]的方法并稍加修改。將10 mg尼羅紅分散于5 mL甲醇溶液中制備尼羅紅溶液,將5 mg尼羅藍(lán)分散于5 mL去離子水中制備尼羅藍(lán)溶液。取新鮮制備的乳液,用去離子水稀釋10倍,按照V(樣品)∶V(尼羅紅)∶V(尼羅藍(lán))=1∶1∶2混合,并將混合液滴在載玻片上,利用激光共聚焦顯微鏡(confocal laser scanning microscopy,CLSM)放大60倍觀察乳液的微觀結(jié)構(gòu)。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    2 結(jié)果與分析

    2.1 乳液的平均粒徑、Zeta電位和濁度分析

    經(jīng)高壓均質(zhì)預(yù)處理后的蛋白溶液,添加10%的DHA藻油,再經(jīng)高壓均質(zhì)制備O/W蛋白乳液,檢測(cè)其平均粒徑、PDI、電位和濁度,結(jié)果如圖1所示。TPI乳液的平均粒徑和PDI值最大,隨著原料中大豆比例的增加,TSPC乳液的平均粒徑不斷減小(P<0.05),電位絕對(duì)值增大(P<0.05),電負(fù)性增強(qiáng)。TSPC2∶1乳液的平均粒徑和電位分別為603.10 nm和31.44 mV,而TSPC1∶2乳液的平均粒徑減小到277.16 nm,電位絕對(duì)值增大到41.17 mV,乳液的PDI值更小。共沉淀蛋白表現(xiàn)出的物理穩(wěn)定性與2種原料蛋白本身性質(zhì)有關(guān)。與羅非魚(yú)蛋白相比,大豆蛋白具有更好的分散性和界面活性,在均質(zhì)處理過(guò)程中,表面暴露的帶電基團(tuán)增多,蛋白質(zhì)分子間的排斥作用更大[22],羅非魚(yú)-大豆復(fù)合共沉淀蛋白乳液的電負(fù)性增強(qiáng)(圖1-b)。因此,與TPI穩(wěn)定的DHA藻油乳液相比,大豆蛋白組分的存在明顯降低了TSPC-DHA藻油乳液的平均粒徑,增強(qiáng)了乳液的電負(fù)性,乳液的物理穩(wěn)定性增強(qiáng)。

    乳液的濁度能夠反映乳液的平均粒徑和穩(wěn)定性[17]。隨著原料中羅非魚(yú)比例的減少,共沉淀蛋白乳液的濁度明顯降低,TSPC2∶1乳液的濁度值為5 577.99 cm-1,TSPC1∶2乳液的濁度值減小為3 220.28 cm-1(圖1-d),表明乳液中小粒徑組分的比例增加。此外,在TPI和TSPC2∶1乳液的粒度分布圖中,能明顯觀察到“雙峰”,說(shuō)明其粒度分布不均勻,發(fā)生了奧氏熟化現(xiàn)象[18]。而TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液的粒度分布圖呈現(xiàn)單峰分布(圖1-c),且與SPI乳液的粒度分布圖接近,平均粒徑更小,進(jìn)一步說(shuō)明了大豆蛋白組分的存在能明顯提高TSPC-DHA藻油乳液的物理穩(wěn)定性。

    2.2 乳液的乳析指數(shù)分析

    乳液在4 ℃貯藏28 d,觀察實(shí)物圖并測(cè)定其乳析指數(shù),結(jié)果如圖2所示。由圖2可知,TPI乳液貯藏第7天即開(kāi)始出現(xiàn)了明顯的分層,乳析指數(shù)高達(dá)28.57%;貯藏28 d后,TSPC2∶1乳液也出現(xiàn)了明顯的分層,其乳析指數(shù)為8.00%,乳液的穩(wěn)定性較差;而TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液的外觀與SPI乳液接近,4 ℃貯藏28 d沒(méi)有明顯的分層現(xiàn)象,乳析指數(shù)接近于零,乳液的宏觀穩(wěn)定性好,與乳液的平均粒徑結(jié)果(圖1-a)一致,也反映了乳液貯藏穩(wěn)定性受粒徑大小的影響。在重力的作用下,大顆粒的羅非魚(yú)蛋白聚集體擴(kuò)散速度慢、易沉降,在溶液中難以覆蓋油水界面[23]。比較而言,大豆蛋白分子含有更多的親水基團(tuán)和表面電荷,更容易附著在油水的界面處[8]。當(dāng)羅非魚(yú)和大豆的混合比例為1∶1和1∶2時(shí),TSPC中大豆蛋白組分的存在導(dǎo)致共沉淀蛋白的表面性質(zhì)足夠覆蓋油水界面,減緩了油滴的絮凝,且乳液組分之間強(qiáng)烈的布朗運(yùn)動(dòng)和靜電斥力抑制了離心聚集[23],進(jìn)而增強(qiáng)TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液的物理穩(wěn)定性。

    a-平均粒徑與PDI;b-電位;c-粒度分布;d-濁度圖1 TSPC-DHA藻油乳液的分析Fig.1 The analysis of TSPC-DHA algal oil emulsion 注:不同小寫(xiě)字母表示差異顯著(P<0.05)

    a-乳析指數(shù);b-實(shí)物圖圖2 TSPC-DHA藻油乳液貯藏過(guò)程中乳析指數(shù)和實(shí)物圖的變化Fig.2 Creaming index of TSPC-DHA algal oil emulsion and visual appearance during storage

    2.3 乳液的氧化穩(wěn)定性分析

    DHA藻油富含多不飽和脂肪酸,極易被氧化,可能導(dǎo)致乳液風(fēng)味的劣化和功能活性的喪失[4]。TPI、TSPC和SPI乳液在4 ℃貯藏28 d,產(chǎn)生的初級(jí)和次級(jí)氧化產(chǎn)物含量如圖3所示。由圖3可知,4 ℃貯藏過(guò)程中,TPI乳液和TSPC乳液的氧化產(chǎn)物含量較低,而SPI乳液的氧化產(chǎn)物含量隨貯藏時(shí)間的延長(zhǎng)明顯增加,表明TPI和TSPC能減緩DHA藻油的氧化。4 ℃貯藏28 d后,TSPC2∶1、TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液的過(guò)氧化值分別為9.65、13.95、15.91 mmol/L,與TPI乳液接近(12.89 mmol/L),并且產(chǎn)生的TBARS值在TPI乳液和SPI乳液之間。初步分析,一方面,魚(yú)蛋白質(zhì)自身含有與抗氧化活性有關(guān)疏水性組分,如自由巰基和色氨酸[13-14],在預(yù)防油脂氧化方面具有天然的緩解效果,乳液均質(zhì)處理過(guò)程中,蛋白質(zhì)內(nèi)部的自由巰基和色氨酸暴露出來(lái),并通過(guò)螯合金屬離子的方式促使自由基失活,進(jìn)而減緩油脂的氧化[14]。另一方面,TSPC中的魚(yú)蛋白組分的存在可以在油水界面形成厚的粘彈性膜,作為物理屏障減少脂質(zhì)和水相中氧化劑的相互作用[24]。因此,TSPC中魚(yú)蛋白組分的存在有利于保護(hù)DHA藻油,提高其氧化穩(wěn)定性。魚(yú)類(lèi)蛋白質(zhì)含量高,氨基酸組成豐富,近年來(lái),由各種魚(yú)蛋白制備抗氧化活性成分及應(yīng)用的研究被廣泛報(bào)道[13]。

    a-過(guò)氧化值;b-TBARS值圖3 TSPC-DHA藻油乳液貯藏過(guò)程中的變化Fig.3 Changes of TSPC-DHA algal oil emulsion during storage

    2.4 乳液的微觀結(jié)構(gòu)分析

    乳液的形成和穩(wěn)定直接受到油滴分布和顆粒大小的影響。將乳液的蛋白和油相分別用尼羅紅和尼羅藍(lán)染色,通過(guò)CLSM觀察乳液的微觀結(jié)構(gòu)并拍照,如圖4所示。由圖4可知,TPI乳液和TSPC2∶1乳液微觀圖中明顯存在不均勻的顆粒分布,蛋白分子間相互結(jié)合形成聚集體,且油滴周?chē)溯^厚的蛋白吸附層。結(jié)果與乳析指數(shù)和實(shí)物圖的變化趨勢(shì)一致,說(shuō)明TPI乳液和TSPC2∶1乳液內(nèi)部的蛋白聚集體是引起乳液分層的主要原因。由于較大的蛋白聚集體不容易移動(dòng)到油-水界面,引起蛋白質(zhì)的界面活性下降[8],油滴間更容易相互聚集,導(dǎo)致乳液的物理穩(wěn)定性變差。同時(shí),由于油滴周?chē)溯^厚的蛋白吸附層,可以作為天然的物理屏障減少DHA藻油和促氧化劑的相互作用[24],進(jìn)而減緩了DHA藻油的氧化。隨著原料中大豆比例的增加,TSPC乳液的平均粒徑逐漸減小,蛋白聚集體和油滴逐漸分散。其中,TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液油滴的分散程度接近SPI乳液,顆粒小且分布均勻,蛋白分子更容易擴(kuò)散到油水界面,可以有效阻止油滴之間的聚集,乳液的物理穩(wěn)定性更好,并且油滴周?chē)牡鞍孜綄虞^厚,減少了DHA藻油和環(huán)境中促氧化劑的相互作用。因此,TSPC乳液具有優(yōu)于TPI乳液的物理穩(wěn)定性和優(yōu)于SPI乳液的氧化穩(wěn)定性,其中TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液的物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性更好。

    圖4 TSPC-DHA藻油乳液的激光共聚焦顯微鏡圖Fig.4 CLSM pictures of the TSPC-DHA algal oil emulsion

    3 結(jié)論

    為了探究羅非魚(yú)-大豆復(fù)合共沉淀蛋白乳化穩(wěn)定DHA藻油的可行性,比較了TPI、3種TSPC和SPI-DHA藻油乳液的物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性。結(jié)果表明,TSPC穩(wěn)定的DHA藻油乳液具有優(yōu)于TPI乳液的物理穩(wěn)定性和優(yōu)于SPI乳液的氧化穩(wěn)定性,且不同比例的共沉淀蛋白穩(wěn)定DHA藻油的效果不同。大豆蛋白組分的存在能增強(qiáng)TSPC乳液體系的分散性和電負(fù)性,乳液的平均粒徑減小,提高乳液的物理穩(wěn)定性;而魚(yú)蛋白組分的存在能夠減緩TSPC乳液體系中油脂的氧化速率,提高乳液的氧化穩(wěn)定性。當(dāng)羅非魚(yú)肉和大豆原料混合的比例為1∶1和1∶2時(shí),TSPC1∶1和TSPC1∶2乳液平均粒徑小,體系分散均勻,4 ℃貯藏28 d無(wú)明顯分層,且貯藏期間體系的過(guò)氧化值接近TPI乳液,乳液的物理穩(wěn)定性和氧化穩(wěn)定性較好。因此,羅非魚(yú)-大豆復(fù)合共沉淀蛋白具有優(yōu)于單一蛋白的特性,可用作良好的乳化劑穩(wěn)定DHA藻油,研究結(jié)果為共沉淀蛋白功能乳液的開(kāi)發(fā)提供新的可能。

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